Artigo de método

Um modelo de aterosclerose em camundongos induzido tanto pela ligadura parcial da carótida quanto pela superexpressão de PCSK9

548 vistas

DOI:

10.3791/69862

27 de fevereiro de 2026

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Um modelo reprodutível de camundongos induz a aterosclerose carotídea combinando o vírus adenomoassociado PCSK9 (PCSK9-AAV) - hipercolesterolemia mediada por dieta rica em gordura e a ligadura parcial da carotídea esquerda (PCL), recapitulando a fisiopatologia humana. Isso permite a indução rápida de lesões ateroscleróticas carótidas semelhantes às humanas em camundongos selvagens sem edição genômica, fornecendo uma ferramenta padronizada para facilitar a pesquisa sobre a aterosclerose carotídea.

Resumo

A falta de modelos rápidos e reprodutíveis de aterosclerose específica para carótidas em camundongos selvagens limita estudos translacionais de biologia e terapias de placas. Este protocolo descreve um método eficiente em tempo e não editado genômicamente para induzir a aterosclerose carótida reprodutível em camundongos C57BL/6, combinando superexpressão de PCSK9 mediada pelo vírus adenoassociado (AAV), uma dieta aterogênica rica em gordura e ligadura parcial da carótida esquerda (PCL). O objetivo é fornecer um fluxo de trabalho padronizado que reproduza características fisiopatológicas chave da doença carótida humana — hiperlipidemia e fluxo perturbado — sem exigir animais geneticamente modificados. Os métodos incluem dosagem e administração de PCSK9-AAV, preparação perioperatória, ligadura cirúrgica passo a passo da carótida esquerda, cuidados pós-operatórios, regime alimentar, coleta de tecidos e avaliação histológica incluindo coloração com Oil Red O e Verhoeff-Van Gieson. Os resultados indicam níveis elevados de colesterol circulante e lipoproteínas de baixa densidade em comparação com os valores de referência. Placas ateroscleróticas pronunciadas se desenvolvem na artéria carótida ligadoura esquerda, com acúmulo lipídico significativamente aumentado e espessamento significativo da intima média arterial em relação à artéria de controle direita não ligada. Esse protocolo padronizado melhora a reprodutibilidade e o acessibilidade para pesquisadores que estudam formação, progressão e estratégias de intervenção da placa carótida, além de facilitar comparações entre laboratórios de terapias experimentais.

Introdução

As doenças cardiovasculares (DCV) continuam sendo a principal causa de mortalidade global, com a aterosclerose servindo como sua base patológicacomum 1. A artéria carótida é um local crítico para lesões ateroscleróticas; estudar a aterosclerose carotídea é essencial para entender a patogênese das DCV e desenvolver estratégiasterapêuticas 2. Modelos animais são ferramentas indispensáveis para pesquisas in vivo sobre aterosclerose, mas modelos existentes frequentemente apresentam limitações em termos de conveniência e capacidade de recapitular características fisiopatológicas humanas.

Comparada à aterosclerose em outros locais arteriosos (por exemplo, aorta, artéria femoral), a formação da aterosclerose carotídea é mais fortemente influenciada pela hemodinâmica. A artéria carótida sofre alto estresse de cisalhamento (10-15 dyn/cm², dynes por centímetro quadrado), ficando atrás apenas da artéria coronária (6-45 dyn/cm²)3. Particularmente na bifurcação da carótida, ocorre o fluxo de vórtice, caracterizado por uma tensão de cisalhamento oscilatória perturbada. Esse ambiente hemodinâmico anormal desencadeia ativação pró-inflamatória sustentada das células endoteliais locais, caracterizada pela expressão aumentada de moléculas de adesão e quimiocinas que facilitam o recrutamento de monócitos e o início daaterosclerose 3. Além disso, lesões ateroscleróticas humanas de alto risco frequentemente apresentam grau de estenose superior a 70%, definido como a redução percentual do diâmetro luminal causada pelaplaca 4. Assim, modelos animais capazes de induzir estenose aterosclerótica severa são importantes.

