Aqui, apresentamos um protocolo para estabelecer modelos animais reprodutíveis de lesão cutânea induzida por radiação usando radiação β-radiação de estrôncio-90 (90Sr). Esse protocolo permite a investigação dos efeitos da dose e respostas inflamatórias em danos superficiais por radiação, fornecendo uma base para futuros estudos mecanicistas.
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Artigo de método
Desenvolvimento e Aplicação de Modelos Animais de Lesão Cutânea Induzida por Radiação Baseados em Estrôncio-90 β-rays
Neste artigo
Resumo
Resumo
A lesão de pele induzida por radiação é uma complicação grave frequentemente encontrada em emergências de acidentes nucleares ou ocupações relacionadas à radiação, exigindo o estabelecimento de modelos padronizados de lesões focados em especificidade para pesquisas mecanicistas. Raios X gama convencionais ou de alta energia, com forte capacidade de penetração, induzem danos na pele, mas inevitavelmente desencadeiam reações complexas de tecidos profundos, interferindo nas investigações dos efeitos superficiais da pele. Dado o risco de danos superficiais nos tecidos acentuados por radiação β em cenários como queda radioativa nuclear, desenvolvemos um modelo animal baseado em fontes de estrôncio-90 (90Sr) de β raios para lesão cutânea induzida por radiação para enfrentar esse desafio. Esse modelo aproveita a propriedade física dos raios β, que depositam energia predominantemente em tecidos superficiais, permitindo a simulação precisa dos efeitos biológicos localizados causados pelo contato de material de radiação com a pele, enquanto evita as possíveis respostas sistêmicas desencadeadas pela radiação de penetração profunda. Este estudo delineia sistematicamente todo o fluxo de trabalho, incluindo a parametrização de fontes de radiação de 90Sr, protocolos de irradiação animal e métodos patológicos de coleta e avaliação de espécimes. Esse modelo fornece uma ferramenta animal confiável para elucidar os mecanismos fisiopatológicos das lesões cutâneas induzidas por radiação e estimular o desenvolvimento de investigações mecanicistas ou estratégias terapêuticas.
Introdução
A radiação ionizante é amplamente utilizada em diversos campos, incluindo energia, medicina, indústria e agricultura. Embora traga benefícios significativos, também representa ameaças diretas e potenciais à saúde humana, especialmente para trabalhadores ocupacionais e pacientes com câncer 1,2. Considerando que a pele é o maior órgão do corpo e forma sua cobertura externa, ela inevitavelmente serve como o alvo principal após a exposição à radiação ionizante. Composta pela epiderme, derme e tecido subcutâneo, a pele realiza funções fisiológicas indispensáveis. No entanto, os mecanismos subjacentes à lesão cutânea induzida pela radiação e as estratégias eficazes para sua prevenção e tratamento permanecem insuficientemente esclarecidos. Portanto, há uma necessidade crítica de um modelo experimental padronizado e reprodutível que tenha como alvo específico a lesão cutânea induzida por radiação na camada superficial e seja adequado para estudos mecanicistas e intervencionistas. Consequentemente, para avançar a pesquisa nessa área, estabelecemos com sucesso um novo modelo animal de lesão cutânea causada por radiação.
Em estudos convencionais, radiação de alta energia, como raios-X ou raios γ, é comumente usada para induzir lesão cutânea emmodelos 3,4. Esses tipos de radiação possuem alta capacidade de penetração, permitindo que interajam facilmente com tecidos e órgãos subcutâneos e mais profundos. Consequentemente, ao induzir danos cutâneos, eles também desencadeiam respostas extensas em tecidos mais profundos, o que compromete a especificidade do modelo para pesquisas focadas na pele e complica significativamente a interpretação dosresultados 5. Essa falta de especificidade tecidular representa uma grande limitação quando o objetivo principal da pesquisa é investigar lesões por radiação restrita na pele, e não os efeitos sistêmicos da radiação.
