Artigo de método

Um modelo de camundongo modificado de aneurisma intracraniano baseado em alteração hemodinâmica e hipertensão

DOI:

10.3791/68087

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21 de fevereiro de 2025

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1Department of Neurosurgery, Renji Hospital, Shanghai Jiaotong University School of Medicine, 2Department of Neurosurgery, The Second Affiliated Hospital, Guangzhou Medical University, 3Department of Neurosurgery, Zaozhuang Municipal Hospital, 4Department of Neurosurgery, the Affiliated Hospital of Guizhou Medical University

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

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O aneurisma intracraniano (AI) foi construído em camundongos usando os fatores de risco de hipertensão e alterações hemodinâmicas. As alterações hemodinâmicas foram induzidas pela ligadura dos ramos da artéria carótida, enquanto a hipertensão foi alcançada pela ligadura dos ramos posteriores da artéria renal. A formação de IA foi detectada por meio de angiografia por ressonância magnética, estereomicroscopia e análise anatomopatológica.

Resumo

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O aneurisma intracraniano (AI) representa um risco significativo à saúde devido à morbidade e mortalidade associadas à ruptura do aneurisma. No entanto, os mecanismos moleculares subjacentes ao desenvolvimento da IA permanecem obscuros e é necessário um modelo de camundongo adequado. Um modelo de IA em camundongos foi estabelecido pela ligação da artéria pterigopalatina (APP) para induzir alterações hemodinâmicas aditivas, combinadas com indução de hipertensão. Em camundongos machos C57BL/6, os vasos, incluindo o PPA direito, a artéria carótida externa (ECA), a artéria occipital (OcA) e a artéria carótida comum contralateral esquerda (CCA), foram ligados para induzir alterações hemodinâmicas. Uma semana depois, os ramos posteriores bilaterais da artéria renal (pRA) foram ligados e uma dieta com 8% de sal foi introduzida para induzir hipertensão. Angiografia por ressonância magnética (ARM), estereomicroscopia e coloração imuno-histoquímica (IHQ) foram realizadas para avaliar as alterações morfológicas e patológicas na IA três meses após a indução. No grupo experimental, quatro camundongos morreram após a indução inicial. IA em diferentes locais foi detectado em cinco dos onze camundongos restantes. Os exames microscópicos e de ressonância magnética confirmaram a formação de IA. As análises patológicas e de IHQ revelaram ruptura da lâmina elástica interna, desconexão das fibras colágenas e infiltração de macrófagos M1 CD86-positivos, achados consistentes com os observados na IA humana. Este modelo de camundongo de IA replica as alterações patológicas observadas em amostras humanas e pode servir como uma ferramenta valiosa para investigar os mecanismos moleculares de formação e progressão de IA.

Introdução

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A prevalência de aneurisma intracraniano (AI) é estimada em 3,2% da população geral1. A IA representa um risco significativo para a saúde devido à sua alta morbidade e mortalidade associadas. A AI é uma condição patológica complexa e multidimensional influenciada por alterações hemodinâmicas, inflamação e remodelamento vascular 2,3. Alterações hemodinâmicas e hipertensão estão implicadas na formação e progressão dos aneurismas 4,5. A IA ocorre frequentemente em bifurcações cerebrais com tensão de cisalhamento hemodinâmica elevada6, e bifurcações com ângulos estreitos são identificadas como fatores de risco para o desenvolvimento de IA em humanos7. Apesar dos avanços nos tratamentos endovasculares e nas estratégias cirúrgicas, a hemorragia subaracnóidea causada pela ruptura da IA permanece catastrófica. Portanto, explorar tratamentos farmacológicos é uma abordagem promissora para prevenir a ruptura do aneurisma8. No entanto, os mecanismos subjacentes à formação patológica e progressão da IA permanecem obscuros. O desenvolvimento de um modelo de camundongo adequado para a formação e progressão de IA, com base em fatores de risco humanos, é crucial para descobrir os mecanismos subjacentes e identificar potenciais alvos terapêuticos. Este estudo tem como objetivo construir um modelo de formação de IA sem ruptura em camundongos que mimetizam as características humanas de IA.