O modelo de ligadura parcial da carótida (LCP) é um modelo de aterosclerose induzido por distúrbios persistentes do fluxo sanguíneo, que apresenta as vantagens de curto tempo de modelagem e lesões graves5. A Apolipoproteína E (ApoE) é uma proteína fundamental envolvida no metabolismo e eliminação de colesterol circulante e lipoproteínas ricas em triglicéridos, desempenhando um papel fundamental na manutenção da homeostase lipídica plasmática. No entanto, o modelo tradicional PCL usando camundongos ApoE-knockout (ApoE⁻/⁻) é difícil e caro de criar5. Quando é necessário um knockout do gene alvo, o knockout duplo do gene (tanto do gene alvo quanto do gene ApoE) é necessário, complicando ainda mais o processo de modelagem. Em contraste, quando apenas camundongos selvagens tipo C57BL/6 são usados para PCL, o modelo não apresenta hipercolesterolemia, um fator de risco central para aterosclerose humana, e raramente apresenta lesões ateroscleróticas ricas em lipídiosproeminentes 6,7. Outros modelos, como camundongos ApoE⁻/⁻ ou LDLR-knockout (LDLR⁻/⁻) alimentados com uma dieta rica em gordura (HFD), são amplamente usados em pesquisas sobre aterosclerose para estudar a aterosclerose aórtica. No entanto, esses modelos não incorporam o efeito do fluxo sanguíneo perturbado e não podem formar aterosclerose grave em um curto período de tempo. Estudos anteriores demonstraram que, após 3 meses de alimentação com HFD, camundongos ApoE⁻/⁻ ou LDLR⁻/⁻ desenvolvem apenas placas ateroscleróticas leves nas regiões das artérias aórtica ou braquiocefálica, enquanto não há lesões evidentes nas artériascarótidas 8,9.

A proproteína convertase subtilisina/kexina tipo 9 (PCSK9) é um regulador chave do metabolismo do colesterol de lipoproteína de baixa densidade (LDL-C): ela promove a degradação dos receptores de LDL, aumentando assim os níveis séricos de LDL-C10. O vírus adenoassociado recombinante que expressa PCSK9 (PCSK9-AAV) possibilita a hipercolesterolemia controlável por dose em camundongos WT sem a necessidade de modificaçõesgenéticas 11. A combinação da hipercolesterolemia induzida por PCSK9-AAV, HFD (que agrava ainda mais distúrbios do metabolismo lipídico) e PCL (que induz distúrbios hemodinâmicos locais) permite a construção de um modelo animal que incorpora dois fatores de risco chave para a aterosclerose humana: hipercolesterolemia e distúrbios do fluxo.

Com base no progresso de pesquisasanteriores 12, esse protocolo estabelece um método padronizado para induzir a aterosclerose carotídea em camundongos C57BL/6. Comparado aos protocolos modelo existentes, oferece três vantagens principais: (1) Relevância fisiopatológica: recapitula simultaneamente a hipercolesterolemia e a perturbação do fluxo, resultando em lesões carotídeas que apresentam características semelhantes à aterosclerose humana em estágio médio a avançado; (2) Reprodutibilidade: Parametrização detalhada da dosagem de AAV, procedimentos cirúrgicos e controle dietético reduz a variabilidade entre laboratórios; (3) Pontualidade: O período total de modelagem é de 5 semanas, reduzindo significativamente o tempo necessário para o estabelecimento do modelo.

Este protocolo é adequado para pesquisadores que estudam biologia da parede vascular, avaliam a eficácia de medicamentos antiateroscleróticos e exploram a interação entre hemodinâmica e metabolismo lipídico na aterosclerose. Notavelmente, esse protocolo é um modelo focado em carótides, que não pode replicar completamente todos os aspectos dos fatores de risco sistêmicos humanos para aterosclerose, incluindo, mas não se limitando a, tabagismo, diabetes mellitus, hipertensão e obesidade. Abaixo está um guia passo a passo para o estabelecimento de modelos e avaliação de lesões.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

Todos os procedimentos foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal do Comitê de Ética em Experimentos com Animais do Peking Union Medical College (ACUC-A02-2024-006) e estão em conformidade com o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório.