Em contraste, desenvolvemos um modelo de lesão cutânea mais específico e refinado, aproveitando as características da radiação β do estrôncio-90 (90Sr), nomeadamente sua baixa energia e penetração limitada nos tecidos. Pesquisas mostraram que o dano causado pelos raios β está predominantemente confinado às camadas epidérmica e dérmica dapele, minimizando assim efetivamente a interferência da resposta dos tecidos profundos. Comparado aos modelos de radiação de alta penetração, essa abordagem permite a localização precisa da lesão, redução do envolvimento dos órgãos viscerais e melhor interpretabilidade das alterações patológicas e inflamatórias específicas da pele. Além disso, o uso de raios β para estabelecer um modelo de radiodermatite também é justificado por considerações críticas sobre potenciais ameaças do mundo real. As lições do acidente nuclear de Chernobyl demonstram que uma exposição externa em alta dose a partículas de β pode causar queimaduras graves de β e até ferimentosfatais 7. Além disso, existem potenciais riscos à saúde a longo prazo causados pela radiação β proveniente de contaminantes por radiação 8,9.
Para explorar esses mecanismos, também é crucial selecionar um animal apropriado para ser submetido à irradiação de raios β. Embora os mini-suínos tenham sido usados com sucesso para estabelecer modelos de lesão cutânea induzida por raiosde β 10,11, sua aplicabilidade geral em pesquisas é mais limitada em comparação com camundongos. Além disso, uma característica fundamental da pele de camundongos é sua alta densidade de folículos capilares, o que a torna um modelo adequado para explorar os efeitos da radiação nos apêndices cutâneos no estudo de lesões cutâneas por radiação. Assim, usar um modelo de camundongo traz vantagens notáveis. Além disso, os modelos de camundongos oferecem vantagens práticas, incluindo menor custo, maior capacidade de produção, manipulabilidade genética e maior compatibilidade com análises moleculares e imunológicas, tornando-os particularmente adequados para estudos mecanicistas e triagem por intervenção.
Citocinas inflamatórias são pequenas moléculas ou proteínas biologicamente ativas, secretadas tanto por células imunes quanto não imunes, amplamente classificadas como pró-inflamatórias ou anti-inflamatórias. Em danos de pele induzidos pela radiação ionizante, essas citocinas são fatores-chave de condução. Na verdade, esse tipo de dano é fundamentalmente uma doença inflamatória descontrolada, principalmente orquestrada por uma rede de citocinas equimiocinas 12. A IL-6 é um mediador pró-inflamatório chave e uma das citocinas críticas envolvidas nas respostas inflamatórias agudas à radiação einfecção 13,14,15. Estudos recentes mostraram que a radiação ativa a via de sinalização IL-6/STAT3 e a senescência celular, promovendo assim a infiltração das células imunológicas e contribuindo para dermatite por radiação, inflamação da pele e quedade cabelo 16. Curiosamente, também apresenta efeitos radioprotetores em contextos específicos17,18. Em contraste, a IL-10 é um importante regulador anti-inflamatório. Suas funções incluem limitar respostas inflamatórias excessivas, fortalecer a imunidade inata, promover mecanismos de reparação tecidular e manter a homeostase dos tecidos durante infecção einflamação 19,20. A IL-10 frequentemente atua em conjunto com a IL-6, demonstrando efeitos benéficos na promoção da cicatrização dérmica, redução da formação de cicatrizes e amenização de certas condições dermatológicas 21,22,23. Embora pesquisas existentes tenham demonstrado que IL-6 e IL-10 respondem à radiação e exposição ultravioleta, respectivamente16, 24, 25, suas respostas à radiação β permanecem incertas.
Em resumo, este estudo tem como objetivo estabelecer um modelo camundongo estável e reprodutível de lesão cutânea induzida por radiação por radiação β 90. Este modelo é especialmente adequado para estudos focados em lesão cutânea por radiação, cenários de exposição à radiação β, regulação inflamatória, danos ao apêndice da pele e remodelação tecidular a longo prazo. No entanto, não se destina a replicar radioterapia de tecidos profundos ou tumores sólidos, que normalmente requerem radiação altamente penetrante, como raios-X ou raios γ. Apresentamos os procedimentos para o estabelecimento do modelo e para validação sistemática de sua viabilidade por meio de avaliações multinível, incluindo pontuação de lesão por radiação, exame histológico e expressão molecular de citocinas-chave (IL-6 e IL-10). A análise dinâmica desses parâmetros ajudará a esclarecer os papéis regulatórios de IL-6 e IL-10 no processo de lesão, fornecendo assim uma base experimental sólida e referência teórica para o desenvolvimento de estratégias de intervenção direcionadas no futuro.
