A regulação negativa da LINC00426 promove a progressão da doença renal diabética (DKD) ao induzir apoptose nas células renais e aumentar a inflamação.
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Artigo de investigação
* These authors contributed equally
A regulação negativa da LINC00426 promove a progressão da doença renal diabética (DKD) ao induzir apoptose nas células renais e aumentar a inflamação.
O estudo investiga o valor diagnóstico da LINC00426 no diabetes tipo 2 (DT2) e na doença renal diabética (DKD), juntamente com seus efeitos regulatórios nas células renais. O estudo incluiu 280 pacientes com DMT (146 casos de DKD) e 186 controles saudáveis que visitaram durante o mesmo período. A reação em cadeia quantitativa da polimerase em tempo real por transcrição reversa (RT-qPCR) confirmou que a LINC00426 sérica está reduzida em pacientes com DT2DM e DKD. A análise da característica operacional do receptor (ROC) avaliou o valor diagnóstico da LINC00426 para T2DM e DKD. A regressão logística multivariada identificou fatores de risco independentes para DKD. LINC00426 apresentaram valor diagnóstico para ambas as doenças e se correlacionaram negativamente com a razão albumina-creatinina da urina (UACR). Sua redução de regulamentação previu independentemente o desenvolvimento do DKD. Um ambiente de alta glicose (HG) inibe a expressão LINC00426 nas células HK-2 e HGMC. O ensaio CCK8, citometria de fluxo e ensaios imunossorvedores ligados a enzimas confirmaram que a HG também suprimiu a proliferação enquanto promovia apoptose e inflamação. Em contraste, a superexpressão de LINC00426 aumenta a capacidade proliferativa das células HK-2 e HGMC, inibe a apoptose e reduz as respostas inflamatórias. A regulação negativa da LINC00426 pode agravar a progressão da DKD ao inibir a proliferação das células renais (HK-2 e HGMC) e promover a apoptose e respostas inflamatórias.
Diabetes mellitus tipo 2 (DT2) é um distúrbio metabólicocrônico 1. Relatórios indicam que a DM T2 e suas complicações se tornaram uma preocupação significativa de saúde públicaglobal 2,3, representando ameaças à saúde humana e ao desenvolvimento social. Devido a hábitos de vida pouco saudáveis adquiridos aolongo do tempo 4, a prevalência de DT2 tem aumentadoanualmente 5. A nefropatia diabética (DN) foi renomeada para doença renal diabética (DKD) em 2007 6,7. Como uma complicação comum doDT2DM 8, sua incidência e mortalidade entre pacientes diabéticos continuam a aumentaranualmente. A DK frequentemente permanece latente em pacientes com diabetes de longaduração ou se manifesta abruptamente11. A DKD pode causar disfunção renal e danos endoteliais. A DKD se manifesta principalmente como a perda urinária de grandes moléculas, como proteínas, após danos ao sistema de filtração renal 14. No entanto, para os pacientes, marcadores bioquímicos sanguíneos (glicose em jejum, insulina) servem como padrão ouro para o diagnóstico do DT2, mas a DKD continua difícil de detectar. Abordagens convencionais de tratamento não identificam ou avaliam prontamente a progressão daDKD 15. Portanto, aumentar a conscientização sobre a doença e identificar novos biomarcadores diagnósticos é crucial para a prevenção e o tratamento tanto do DT2 quanto da DKD.