1. Preparação experimental de animais

  1. Compre C57BL/6 camundongos machos de 6 a 8 semanas (peso corporal: 22-25 g).
  2. Camundongos domésticos em um ambiente específico livre de patógenos (FPS) sob condições estritamente controladas: temperatura (23 ± 1°C), umidade (50 ± 5%) e ciclo de 12 horas luz/escuro (iluminação: 07:00-19:00).
  3. Antes do experimento, forneça aos camundongos uma dieta padrão de comida (proporção de 10% de gordura energética) e água estéril, com acesso livre a comida e água, por um período de aclimatação de 1 semana.

2. Preparação e administração do PCSK9 - AAV

ATENÇÃO: Trate o AAV como um risco de biossegurança e realize todos os procedimentos sob o nível institucional adequado de biossegurança (tipicamente BSL-2). Use luvas duplas, proteção para os olhos e roupas de proteção. Evite a geração de aerossóis durante o manuseio. Descontamine materiais contaminados por AAV com desinfetantes apropriados (por exemplo, 10% de água sanitária) e siga protocolos claramente definidos de responsabilidade e resposta a incidentes. Todos os resíduos contaminados por vírus devem ser inativados por imersão em desinfetantes contendo cloro.

  1. Compre PCSK9-AAV recombinante (rAAV8-HCRApoE/hAAT-D377Y-mPCSK9).
  2. Verifique o título do AAV por PCR quantitativa em tempo real direcionado ao promotor do CMV: o título final foi de 6,10×10¹³ vg/mL (genomas do vetor por mililitro). Armazene o AAV a -80°C e evite ciclos repetidos de congelamento-descongelamento (≤3 ciclos de congelamento-descongelamento).
  3. Descongele o AAV no gelo por 15-20 minutos, depois inverta suavemente o tubo da centrífuga 3-5 vezes para misturar (evitando vórtice).
  4. Diluir o PCSK9-AAV com soro salino tampão fosfatado estéril (PBS) até uma concentração final de 2×10¹¹ vg/200 μL por camundongo.
  5. Administrar via injeção na veia caudal (IV): Fixe o camundongo usando um suporte para injeção de cauda visualizando veias e injete lentamente 200 μL de AAV diluído usando uma seringa de insulina (taxa de injeção: 10 μL/s). O momento da injeção é 1 semana antes do LCP (Figura 1A).

3. Preparação pré-operatória para ligadura parcial da carótida

ATENÇÃO: O tribromoetanol é um reagente controlado com risco de overdose. Administre estritamente de acordo com o peso corporal, evite injeções repetidas e documente com precisão o tempo e o volume de dosagem. Armazene em um recipiente trancado e garanta que a preparação e o uso sejam realizados apenas por profissionais treinados. Em casos de suspeita de overdose, inicie o gerenciamento de emergências e documente o incidente.

  1. Anestesiar camundongos por meio de injeção intraperitoneal (i.p.) de tribromoetanol (2,5% Avertin, 0,18 mL/10 g) até que o reflexo de endireitamento seja perdido (aproximadamente 2-3 minutos). Depois, transfira o mouse para uma bolsa térmica (37 ± 0,5°C). Verifique o efeito anestésico beliscando os dedos dos pés.
    NOTA: A anestesia é fundamental para o sucesso da cirurgia. Para minimizar os riscos anestésicos, múltiplas injeções anestésicas devem ser evitadas. Antes do início da cirurgia, a dose anestésica deve ser determinada com base na duração cirúrgica prevista. Além disso, recomenda-se que a duração cirúrgica de cada camundongo seja <30 minutos para mitigar os riscos associados a procedimentos prolongados.
  2. Durante a cirurgia, verifique a frequência respiratória do rato (normal: 40-60 respirações/min) e o reflexo plantar beliscando suavemente a almofada da pata traseira com pinças a cada 5 minutos.
  3. Aplique creme depilatório cuidadosamente na pele cervical anterior do camundongo. Após 2-3 minutos, remova os pelos cervicais anteriores com cotonetes e limpe os pelos residuais com soro fisiológico. Desinfete a pele exposta com 5% de povidona-iodo três vezes.
  4. Realize a cirurgia em um armário de biossegurança em uma sala asséptica de ratos. Esterilize o espaço cirúrgico com luz ultravioleta para manter a sepse o máximo possível e use todos os instrumentos metálicos com autoclave.
    NOTA: Um ambiente asséptico e uma desinfecção completa são essenciais para garantir a sobrevivência pós-operatória e a estabilidade fisiológica do camundongo.