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Protocolo
Todos os procedimentos experimentais envolvendo animais foram revisados e aprovados pelo Comitê de Ética em Experimentação Animal da Escola de Ciências Médicas Básicas e Medicina Legal da China Ocidental (Chengdu, China).
1. Preparação animal
- Habitação e agrupamento de animais
- Designe doze camundongos Fêmeas grau SPF C57BL/6J (faixa de peso: 18–25 g, idade: 3 meses) a quatro gaiolas ventiladas padrão e as aloque aleatoriamente em quatro grupos (n=3) para exposição a doses variadas de irradiação externa (um grupo controle não irradiado e 3 grupos experimentais de irradiação).
- Mantenha todos os animais em um ciclo de 12 horas de luz/escuridão com acesso ad libitum a comida e água padrão para roedores.
- Use etiquetas auriculares numeradas para identificar unicamente cada camundongo e distinguir entre grupos experimentais.
- Permita que os animais experimentais se aclimatem ao novo ambiente por 3 dias antes dos procedimentos subsequentes.
- Coloque um rato Sprague Dawley (SD) (idade: 2 meses; peso: cerca de 160 g) sob condições idênticas.
- Anestesia
- Anestesie os camundongos por meio de injeção intraperitoneal de solução de tribromoetanol a 1,25%. Para garantir a anestesia segura, calcule o volume da injeção com base no peso corporal, administrando 15–20 mL/kg de peso corporal, de acordo com os padrões de referência estabelecidos.
- Preparação do local de irradiação
- Após a anestesia, remova o pelo do local dorsal de irradiação com máquina de cortar elétrica.
- Usando uma caneta vermelha e um molde rígido pré-preparado de aproximadamente 3 cm de diâmetro, marque uma área circular para irradiação na pele dorsal raspada.
NOTA: Cremes depilatórios não são utilizados, pois podem causar irritação da pele e potencialmente alterar a arquitetura histológica, confundindo assim os resultados experimentais.
2. Cálculo de dose para irradiação
NOTA: 90Sr emite raios β de alta energia através de seu decaimento para 90Y (Figura 1A). Os β-radios têm baixo desempenho de penetração, normalmente afetando apenas a epiderme. A determinação precisa do tempo de irradiação para camundongos requer o cálculo da taxa de dose absorvida (D, cGy/s).
- Calcule a constante de decaimento (λ) a partir da meia-vida física (T1/2) usando a fórmula:
T1/2 ≈ 0,693/λ
Considerando que a meia-vida de 90Sr é aproximadamente 28,6 anos, λ ≈ 0,02423 ano-1. - Calcule o número de radionuclídeos (N) usando a seguinte fórmula:
A = λ N
Onde:
R: Radioatividade (mCi)
N: Número de radionuclídeos após o tempo t (anos)
Com radioatividade inicialA 0 = 30 mCi (1 Ci = 3,7x1010 Bq) e λ ≈ 0,02423,
N0 = A0/λ = 1238,13454
Então, aplique a lei geral do decaimento da radiação, ou seja, o número de radionuclídeos diminui exponencialmente ao longo do tempo:
dN/dt = -λ N
A integração resulta:
N = N 0 е-λt
Onde:
N0: Número inicial de radionuclídeos em t = 0
N: Número de radionuclídeos restantes após o tempo t - Por fim, calcule a taxa de dose absorvida, D, em cGy/s usando a seguinte fórmula:
Fórmula de conversão para a taxa de dose absorvida de um aplicador 90 Sr-90Y:
D = [(A×1770/S) ×(E 90Y/E 32P) ×Fm] /3600 = (A/S) ×0,6347
Onde
D: Taxa de dose absorvida (cGy/s)
R: Millicurie (mCi)
S: Área (cm 2)