Nos últimos anos, o envolvimento do RNA longo não codificante (lncRNA) em diversas funções comoimunidade, regulação do câncer e metabolismo tornou-se cada vez mais reconhecido17. Evidências acumuladas agora implicam expressão desregulada de lncRNA na patogênese de doenças crônicas complexas, notadamenteDKD 18,19. Por exemplo, Zhang et al.20 identificaram, por meio de sequenciamento de alto rendimento, que o lncRNA evf-2 interage com hnRNP, promovendo o desenvolvimento de DKD ao aumentar a expressão de genes relacionados ao ciclo celular e fatores inflamatórios. Em um modelo de rato DKD, o USR0000B2476D de lncRNA foi identificado como envolvido na regulaçãoimune 21. LINC00426 é um lncRNA recém-descoberto que desempenha um papel importante na regulação dos fatoresinflamatórios 22. Estudos comparativos recentes de microarranjos sugerem que LINC00426 pode ter potencial como biomarcador para o desenvolvimento deDMT2 23. Além disso, estratégias de bioinformática capturaram o envolvimento de LINC00426 na regulação imunal dentro do carcinoma de célulasrenais 24. Numerosos estudos também destacaram o envolvimento fundamental da inflamação no diabetes e doDKD 25 no diabetes e DKD. Estudos existentes mostraram que oDT2DM 26 e condições relacionadas aopré-diabetes 27, incluindo síndrome metabólica28,obesidade 29 e doença cardíaca metabólicacardiovascular 30, estão todas associadas a uma alta carga inflamatória. Além disso, complicações microvasculares diabéticas, comoneuropatia 31, nefropatia32 e retinopatia33, assim como complicações macrovasculares34, são todas respostas inflamatórias crônicas. Portanto, estudar a relação entre LINC00426 e DMT2 e DKD é muito importante para descobrir novos marcadores diagnósticos e revelar os mecanismos da DKD. No entanto, a literatura atual sobre o papel da LINC00426 em TD2M e DKD permanece limitada, sem evidências clínicas que esclareçam seu padrão de expressão, valor de risco independente e eficácia diagnóstica em pacientes com DKD.
Para preencher essa lacuna de pesquisa, o presente estudo incluiu 466 participantes, detectou expressão sérica LINC00426 via RT-qPCR, identificou fatores de risco independentes para DKD usando regressão logística e avaliou ainda mais o potencial diagnóstico de LINC00426 para T2DM e DKD por meio de análise ROC. Nossos achados esclarecem preliminarmente as características de expressão e o significado clínico da LINC00426 na DKD, preenchendo assim a lacuna de conhecimento existente e fornecendo novos insights sobre a patogênese da DKD e a exploração de biomarcadores.
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Este estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética Médica do Terceiro Hospital Xiangya da Central South University. Todos os pacientes e suas famílias expressaram apoio e assinaram formulários escritos de consentimento informado.
Coleta de Amostras
O tamanho da amostra foi calculado usando o software G*Power. O nível de significância (α) foi definido em 0,05, o poder estatístico (1-β) em 0,8, o tamanho do efeito (f) em 0,25 e uma taxa de evasão de 10% foi considerada. Os resultados do cálculo indicaram que pelo menos 123 participantes por grupo eram necessários ao estudar as populações do grupo controle, T2DM e DKD. No estudo propriamente dito, 186 participantes foram incluídos no grupo controle, 134 pacientes no grupo com DT2 e 146 no grupo com DKD. Todos foram voluntários que receberam tratamento no Third Xiangya Hospital da Central South University de julho de 2022 a junho de 2023. Desses, 72 pacientes não apresentaram complicações, enquanto 208 pacientes apresentaram uma ou mais complicações. As complicações incluíram principalmente neuropatia diabética, retinopatia diabética e doença renal diabética (DKD), com 146 pacientes diagnosticados com DKD. A classificação do diabetes foi determinada com base na insulina em jejum e nos níveis de glicose no sangue em jejum; Pacientes com diabetes tipo 1 foram excluídos para evitar ambiguidade diagnóstica. Casos de diabetes gestacional e condições especiais do diabetes foram excluídos.
Os critérios de inclusão foram os seguintes: idade ≥ 18 anos; prontuários médicos completos e documentação disponíveis; conformidade com as Diretrizes Chinesas de 2020 para a Prevenção e Tratamento do Diabetes Tipo2 37. Os critérios de exclusão incluíam transtornos psiquiátricos comórbidos, comprometimento cognitivo ou incapacidade de cooperar com o estudo; condições infecciosas agudas; falência de órgãos; e tumores malignos.
Foi selecionado um grupo controle de 186 indivíduos saudáveis que passaram por exames médicos de rotina durante o mesmo período. Os participantes do grupo controle devem atender aos seguintes critérios: não ter histórico de diabetes ou outros distúrbios metabólicos; glicose em jejum normal (<6,1 mmol/L), glicose pós-prandial de 2 horas (<7,8 mmol/L) e hemoglobina glicada (<5,7%); e sem histórico de doença renal ou complicações, com indicadores normais de função renal (taxa de filtração glomerular, razão de albumina urina/creatinina).