4. Ligadura parcial da carótida - procedimento cirúrgico

  1. Faça uma incisão na linha média (aproximadamente 1,0-1,5 cm de comprimento) no pescoço do camundongo usando tesoura cirúrgica estéril; separar os tecidos subcutâneos e o músculo esternocleidomastoide com pinças contundentes para expor a artéria carótida comum esquerda (LCCA).
    NOTA: A área operatória deve ser continuamente umedecida com soro normal aquecido para evitar traumas adicionais causados por dessecação vascular/tecidual.
  2. Separe de forma direta o LCCA do nervo vago (localizado próximo à artéria) para evitar danos ao nervo vago (que podem causar depressão respiratória).
  3. Dissecar para cima ao longo do LCCA para expor a artéria carótida interna (ICA), a artéria carótida externa (ECA), a artéria occipital (OA) e a artéria tireoide superior (STA) (Figura 1B).
  4. Use pontos de seda 6-0 estéreis para ligar a artéria carótida externa esquerda acima da ATS. Depois, use outro ponto de seda estéril 6-0 para ligar as raízes do ACI e do OA simultaneamente.
    NOTA: Evite ligar nervos e outros tecidos ao redor. Bloqueie completamente o fluxo de derivação de ECA/ICA/OA enquanto preserva certo grau de fluxo retrógrado em LCCA. O efeito da ligadura deve ser avaliado observando o status de sangramento/fluxo sanguíneo e a pulsação arterial distal.
  5. Verifique se há sangramento no local da cirurgia. Se houver sangramento, pressione suavemente com cotonetes estéreis por 30 a 60 segundos para alcançar a hemostasia. Suture a pele com adesivo de tecido ou sutura cirúrgica.
    NOTA: Evite que excesso de adesivo tecidual penetre no tecido subcutâneo.

5. Cuidados pós-parcial com laqueação da carótida e intervenção na dieta rica em gordura

  1. Administrar 0,5 mL de soro fisiológico normal morno por meio de injeção intraperitoneal para reposição de fluido no pós-operatório.
  2. Aliviar a dor com injeção subcutânea de meloxicam (0,1 mg/kg) imediatamente após a cirurgia e 12 horas após a cirurgia.
  3. Coloque o rato em uma gaiola de recuperação aquecida (37°C) até que o reflexo de endireitamento seja restaurado (aproximadamente 15-30 minutos). Monitore o camundongo em busca de comportamentos anormais (por exemplo, letargia, dispneia) dentro de 24 horas após a operação.
  4. Forneça antibióticos para prevenir infecções após a cirurgia, conforme recomendado pelos veterinários, como água potável contendo antibióticos por 7 dias após a cirurgia.
  5. Alimente com HFD estilo ocidental (com 40% de relação de gordura energética e 1,25% de colesterol) até a avaliação da lesão (4 semanas após a cirurgia).
    NOTA: Armazene o HFD a 4°C para evitar a oxidação da gordura e use-o dentro de 2 semanas após a abertura. Substitua o HFD a cada 2 dias para garantir a frescura e monitore a ingestão diária de comida dos camundongos (ingestão normal: aproximadamente 4-5 g por camundongo por dia). Sincronizar a alimentação com HFD com hipercolesterolemia induzida por PCSK9-AAV maximiza a deposição lipídica na artéria carótida; atrasar o início da DCF reduzirá a gravidade da lesão.

6. Coleta e processamento de amostras

ATENÇÃO: O paraformaldeído emite vapores tóxicos. A preparação, uso e remoção devem ser realizados em uma exaustão química usando EPI apropriado (luvas, óculos de proteção e jaleco). Descarte resíduos utilizando procedimentos estabelecidos de neutralização e coleta de resíduos químicos. Os fixadores devem ser neutralizados e coletados centralmente, de acordo com os protocolos institucionais de descarte de resíduos líquidos.