1770: Constante de ionização para 32P
E90Y: Energia média = 0,93 MeV
E32P: Energia média = 0,693 MeV
FM: Fator de conversão exposição-dose (0,962)
3600: Fator de conversão hora a segundo
NOTA: Os cálculos dos 90parâmetros Sr estão resumidos na Tabela 1. Um exemplo de cálculo é mostrado abaixo:
Em 3 de março de 2023:
Diâmetro externo do aplicador = 3 cm, diâmetro interno = 2,47 cm, raio = 1,235 cm, Radioatividade A = 30 mCi
S = π ×1,2352
D=(A/S) ×0,6347 ≈ 3,9738 cGy/s
Em 3 de novembro de 2023 (t = 0,583 anos depois):
N(t) = N0 е-λt = 1238,13454×e-0,02423×0,583 ≈ 1220,7675
A(t) = λN(t) = 0,02423×1220,7675 ≈ 29,579 mCi
D = (A/S) ×0,6347 ≈ 3,918 cGy/s
Após t = 2,25 anos:
N = N 0 е-λt ≈ 1238.13454×e-0.02423×2.25 ≈ 1172.4391
A = λN ≈ 0,02423×1172,4391 ≈ 28,408 mCi
D = (A/S) ×0,6347 ≈ 3,7629 cGy/s - Calcule o tempo de irradiação de cada grupo de dose com base nos dados obtidos (veja a Tabela 2).
3. Irradiação
NOTA: Embora os raios β emitidos pelo 90Sr tenham penetração limitada, normalmente afetando apenas a camada epidérmica (Figura 1D), eles ainda representam riscos potenciais à saúde humana. Garantir que todos os procedimentos envolvendo fontes 90Sr sigam medidas de proteção adequadas para minimizar a exposição à radiação aos operadores e ao meio ambiente. Os operadores devem completar treinamento especializado em manuseio de fontes de radiação. Os procedimentos para o manuseio e uso de fontes de radiação seguiram rigorosamente os padrões internacionais descritos nas Recomendações de 2007 da Comissão Internacional de Proteção Radiológica (Publicação 103 do ICRP).
- Preparação pré-uso: Envie uma solicitação para uso de fontes 90Sr. Após aprovação pelo supervisor, recolha a chave do laboratório e o código de desarmamento do sistema de alarme.
- Prepare todos os materiais necessários, incluindo camundongos com áreas dorsais raspadas e marcadas, seringas de 1 mL, solução de tribromoetanol, filme plástico de grau alimentício, temporizadores, fita adesiva e placas de espuma.
- Pré-tratamento do camundongo
- Anestesiar camundongos por meio de injeção intraperitoneal de solução de tribromoetanol (veja passo 1.2).
- Uma vez totalmente sedado, coloque o rato de dorso para cima sobre uma placa rígida, cubra sua superfície dorsal com filme plástico e prenda o filme com fita.
- Procedimento de irradiação
- Entre na sala da fonte de radiação, desarme o sistema de alarme, vista equipamentos de proteção (traje protetor, boné, óculos e dosímetro pessoal) e então recupere a fonte de 90Sr do escudo de chumbo.
- Prenda uma haste de metal no botão superior da fonte para levantar e mover o aplicador.
- Para simular lesão cutânea induzida por radiação β relevante para acidentes nucleares ou exposição ocupacional, posicione a superfície emissora (Figura 1B) do aplicador de 90Sr sobre a área dorsal raspada marcada do camundongo anestesiado (Figura 1C). Inicie o cronômetro imediatamente após a colocação. Logo após a duração pré-definida, retraia o aplicador e armazene-o temporariamente em seu recipiente original.
CUIDADO: Nunca encare o traseiro do aplicador para o pessoal. - Devolva a fonte de 90Sr ao escudo de chumbo após o uso.
NOTA: Para o grupo de 10 Gy×5, irradie uma vez ao dia por 5 dias consecutivos para alcançar uma dose total de 50 Gy.