O círculo de Willis (CW) conecta e comunica a artéria carótida interna direita (ACI), a ACI esquerda e as artérias vertebrobasilares bilaterais. A CW serve como mecanismo compensatório em casos de oclusão ou estenose da ACI ou da artéria vertebral9. A artéria pterigopalatina (APP) é um ramo da ACI que fornece sangue para a parte externa do cérebro10. Com base na função compensatória do CW, a oclusão do PPA aumenta o fluxo sanguíneo na ACI. A combinação da ligadura da artéria carótida comum esquerda (ACC), artéria carótida externa direita (ECA) e artéria occipital (OcA) resulta em aumento do fluxo sanguíneo no CW, particularmente em ângulos estreitos, levando a alterações hemodinâmicas. Nesse modelo, o suprimento de sangue para o cérebro é suportado pela artéria vertebrobasilar e pela ACI direita. A ligadura do PPA não contribuiu para a mortalidade nos camundongos11.

Para induzir um modelo IA baseado na injeção de elastase, a hipertensão foi induzida pela liberação de angiotensina II (Ang-II) por meio de uma bomba de Alzet ou sal de acetato de desoxicorticosterona (DOCA)12,13. O elevado custo do Alzet e do DOCA deve ser tido em conta em experiências que envolvam um grande número de animais. Os níveis de hipertensão alcançados não foram significativamente diferentes entre a ligadura dos ramos posterior e inferior das artérias renais bilaterais ou apenas os ramos posteriores das artérias renais bilaterais. No entanto, a primeira abordagem resultou em maior disfunção renal14. Portanto, a ligadura das artérias renais posteriores bilaterais (pRA) é considerada um método racional para a maioria dos investigadores.

A elastase foi injetada no líquido cefalorraquidiano na cisterna basal direita por meio de uma única injeção estereotáxica12. O modelo IA baseado em injeção de elastase causou ruptura de 60% a 80% de IA três semanas após a injeção15,16, o que é muito curto para estudar a formação e o desenvolvimento de IA. Além disso, não há evidências que sugiram níveis elevados de elastase em humanos durante a formação de IA. Além disso, a injeção estereotáxica na cisterna direita está associada a alta mortalidade e incapacidade em camundongos, apresentando desafios significativos para iniciantes.

Neste estudo, um modelo de camundongo de IA sem ruptura em três meses foi construído com base em fatores de risco humanos. Este modelo elimina o alto custo associado ao DOCA e ao Alzet. Além disso, pode ser realizado usando apenas um estereomicroscópio e pode ser facilmente dominado por novatos.

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Protocolo

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Todos os procedimentos operacionais em camundongos aderiram aos critérios do Comitê de Revisão Ética e foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Universidade Jiaotong de Xangai. Camundongos machos C57BL/6 (8 semanas de idade, 20-25 g) foram alojados a uma temperatura de 22 °C com um ciclo claro/escuro de 12 h/12 h. O processo operacional é mostrado na Figura 1A. Resumidamente, nos animais anestesiados, a artéria carótida comum esquerda (ACC), a artéria carótida externa direita (ACE), a artéria occipital (OcA) e a artéria pterigopalatina (APP) foram ligadas para induzir alterações hemodinâmicas. A hipertensão foi posteriormente induzida pela ligadura das artérias renais bilaterais (bRA) uma semana após o início das alterações hemodinâmicas, e os animais foram alimentados com uma dieta contendo 8% de sal. As alterações hemodinâmicas e a formação de IA estão representadas na Figura 1B. Detalhes dos reagentes e equipamentos usados neste estudo são fornecidos na Tabela de Materiais.