NOTA: As amostras ateroscleróticas humanas da carótida neste estudo foram obtidas de pacientes com estenose da artéria carótida que passaram por endarterectomia carotídea. Este estudo está em conformidade com a Declaração de Helsinque e foi aprovado pelo Conselho de Ética Institucional do Hospital da Faculdade de Medicina da União de Pequim (PUMCH) (nº JS-2966). Todos os participantes do estudo forneceram consentimento informado por escrito.

  1. Às 4 semanas após a operação, anestesiamos camundongos por meio de injeção intraperitoneal de tribromoetanol.
  2. Realize toracotomia bilateral em camundongos anestesiados e perfure o coração para coletar amostras de sangue para testes de lipídios sanguíneos. Subsequentemente, perfunda o ventrículo esquerdo com 20 mL de PBS gelado para eliminar o sangue residual dos vasos sanguíneos em 3-6 mL/min. Observe mudanças na cor do tecido como um indicador visual da conclusão da perfusão.
    NOTA: Se permitido pela ética/regulamentação institucional, métodos alternativos podem ser usados se forem claramente declarados e realizados em conformidade com os requisitos do Comitê Local de Cuidado e Uso Institucional de Animais (IACUC). Carcaças de animais devem ser incineradas pela equipe veterinária institucional ou contratados autorizados conforme regulamentações de resíduos biológicos ou processadas por meio de procedimentos aprovados de descarte de riscos biológicos.
  3. Dissecar e colher as artérias carótidas junto com o coração, isolar a artéria carótida bilateral ao microscópio e fixá-la em paraformaldeído (PFA) a 4°C por 24 horas.
  4. Transfira a artéria carótida fixa para uma solução de sacarose a 30% (dissolvida em PBS) e incube a 4°C por 24 horas (até o tecido afundar). Infunda a artéria em um composto de temperatura de corte ideal (OCT) e armazena a -80°C.
  5. Use um crióstato para cortar seções transversais de 5 μm de espessura da artéria carótida comum esquerda (localização da seção: 1 mm proximal ao local da ligadura; temperatura de corte: -20°C ~ -22°C, ajuste fino com base no teor de água do tecido). Usando uma escova fina pré-resfriada, transfira delicadamente a seção para a placa anti-rolagem do criostat para garantir que fique plana. Segure um ferrolho revestido de poli-L-lisina em um ângulo quase vertical e traga-o lentamente em contato com a seção.
    NOTA: A etapa de perfusão é fundamental para remover sangue residual; caso contrário, isso interferirá na coloração da lesão. Fixação arterial completa em até 30 minutos após a eutanásia para preservar a morfologia tecidual.

7. Avaliação de lesão aterosclerótica 1 - Coloração com óleo vermelho O

  1. Secar as seções ao ar em temperatura ambiente (20-25 °C) por 30 minutos; Deixe de molho em isopropanol a 60% por 1 minuto, depois incube em solução de trabalho de óleo vermelho O (diluída 3:2 com 60% de isopropanol) em temperatura ambiente (20-25 °C) por 10 minutos.
  2. Diferencie imergindo completamente a lâmina em 60% de isopropanol em temperatura ambiente por ~5-10 s com agitação suave para remover o corante não ligado; colorir com hematoxilina por 30 segundos; Enxágue com água da torneira por 5 segundos (para azular os núcleos celulares).
  3. Capturar imagens de seção usando scanner de lâminas ou microscópio óptico com ampliação 5x, 10x e 20x; Analise quantitativamente a área de deposição lipídica usando o software ImageJ (Versão 1.54p) - calcule a porcentagem da área O-positiva do Óleo Vermelho em relação à área íntima total.
  4. Procedimentos de quantificação da Imagem J
    1. Abra a imagem; selecione a ferramenta Seleção Livre para delinear manualmente a área intima-media. Navegue até Ferramentas de Análise > > Gerenciador de ROI e clique em Adicionar.
    2. Vá em Imagem > ajuste > limiar de cor; ajuste os parâmetros de matiz e brilho para corresponder às regiões O-positivas do Vermelho Óleo. Clique em Selecionar e depois Adicionar ao Gerenciador de ROI.
    3. Selecione tanto o ROI da intima-media quanto o ROI manchado, clique AND para obter a área O-positivo do Vermelho Óleo na região da intima-media.
    4. Clique em Adicionar e Medir para calcular as áreas das regiões de mídia intima e Oil Red O-positivo.
    5. Fórmula de cálculo:
      Área O Vermelho Óleo (%) = (Vermelho Óleo O_positive_area / intimal_media_area) × 100