Teste de Indicadores Relacionados ao Diabetes
Informações demográficas básicas foram registradas para cada participante do estudo na admissão. Na manhã seguinte, 5 mL de sangue venoso foram coletados de cada sujeito em jejum para testes de indicadores bioquímicos. Os níveis de glicose no sangue em jejum (FBG) foram analisados usando um medidor de glicoseno sangue 35. A hemoglobina glicida (HbA1c) foi medida com um analisador totalmente automatizado de HbA1c36. As amostras de urina foram coletadas dentro de 24 horas após a inclusão do estudo. A concentração de albumina urinária foi medida usando um analisador de proteínas37 pelo método imuno-turbidimétrico38. O grau de insuficiência renal em pacientes com DKD foi avaliado pela razão albumina-creatinina urinária (UACR), um índice bem estabelecido para avaliar lesão renal precoce e progressão da doença emDKD 3,39.
Cultura e Processamento Celular
Células epiteliais renais humanas HK-2 e células mesangiais glomerulares HGMC foram adquiridas. Especificamente, as células HK-2 foram cultivadas em meio K-SFM contendo 10% de soro fetal bovino, suplementado com solução antibiótica a 1%. As células HGMC foram cultivadas em meio completo de célula primária. As células foram mantidas em uma incubadora de 37 °C e 5% de CO2 . A passagem e a transfecção foram realizadas quando a confluência ultrapassou 70%. Para indução de alta glicose (HG), as células foram semeadas em placas de 6 poços e expostas a 30 mM de D-glicose em 2 mL de meio de cultura por poço durante 48 horas (HK-240 e células HGMC41). Um grupo controle com baixa glicose foi tratado com 5,5 mM de glicose D + 24,5 mM manitol.
A sequência de comprimento total do LINC00426 foi clonada no plasmídeo de expressão eucariótica pcDNA3.1 para construir o plasmídeo de superexpressão LINC00426 pcDNA3.1. O vetor vazio pcDNA3.1 foi usado como controle negativo. A transfecção celular foi realizada usando o reagente Lipofectamina 3000, conforme as instruções do fabricante. Brevemente, células HK-2 e HGMC induzidas por HG foram semeadas em placas de 6 poços e transfectadas em confluência de 70%–80%. Para cada poço, 2,5 μg de DNA plasmídico (pcDNA 3.1 ou pcDNA 3.1 LINC00426) foram misturados com 5 μL do reagente Lipofectamina 3000 em Opti-MEM de 250 μL por 15 minutos em temperatura ambiente, segundo pesquisasanteriores 10. O complexo de transfecção foi então adicionado gota em gota às células em meio de cultivo completo. Após 6 horas de incubação a 37 °C, o meio foi substituído por meio fresco, e as células foram cultivadas por mais 42 horas antes dos experimentos subsequentes.
Extração de RNA Total e Transcrição Reversa
O sangue restante foi centrifugado novamente a 3000 x g por 15 minutos, e o sobrenadante foi coletado e armazenado a -80 °C. O RNA total foi extraído de amostras de soro e células usando o método Trizol-fenol-clorofórmio, precipitado com etanol de volume igual, segundo pesquisasanteriores 42. A concentração e pureza de RNA foram avaliadas usando um espectrofotômetro UV. O cDNA total foi sintetizado a partir de amostras usando a mistura de reagentes RT via um amplificador de PCR gênico. As condições de reação foram de 42 °C por 15 minutos, seguidas de 85 °C por 5 segundos. As amostras foram armazenadas brevemente a 4 °C.
Reação em cadeia quantitativa da polimerase em tempo real por transcrição reversa (RT-qPCR)
O RT-QPCR foi realizado usando mistura master SYBR qPCR. A expressão de LINC00426 sérica foi quantificada pelo instrumento quantitativo de PCR. Os dados foram normalizados usando β-tubulina como gene de referência interno, calculados pelo método 2−ΔΔCt . O valor médio de Ct da β-tubulina foi de aproximadamente 25, variando de 23 a 27 em todas as amostras de soro. O coeficiente de variação do Ct (CV) foi de 2,5%. A ANOVA unidirecional não mostrou diferença significativa nos valores de β-tubulina Ct entre os grupos controle, T2DM e DKD, confirmando sua expressão estável e adequação como referência interna para a normalização LINC00426 sérica. Os primers envolvidos na reação estão listados na Tabela Suplementar 1. Condições de reação: pré-desnaturação a 95 °C por 10 minutos; 40 ciclos de 95 °C por 10 s e 60 °C por 30 s; extensão final a 60 °C por 15 s.