1. Estabelecimento de AIU em camundongos com base em alterações hemodinâmicas e hipertensão

NOTA: Os camundongos foram mantidos em jejum por 12 h antes da operação. Os instrumentos cirúrgicos foram esterilizados embebendo-os em álcool 70% por pelo menos 30 min.

  1. Administre anestesia (seguindo protocolos aprovados institucionalmente) usando uma máquina de anestesia para pequenos animais com inalação de isoflurano a 2% em uma mistura de O2 (1 L / min) em uma almofada aquecida mantida a 37 ° C.
  2. Ligue o CCA esquerdo
    1. Faça uma incisão linear de 1 cm ao longo da linha média cervical. Dissecar o tecido subcutâneo e o platisma para expor a traqueia.
    2. Puxe a veia jugular e localize a bainha carotídea ao longo da traqueia (Figura 2A i,ii). Separe a ACC esquerda do nervo vago. Ligue a ACC esquerda com uma sutura de seda 6-0 (Figura 2A iii,iv).
  3. Ligue o ECA e o OcA corretos
    1. Exponha a estrutura anatômica do CCA, ICA, ECA, OcA, nervo vago e nervo hipoglosso no lado direito. Ligue a ECA direita com uma sutura de seda 6-0 (Figura 2A iii,iv).
    2. Isole o OcA e ligue-o com um 8-0 sutura de seda (Figura 2A v - viii). Desconecte o OcA usando duas micropinças retas.
      NOTA: A OCA, originando-se proximalmente da ECA, encontra-se abaixo do nervo hipoglosso (Figura 2A v - viii). A dissecação do OcA ajuda a expor a anatomia do PPA de forma eficaz.
  4. Ligue o PPA certo
    1. Isole o nervo hipoglosso da ACI. Coloque o algodão cirúrgico entre o nervo hipoglosso e a ACI para proteger o nervo de lesões relacionadas ao procedimento.
    2. Dissecar o tecido perivascular ao redor do PPA usando micropinças. Clamp o PPA e puxe-o temporariamente para cima levemente. Coloque um 8-0 sutura de seda entre o PPA e a ACI para ligar o PPA (Figura 2A ix,x).
    3. Ligue o PPA e mantenha distância suficiente entre o local da ligadura e a origem do PPA para garantir o fluxo sanguíneo no círculo de Willis (Figura 2A x).
      NOTA: O principal desafio nesta etapa é ligar o PPA dentro de um espaço operacional extremamente apertado sem prejudicar os nervos periféricos e as estruturas vasculares. Evite comprimir a traqueia durante a exposição ao PPA.
  5. Finalize a operação
    1. Esterilize o campo operacional com iodopovidona e suture a ferida. Monitore os camundongos até que eles se recuperem da anestesia.
  6. Induzir hipertensão
    1. Faça uma incisão na linha média de 2 cm de comprimento no nível da12ª vértebra nas costas. Corte os músculos dorsais para expor o rim. Clampeie o tecido adiposo ao redor do rim usando uma pinça e fixe o rim dentro da incisão muscular (Figura 2B i,ii).
    2. Isole o tecido adiposo ao redor do pedículo renal. Identifique o pRA em contato próximo com a veia renal (Figura 2B iii,iv). Prenda o pRA e puxe-o para cima usando uma micropinça reta. Dissecar a fáscia entre a APR e a veia renal com outra micropinça (Figura 2B v,vi).
      NOTA: Tenha cuidado para evitar danos à veia renal, que podem levar a um sangramento catastrófico.
    3. Ligue o pRA com uma sutura de seda 6-0 (Figura 2B vii, viii). Imediatamente após a ligadura, observe a formação de focos isquêmicos na parte superior do rim (Figura 2B ix,x). Suturar as incisões musculares e cutâneas.