8. Avaliação de lesão aterosclerótica 2 - Coloração de Van Gieson de Verhoeff

  1. Recuperar seções congeladas embutidas com composto OCT em slides.
  2. Imerga os slides em água destilada à temperatura ambiente (20-25°C) por 10-15 minutos com agitação suave (2-3 vezes) para dissolver completamente o composto OCT.
  3. Descarte a água contendo composto OCT e depois enxágue as seções com água destilada fresca por 2 minutos para eliminar o composto residual de OCT.
  4. Incube as seções na coloração de Verhoeff (contendo hematoxilina, iodo e cloreto férrico) em temperatura ambiente (20-25°C) por 15 minutos, agitando suavemente o suporte de lâminas 2-3 vezes durante a incubação para garantir uma coloração uniforme.
  5. Enxágue rapidamente as seções com água destilada duas vezes, 10 segundos cada vez.
  6. Diferencie em solução de cloreto férrico a 2% por 30-60 segundos; observe ao microscópio até que as fibras elásticas apareçam azul-escuras e o fundo pareça cinza. Enxágue com água destilada duas vezes, 1 minuto cada vez.
  7. Trate as seções em solução de tiosulfato de sódio a 5% por 1-2 minutos para remover o iodo residual.
  8. Enxágue com água destilada por 2 minutos e depois contra-tinga com a coloração Van Gieson (fucsina ácida + ácido pícrico) por 5 minutos para tingir as fibras de colágeno até ficarem vermelhas brilhantes.
  9. Desidrate sequencialmente em etanol 95% (duas vezes, 1 min cada) e 100% etanol (duas vezes, 1 min cada); limpo em xileno por 5 minutos; As seções eram cobertas usando um meio de montagem em resina sintética.
  10. Capturar imagens de seção; Use softwares digitais de análise de imagens para medir a espessura intima ou intimal das placas em quatro direções (anterior, posterior, esquerda, direita) usando a ferramenta de medição de comprimento, e então calcule o valor médio.
    1. Abra o slide, dê zoom para a seção transversal do recipiente-alvo e clique na Ferramenta de Medição.
    2. Clique sequencialmente nas bordas interna da íntima e nas bordas externa da íntima/média nas direções anterior, posterior, esquerda e direita, e registre os quatro valores de espessura.
    3. Calcule o valor médio e registre as medições.
      Valor médio = (anterior + posterior + esquerdo + direito) ÷ 4

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

Os resultados da coloração com óleo vermelho O mostraram que as artérias ligadas apresentaram formação severa de placas ateroscleróticas, núcleos lipídicos evidentes e áreas necróticas. A proporção de regiões lipídicas foi significativamente maior na artéria carótida esquerda do que na artéria carótida direita controle (p < 0,001) (Figura 2A). A coloração VVG revelou destruição ou desaparecimento das fibras elásticas na íntima, juntamente com espessamento si...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

Este protocolo descreve um método padronizado para estabelecer um modelo de aterosclerose carótida em camundongos C57BL/6, combinando hipercolesterolemia induzida por PCSK9-AAV, dieta rica em gordura (HFD) e ligadura parcial da artéria carótida comum (PCL).