- Etapas pós-irradiação
- Complete o Registro de Inspeção da Fonte de Radiação e o Registro de Uso da Fonte de Radiação, reative o sistema de alarme, tranque a porta, devolva a chave e informe o status da fonte.
- Colete todos os resíduos radioativos gerados durante o procedimento e os descarte conforme as diretrizes institucionais.
4. Pontuações de lesão por radiação
- Avalie a progressão do dano na pele em camundongos examinando o local da irradiação a cada 2–3 dias durante a fase inicial. Ao observar qualquer aparência anormal da pele, aumente a frequência da avaliação para diária. Uma vez que a progressão da lesão se estabilize, o intervalo de avaliação retorne a cada 2–3 dias.
NOTA: Durante todo o processo, o grupo controle irradiado passou por procedimentos idênticos aos grupos irradiados, incluindo pontuação subsequente e coleta de tecido. Os tempos de amostragem para os grupos controle estão programados para coincidir com a fase de progressão da lesão de pele nos grupos irradiados. - Fotografe periodicamente as áreas da pele irradiada e avalie o estado da dermatite induzida por radiação no dorso do camundongo.
- Pontuar as reações cutâneas dentro do campo irradiado usando uma escala validada (veja a Tabela 3).
NOTA: Ao avaliar as lesões, faça com que três investigadores realizem avaliações cegas de forma independente, sem conhecimento da dose de irradiação. Baseie a pontuação nas características predominantes da ferida de acordo com os critérios estabelecidos. Atribua uma pontuação final por consenso, reconhecendo que algumas feridas podem não corresponder perfeitamente a todos os descritores do sistema de pontuação, mas ainda refletir a patologia essencial.
5. Amostragem e coloração
- Obtenção de tecido cutâneo: Nos dias 13, 19, 27 e 32 após a irradiação, colete biópsias cutâneas de espessura total em série de camundongos de cada grupo de tratamento, dentro do campo circular de irradiação pré-marcado.
- Anestesie os camundongos por injeção intraperitoneal de solução de tribromoetanol (15–20 mL/kg), conforme no passo 1.2.
- Desinfete a área cirúrgica com álcool 75%. Depois, use pinças finas estéreis para estabilizar a pele alvo.
- Retirar uma amostra de pele de espessura total de aproximadamente 0,5 cm² verticalmente usando tesoura cirúrgica ao longo da zona de transição entre tecidos danificados, garantindo a inclusão da área central lesionada. Segure a tesoura perpendicular à superfície da pele e estenda o corte até a camada fascial subcutânea.
- Coloque o tecido colhido imediatamente em paraformaldeído a 4% para fixação.
- Aplique uma pressão suave na ferida para hemostasia. Para cada sessão de amostragem, siga uma estratégia de mover-se de uma das quatro direções em direção ao centro do campo de irradiação.
- Coloração histológica e de imunofluorescência
NOTA: A coloração H&E e imunofluorescência foi realizada com a assistência de um prestador comercial de serviços (Servicebio Biotechnology, Wuhan, China) de acordo com seus protocolos otimizados padrão.- Realize coloração de hematoxilina e eosina (H&E) nas amostras de pele coletadas em todos os quatro momentos (dias 13, 19, 27 e 32 após a irradiação).
- Primeiro, incorpore as amostras de tecido fixas na parafina e crie as seções de tecido.
- Realize a dewaxing e hidratação mergulhando as seções sequencialmente no Environmental Friendly Dewaxing Transparent Liquid I (20 min), Environmental Friendly Dewaxing Transparent Liquid II (20 min), etanol anidro I (5 min), etanol anidro II (5 min) e etanol 75% (5 min), depois enxágue com água da torneira.
- Trate todas as seções com a solução de pré-tratamento HD de coloração constante por 1 minuto. Depois, tinga com a solução de hematoxilina por 3 a 5 minutos, seguido de enxágue com água da torneira.
- Em seguida, mergulhe as seções em uma solução de diferenciação de hematoxilina e enxágue novamente com água da torneira. Depois, trate-os com solução azulada de hematoxilina seguida de outro enxágue.
