1. Preparação de actina
A fonte de actina utilizado neste ensaio foi não-muscular plaquetas humanas (β-actina) obtido a partir de alíquotas Citoesqueleto Inc. Ações em 10 mg / ml são mantidas no congelador -70 º C. Para o ensaio, a actina é diluído a 0,4 mg / ml em tampão contendo 5 mM Tris pH 8, 0,2 mM CaCl 2, 0,2 mM ATP e 0,5 mM DTT, centrifugado a 20.000 g por 10 minutos a 4 º C. O sobrenadante, que é actina monomérica está pronto para ser polimerizada. Polimerização de actina é induzida pela adição de 50 mM KCl, 1 mM de ATP e 2 mM MgCl 2. A polimerização ocorre em temperatura ambiente por 1 hora.
2. Preparação de proteínas
Neste ensaio, estamos usando o C-terminal de talina, que foi purificada como uma proteína GST-marcados. A proteína a ser utilizada no ensaio é submetido a uma centrifugação de alta velocidade para pré-claro dos agregados antes da incubação com F-actina.
A proteína é girada a 100.000 g em uma ultracentrífuga Beckman por 20 minutos a 22 º C.
3. Actina-proteína Incubação
A quantidade de actina e proteína em um ensaio irá variar. Neste exemplo estamos usando actina em excesso. Normalmente, uma relação molar é calculado, por exemplo. uma proporção de 4:1 molar de actina à proteína.
No ensaio seguinte, o volume final de reação é de 150 mL. O buffer em que a proteína e F-actina são incubados dependerá da proteína a ser testado e sobre as condições exigidas. Neste exemplo, usamos uma solução tampão contendo 10 mM Tris pH 7,0, 1 mM de ATP, 0,2 mM DTT, 1 mM EGTA, 0,1 mM CaCl 2 e 2 mM MgCl 2. A proteína e F-actina são incubados no buffer por 1 hora à temperatura ambiente.
4. Sedimentação de F-actina
Após a incubação, as amostras são giradas em 100.000 g a 22 º C. Nós usamos uma ultracentrífuga Beckman no vídeo. O rotor é cuidadosamente removida para não atrapalhar as pelotas.
5. Análise de proteínas co-sedimentação com F-actina
Os sobrenadantes são cuidadosamente removidas por pipetagem em um tubo eppendorf e 5 X tampão de amostra Laemmli SDS-PAGE é adicionado. Um volume adequado de um tampão de amostra Laemmli X SDS-PAGE é adicionado à pellets restantes, pipetados cima e para baixo, e transferidos para novos tubos eppendorf. A quantidade relativa de proteína na pellets e sobrenadantes são analisados após a sua separação por SDS-PAGE e coloração Coomassie azul do gel ou Western blotting.
A fim de determinar a especificidade de interação da proteína com a actina, actina dependente da concentração co-sedimentações pode ser realizada. Para este tipo de experimento, uma quantidade fixa de proteína e uma série de quantidades crescentes de actina são incubados, ea análise é realizada como descrito acima.