Comparado a modelos tradicionais como ApoE -/- ou LDLR-/- ou modelos PCL usando WTmouse 5, este modelo oferece vantagens únicas na pesquisa em aterosclerose. Primeiro, camun...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Esse trabalho recebeu financiamento da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (82470516, 8227022021), do Fundo Especial de Pesquisa para Universidades Centrais, da Faculdade de Medicina da União de Pequim (3332025111), do Financiamento Nacional de Pesquisa Clínica de Alto Nível em Hospitais (2025-PUMCH-A-181, 2025-PUMCH-D-001) e da Fundação de Ciências Naturais da Província de Sichuan (2024NSFC0715).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Sutura de nylon 6-0 estérilJinhuan MedicalF602NA
C57BL/6 camundongosCentro de Organismos Modelo de Xangai, Inc. (SMOC)SM-001NA
Chow deitBiografia de XietongNão. XT93GNA
Criostato Leica CM1950NA
Creme depilatórioVeetRB Health LLCNA
Dieta rica em gorduraBiografia de XietongXT108cNA
OCTSakura4582NA
Solução Óleo Vermelho OServiceBio&NBSP;G1017-100mLNA
Microscópio ópticoLeicaDM4BNA
Paraformaldeído Servicebio G1101-500mLNA
PCSK9-AAVWZBioscience AV208001-AV8NA
Slides revestidos com poli-L-lisinaSigmaP0425NA
Scanner de slides3DHISTECHPanorámica ESCANEADANA
SulfametoxazolSelleckS1915 NA
Cola de tecido3M Vetbond1469SBNA
Suporte de injeção de rabo de camundongo visualizando veias  Ciência & Ciência Jinan Yiyan Technology Development Co., LtdYLS-Q9GNA

Referências

  1. Vaduganathan, M., Mensah, G. A., Turco, J. V., Fuster, V., Roth, G. A. The global burden of cardiovascular diseases and risk: A compass for future health. J Am Coll Cardiol. 80 (25), 2361-2371 (2022).
  2. Saba, L., et al. Carotid artery atherosclerosis: Mechanisms of instability and clinical implications. Eur Heart J. 46 (10), 904-921 (2025).
  3. Soehnlein, O., Lutgens, E., Döring, Y. Distinct inflammatory pathways shape atherosclerosis in different vascular beds. Eur Heart J. 46 (33), 3261-3272 (2025).
  4. Aburahma, A. F., et al. Society for vascular surgery clinical practice guidelines for management of extracranial cerebrovascular disease. J Vasc Surg. 75 (1s), 4s-22s (2022).
  5. Nam, D., et al. A model of disturbed flow-induced atherosclerosis in mouse carotid artery by partial ligation and a simple method of RNA isolation from carotid endothelium. J Vis Exp. (40), e1861(2010).
  6. Nam, D., et al. Partial carotid ligation is a model of acutely induced disturbed flow, leading to rapid endothelial dysfunction and atherosclerosis. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 297 (4), H1535-H1543 (2009).
  7. Ni, C. W., et al. Discovery of novel mechanosensitive genes in vivo using mouse carotid artery endothelium exposed to disturbed flow. Blood. 116 (15), e66-e73 (2010).
  8. Nakashima, Y., Plump, A. S., Raines, E. W., Breslow, J. L., Ross, R. Apoe-deficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree. Arterioscler Thromb. 14 (1), 133-140 (1994).
  9. Ma, Y., et al. Hyperlipidemia and atherosclerotic lesion development in ldlr-deficient mice on a long-term high-fat diet. PLoS One. 7 (4), e35835(2012).
  10. Maxwell, K. N., Fisher, E. A., Breslow, J. L. Overexpression of pcsk9 accelerates the degradation of the ldlr in a post-endoplasmic reticulum compartment. Proc Natl Acad Sci U S A. 102 (6), 2069-2074 (2005).
  11. Keeter, W. C., Carter, N. M., Nadler, J. L., Galkina, E. V. The aav-pcsk9 murine model of atherosclerosis and metabolic dysfunction. Eur Heart J Open. 2 (3), oeac028(2022).
  12. Kumar, S., Kang, D. W., Rezvan, A., Jo, H. Accelerated atherosclerosis development in c57bl6 mice by overexpressing aav-mediated pcsk9 and partial carotid ligation. Lab Invest. 97 (8), 935-945 (2017).
  13. Gogulamudi, V. R., Durrant, J. R., Adeyemo, A. O., Ho, H. M., Walker, A. E., Lesniewski, L. A. Advancing age increases the size and severity of spontaneous atheromas in mouse models of atherosclerosis. Geroscience. 45 (3), 1913-1931 (2023).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

Solicitar permissão

Etiquetas

Superexpress o de PCSK9Dieta Rica em GorduraCamundongos C57BL 6V rus Adeno AssociadoForma o de PlacasColora o com Oil Red OColora o de Verhoeff Van GiesonHiperlipidemia

Artigos relacionados