- Em seguida, coloque as seções em etanol 95% por 1 minuto e contra-tinga com corante de eosína por 15 segundos.
- Em seguida, desidrate as seções usando uma série de etanol absoluto (três variações, 2 minutos cada), butanol normal (duas variações, 2 minutos cada) e xileno (duas variações, 2 minutos cada), e finalmente as sele com goma neutra.
- Realize coloração por imunofluorescência para visualizar as citocinas inflamatórias IL-6 e IL-10.
NOTA: Com base na progressão geral da lesão, alguns tecidos selecionados obtidos no dia 13, quando as lesões visíveis começaram a aparecer, e no dia 27, quando a progressão da lesão se estabiliza e mostra sinais de recuperação, para a coloração imunofluorescente e visualizar as citocinas inflamatórias IL-6 e IL-10.- Desparafinize e reidrate as seções usando xileno (três trocas, 10 minutos cada) e etanol graduado (três trocas de etanol puro, 5 minutos cada), depois enxágue-as em água destilada.
- Para a coleta de antígeno, aqueça as lâminas em solução de reparação de antígeno de ácido cítrico de 1× (pH 6,0) a 70°C por 20 minutos. Deixe as lâminas esfriarem naturalmente e depois lave-as em PBS (pH 7,4) em um shaker descolorizante (três lavagens, 5 min cada).
- Em seguida, aplique 3% de BSA para bloquear a ligação inespecífica em temperatura ambiente por 30 minutos.
- Prepare e aplique uma solução primária mista de anticorpos contendo anti-IL-6 (1:3000) e anti-IL-10 (1:2000), depois incube as seções a 4°C durante a noite em uma câmara umidificada.
- No dia seguinte, lave as lâminas em PBS (três vezes, 5 min cada) e incube com os anticorpos secundários apropriados em temperatura ambiente por 50 min no escuro.
- Após lavar em PBS (três vezes, 5 minutos cada), contra-tinga os núcleos com DAPI por 10 minutos no escuro. Depois, lave novamente em PBS (três vezes, 5 minutos cada), trate com o têmper autofluorescente por 5 minutos e enxágue sob água corrente por 10 minutos.
- Por fim, monte os coverslips usando um meio de montagem anti-fade.
- Realize coloração de hematoxilina e eosina (H&E) nas amostras de pele coletadas em todos os quatro momentos (dias 13, 19, 27 e 32 após a irradiação).
- Análise quantitativa
- Use o software Image J para quantificar a espessura epidérmica a partir de seções tingidas com H&E.
- Calibre a escala da imagem na Imagem J traçando a barra de escala com a ferramenta de linha reta e ajustando o comprimento conhecido em Analisar > Definir Escala.
- Depois, vá para Analisar > Ferramentas > Gerenciador de ROI para selecionar as regiões de interesse e adicioná-las ao Gerenciador de ROI.
- Por fim, clique em Mede no Gerenciador de ROI para obter os comprimentos reais.
- Use o software Image J para medir a intensidade média da imunofluorescência de IL-6 e IL-10.
- Importe a imagem e divida os canais via Imagem > Cor > Canais Divididos. Depois, selecione o canal correspondente à fluorescência alvo (por exemplo, vermelho para IL-6, verde para IL-10).
- Aplique auto-threshold em Imagem > Ajustar > Auto-Threshold > Tente Tudo. Na janela Limiar, selecione o algoritmo ótimo e ajuste manualmente o controle deslizante para corresponder à fluorescência real.
- Defina medições em Analisar > Definir Medições verificando o Valor Cinza Médio e ativando o Limite ao limiar.
- Por fim, execute o Analyze > Measure para obter dados de intensidade.
- Use o software Image J para quantificar a espessura epidérmica a partir de seções tingidas com H&E.
