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Este estudo incluiu 30 pacientes parcialmente edêtulos que buscaram cuidados prostodontistas na Clínica de Próteses Dentárias, Centro Clínico de Odontologia Universitária do Kosovo, entre setembro de 2021 e março de 2022. A aprovação ética foi obtida do conselho de revisão institucional (Aprovação nº 378/19), e todos os procedimentos seguiram os princípios da Declaração de Helsinque. Foi obtido consentimento informado por escrito de todos os participantes.
O tamanho da amostra foi determinado com base em pesquisas anteriores, que indicam que de 11 a 30 participantes são suficientes para obter resultados significativos em parâmetros microbianos e periodontais entre usuários deDPR 21,23. Assumindo um teste t pareado de duas caudas com nível alfa de 0,05, a análise de potência indicou que um tamanho de amostra de 28 participantes forneceria 80% de potência para detectar uma diferença estatisticamente significativa dessa magnitude. Para considerar possíveis desistências, inscrevemos 30 participantes. Além disso, um período de acompanhamento de três meses foi suficiente para observar um aumento da carga bacteriana nessespacientes 24.
Pacientes elegíveis eram usuários de próteses pela primeira vez, apresentando dentição natural tanto adjacente quanto antagônica. Os critérios de exclusão incluíam: profundidades de sondagem >4mm, estado imunocomprometido (por exemplo, quimioterapia), uso de antibióticos nos últimos 90 dias, tabagismo excessivo (>25 cigarros/dia) e comprometimento cognitivo que dificulta a compreensão dos procedimentos de DPR.
Todos os participantes receberam DPR com fecho retido fabricados com uma estrutura metálica de cobalto-cromo e resina acrílica (polimetil metacrilato). O projeto de cada RPD foi personalizado com base na classificação de edentulismo, qualidade da dorsal residual e considerações biomecânicas.
Procedimento de coleta de amostras
A coleta de amostras foi realizada exclusivamente nos dentes do pilar de dentaduras parciais removíveis (DPR) entre os pontos de tempo T0 e T3. Os participantes foram inicialmente solicitados a fazer gargarejos minuciosos com água para eliminar quaisquer resíduos de comida. Antes da coleta da amostra, o dente do pilar selecionado foi isolado usando rolos de algodão para manter um ambiente de trabalho seco. Dois pontos de papel estéreis (nº 35; 04 afilados) foram inseridos no sulco gengival nas partes mesial e distal da superfície bucal do dente e deixados no lugar por 1 minuto. As pontas de papel eram então transferidas para um microtubo estéril contendo 1,5 mL de solução salina normal e transportadas para um laboratório microbiológico designado. As amostras eram armazenadas a -20°C até o processo de isolamento do DNA.
Preparação e amplificação do DNA bacteriano:
O teste de parodontoscreen (Tabela de Materiais) foi empregado para identificar T. denticola, T. forsythia e P. gingivalis usandoRT-PCR 26. O teste consiste em: preparação de DNA; amplificação por PCR em tempo real usando reagentes específicos (uma mistura para amplificação bacteriana universal, uma mistura para amplificação bacteriana oportunista e uma mistura para amplificação genômica de DNA humano); e a gravação e interpretação dos resultados da amplificação.
A extração de DNA foi realizada usando um kit de extração de DNA (Tabela de Materiais), seguindo as diretrizes do fabricante para garantir a qualidade ideal do DNA. O teste utiliza análise qualitativa de PCR em tempo real com uma mistura de PCR selada com parafina. Essa mistura inclui um Controle Interno para verificar a validade da rodagem de PCR e um Controle de Ingestão de Amostras (SIC) para avaliar a qualidade da extração e confirmar DNA suficiente para amplificação precisa.
A amplificação por PCR foi realizada usando tiras e tampas especializadas, com reagentes incluindo solução de Taq-polimerase, mistura mestra sob camada de parafina, amostra de DNA e óleo mineral. O programa de PCR é o seguinte: (i) desnaturação inicial a 80 °C por 30 s, (ii) desnaturação a 94 °C por 1 min 30 s, (iii) 5 ciclos de 30 s a 94 °C (desnaturação), 15 s a 64 °C (ligação e alongamento do primer (detecção de fluorescência), (iv) 45 ciclos de 10 s a 94 °C (desnaturação), 15 s a 64°C (ligação e alongamento do primer, detecção de fluorescência), (v) 5 s a 94 °C (desnaturação final).
A detecção de fluorescência foi realizada nos canais de detecção Fam e Hex, exceto no tubo nº5, que continha o marcador (onde a fluorescência foi detectada nos canais Fam e Rox). O processo de amplificação foi realizado usando cicladores térmicos em tempo real (Tabela de Materiais). O Software RealTime para o instrumento (versão 7.9) foi usado para o registro automático, interpretação e análise quantitativa dos dados de amplificação da PCR, permitindo uma estimativa precisa da carga de patógenos.
As cargas microbianas foram representadas como "Lg (equivalentes genômicos/amostra)". Os resultados foram apresentados em três faixas no laudo do teste Parodontoscreen para cada paciente, baseados nos níveis de carga bacteriana da seguinte forma: P. gingivalis (normal <5,0; moderado ≥5,0; grave >6,0); T. forsythia (normal <5,0; moderada ≥5,0; grave >5,5); e T. denticola (normal <3,5; moderado ≥3,5; grave >5,0).
Exame clínico
O exame clínico incluiu um exame detalhado da condição periodontal dos dentes de pilar e não pilares em T0 e T3. O índice de placa (PI) foi avaliado usando uma sonda dentária de acordo com os critérios de Silness-Loe (0-3)27. A condição gengival foi avaliada em seis pontos da superfície do dente usando o índice gengival (IG) segundo os seguintes critérios: 0, sem inflamação; 1, inflamação leve; 2, inflamação com sangramento gengival durante a sondagem; 3, inflamação severa com possível sangramento gengivalespontâneo 28.
A profundidade de sondagem (PD) foi medida usando a sonda Williams desde a margem gengival até o final da profundidade do bolsoclínico 29. A mobilidade dentária (TM) foi determinada pela palpação bimanual nas direções horizontal e vertical, de acordo com o critério30 de Miller.
Todos os participantes do estudo receberam tratamento periodontal não cirúrgico adequado antes do exame clínico, incluindo remoção da placa dentária e do cálculo por meio de raspagem ultrasônica. Os participantes também foram instruídos em procedimentos de higiene bucal, como escovar os dentes e limpar dentaduras, além de receber orientações sobre como remover dentaduras à noite.
Análise estatística
Os dados foram analisados usando Microsoft Excel e IBM SPSS Statistics for Windows. Estatísticas descritivas (média, desvio padrão e intervalo) foram calculadas para idade, cargas microbianas e índices periodontais, incluindo PI, GI, DP e TM. Alterações nos parâmetros clínicos e microbiológicos entre antes (T0) e 3 meses após a inserção (T3) foram avaliadas usando o teste de Wilcoxon signed-rank para dados não paramétricos pareados. O teste exato de Fisher (simulação de Monte Carlo, bilateral) foi usado para avaliar dados categóricos relacionados à classificação de carga microbiana. O coeficiente de correlação de rank (ρ) de Spearman foi empregado para avaliar associações entre cargas microbianas e parâmetros periodontais. Um valor p < 0,05 foi considerado estatisticamente significativo para todas as análises.