2. Exame IA via ARM e estereomicroscópio

  1. Realize a angiografia por ressonância magnética (ARM) de 7,0 T por tempo de voo (TOF) três meses após a indução do aneurisma para avaliar a formação de IA.
    1. Eutanásia dos camundongos por meio de exsanguinação e luxação cervical após anestesia com isoflurano (seguindo protocolos aprovados institucionalmente). Detecte IA sob um estereomicroscópio conforme relatado anteriormente17.
    2. Infundir as amostras com PBS resfriado, seguido de paraformaldeído a 4% e, em seguida, Microfil para visualizar vasos e aneurismas.
    3. Definir um aneurisma como um abaulamento externo 1,5 vezes maior que a artéria-mãe, conforme observado por dois neurocirurgiões independentes 8,18.

3. Análises histológicas e imuno-histoquímicas

  1. Isole os círculos de Willis sob um microscópio. Fixar os provetes com paraformaldeído a 4% a 4 °C durante 24 h19.
  2. Processe as amostras em parafina e cortes congelados para coloração histológica e de imunofluorescência. Manchar as seções de parafina com as colorações EVG e Masson de acordo com as instruções do fabricante19.
  3. Incube as seções de parafina com uma solução de bloqueio para minimizar a ligação inespecífica.
  4. Incubar seções com anticorpos primários contra CD86 durante a noite a 4 °C. Após a incubação com um anticorpo secundário, desenvolva uma cor marrom reagindo as seções com DAB20.
  5. Realize a contracoloração com hematoxilina e monte as seções com uma solução de montagem aquosa20.

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Resultados

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Taxa de formação de IA
No grupo experimental (n = 15), 2 camundongos morreram na primeira semana após o procedimento inicial por razões desconhecidas. Um camundongo morreu de uma infecção na ferida nas costas no terceiro dia após o segundo procedimento, e outro camundongo morreu no dia 38 por razões desconhecidas, sem aneurismas detectados. No grupo controle (n = 5), todos os 5 camundongos sobreviveram até o sacrifício. Entre os camundongos sobreviventes do grupo experimental (n = 11), a pressão arter...

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Discussão

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Este estudo apresenta uma abordagem modificada para a construção de um modelo de IA em camundongos por meio da ligadura do PPA para induzir alterações hemodinâmicas aditivas em combinação com hipertensão. A imagem de ressonância magnética e a análise microscópica demonstraram alterações aneurismáticas significativas no círculo de Willis. As alterações patológicas observadas neste modelo são consistentes com as encontradas em amostras humanas. Este modelo de camundongo pode servir como um...

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Divulgações

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O manuscrito foi lido e aprovado por todos os autores nomeados, e não há outras pessoas que satisfaçam os critérios de autoria, mas não estejam listadas. Os autores não têm conflitos de interesse associados ao manuscrito e não houve apoio financeiro significativo para este trabalho que pudesse ter influenciado seu resultado. Os financiadores não estiveram envolvidos na coleta de dados, análise de dados ou redação de artigos. O manuscrito não foi publicado anteriormente online ou impresso, incluindo periódicos, sites ou blogs.

Agradecimentos

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Este estudo foi apoiado pelo National Facility for Translational Medicine (Shanghai TMSK-2021-147), pelo Shanghai Renji Hospital Research Project (RJTJ-QT-007) e pela China Postdoctoral Science Foundation (Número do Certificado: 2024M760658).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Angiografia por ressonância magnética 7.0 TBrukerBioSpec 70/20 
Camundongos C57BL / 6Charles River Laboratoriessexo:
anticorpo CD86CST91882
Elastic Van Gieson (EVG) manchaSolarbioG1597
MassonSolarbioG1340
Micro fórcepsShanghai Jinzhong Instrument Company
MicrofilFlow Tech Inc.MV-120
Máquina de anestesia para pequenos animais Microscópio estéreo RWDR500
Optical Instrument CompanyXYH-6B
SuturaShanghai Jinhuan Medical Company6-0, 8-0
macho Shanghai

Referências

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