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Resultados
Achados do exame físico
Os camundongos foram expostos à radiação β de uma fonte de 90Sr em três regimes de dosagem diferentes: 0 Gy, 25 Gy, 10 Gy×5 frações e 50 Gy. Avaliações simultâneas no local foram realizadas para documentar a progressão do dano cutâneo até que a progressão da lesão se estabilizasse. Os resultados experimentais demonstraram que 90Sr induziram β radiação por lesão cutânea induzida por radiação em todos os grupos, e o grau de lesão dependia da dose de irradiaç...
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Discussão
Ao estabelecer um modelo animal de lesão cutânea por radiação, utilizamos o radionuclídeo de longa duração 90Sr como fonte de β-radiação. O cálculo preciso da taxa de dose de radiação e do tempo de irradiação constituiu uma etapa crítica para o desenvolvimento bem-sucedido desse modelo. A aplicação clínica do 90Sr na terapia tumoral foi documentada, com sua confiabilidade recebendo alguma validaçãoparcial 27,28
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Divulgações
Os autores afirmam que não possuem interesses financeiros concorrentes conhecidos ou relacionamentos pessoais que possam ter influenciado o trabalho relatado neste artigo.
Agradecimentos
Esse trabalho é apoiado pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (U25A20151, 82473574 e 82203973), pelo Projeto de Inovação Chave da Província de Xizang (XZ202501ZY0131) e pela Fundação de Transformação do Laboratório Tianfu Jincheng (2025ZH006).
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Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| PAb do Coelho Anti-IL-6 | Servicebio | GB11117 | Coloração por imunofluorescência |
| Anti-IL-10 Rabbit pAb | Servicebio | GB11108 | Coloração por imunofluorescência |
| Solução de reparação de antígeno do ácido cítrico (PH6.0) | Servicebio | G1202 | Coloração por imunofluorescência |
| Desidratador | DIAPATH | Donatello | H& E e Imunofluorescência Coloração |
| Digital câmera | Canon | EOS 70D | Documente a progressão da lesão na pele durante o experimento |
| Seringa descartável esterilizada | Fabricante Profissional de Dispositivos Médicos Descartáveis e Estéreis. | GB20163140107 | Para injeção intraperitoneal |
| Luva de Látex Descartável | Medicom | 1186 | Proteção |
| Líquido Transparente de Dewaxing Ambientalmente Amigável | Servicebio | G1128-1L | H& E e Imunofluorescência Coloração |
| Plataforma congelada | Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd | JB-L5 | H& E Coloração |
| Hematoxilina-eosina (H&; E) Kit de tintura constante HD | Servicebio | G1076 | H& E Coloração |
| Imagem J | Institutos Nacionais | Processamento de imagem | Possibilitar a quantificação precisa dos dados histológicos de coloração |
| Avental de chumbo | Shandong Oureixin Radiation Protection Engineering Co., Ltd. | N/A | Proteger o pessoal contra exposição à radiação |
| Caneta PAP Bloqueadora de Líquidos | Servicebio | G6100 | Coloração por imunofluorescência |
| Filme médico | 3M | 10163337409520 | Prevenir a contaminação da fonte de radiação por superfícies biológicas |
| Goma neutra | SCRC | 10004160 | H& E Coloração |
| Nuclear & nbsp; radiação Detector | FNIRSI | 100128262296 | Monitoramento em tempo real dos níveis de radiação ambiente ao redor do operador para garantir a segurança do pessoal |
| Fixador de Paraformaldeído (4%) | Biosharp | BL539A | Fixar amostras de tecido cutâneo |
| Fatiador de patologia | Shanghai Leica Instrument Co., Ltd | RM2016 | H& E e Imunofluorescência Coloração |
| Máquina de embedding de parafina | Wuhan Junjie eletrônicos | JB-P5 | H& E e Imunofluorescência Coloração |
| Estrôncio-90 | Sociedade Anônima do Instituto de Rádio Khlopin (Radium Institute JSC, Rússia) | N/A | Fornecer raios β |
| Tribromoetanol | Nanjing Aibei Biotechnology Co., Ltd | M2910 | Anestesiar camundongos |
| Secadora de banho-maria | EQUIPAMENTO INSTRUMENTAL ZHEJIANG JINHUA KEDI | KD-P | H& E e Imunofluorescência Coloração |
Referências
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