Análise do Western blot
A análise de Western blot foi realizada seguindo nossos protocolos experimentais estabelecidos. Brevemente, as células foram lisadas com tampão de lise RIPA suplementado com um coquetel inibidor de protease a 1%. Após a incubação em temperatura ambiente por 30 minutos, foi realizada a quantificação da proteína. Amostras de proteína foram desnaturadas a 95 °C, e quantidades iguais de proteína de 30 μg foram separadas por SDS-PAGE, seguidas por eletrotransferência para membranas PVDF de 0,45 μm. As membranas foram bloqueadas com leite desnatado em temperatura ambiente por 2 horas. Os anticorpos primários contra Bax, Bcl-2, Caspase-3, IκBα e p-P65 foram diluídos a 1:1000 com TBST, enquanto β-actina foi diluída a 1:3000. As membranas foram incubadas com anticorpos primários durante a noite a 4 °C. Posteriormente, as membranas foram incubadas com anticorpos secundários conjugados com peroxidase de raiz-forte correspondentes em temperatura ambiente por 1 h. As bandas proteicas foram visualizadas usando um substrato ECL em um sistema de imagem em gel. Os valores de cinza da banda foram quantificados com o software ImageJ.
Kit de Contagem de Células-8 (CCK8)
Digere as células transfectadas com 0,25% de tripsina (sem EDTA) por aproximadamente 3 minutos, depois centrifuge a 800 x g por 5 minutos. Recolha o pellet e ressuspenda em meio de cultivo celular. Semeie 100 μL de suspensão de células (2 x 103 células) em uma placa de 96 poços. Após a incubação por 24 horas a 37 °C com 5% de CO2 para permitir a adesão celular, adicione 10 μL de solução de CCK8. A adição inicial da solução CCK8 é designada como 0 h. A absorvância em 450 nm é medida usando um leitor de microplacas em 0, 24, 48 e 72 horas.
Citometria de Fluxo
O efeito da transfecção na apoptose celular foi avaliado usando a solução de coloração de isotiocianato de Anexina V-fluoresceína (FITC)/iodeto de propidio (PI). Após a transfecção, as células foram digeridas usando o mesmo procedimento de digestão com tripsina descrito acima. As células foram lavadas com soro tampão fosfatado (PBS) e ressuspensas. Os pellets de células foram coletados por centrifugação a 800 x g por 5 minutos. Transfira 100 μL (aproximadamente 1 x 105 células) para um tubo de citometria de fluxo, centrifuge a 800 x g por 5 minutos em temperatura ambiente e descarte o sobrenadante. Ressuspender células em um tampão de ligação Annexin V-FITC de 195 μL. Adicione 5 μL de Annexin V-FITC e 10 μL de solução de coloração PI à mistura, depois misture bem. Incube no escuro em temperatura ambiente por 20 minutos. Em seguida, coloque o tubo de citometria de fluxo tratado em um banho de gelo para armazenamento temporário. Antes da análise, filtre a suspensão da célula através de um filtro de malha de 200 micrômetros e resuspenda-se. Colete sinais celulares usando o sistema de citometria de fluxo sob excitação a 488 nm/636 nm.
Ensaio imunossorvente ligado a enzimas (ELISA)
Citocinas inflamatórias celulares foram medidas usando kits ELISA comercialmente disponíveis para fator de necrose tumoral alfa (TNF-α), interleucina-6 (IL-6) IL-1 beta (IL-1β). O procedimento específico de detecção é o seguinte: adicionar 100 μL do padrão devidamente diluído aos poços padrão. Adicione 100 μL de meio basal celular a todos os poços em branco. Adicione 50 μL de sobrenadante celular e 50 μL de 1 x tampão de detecção aos poços de amostra. Subsequentemente, adicione 50 μL da solução de anticorpos de detecção aos poços apropriados. Cubra a microplaca e incube em temperatura ambiente por 2 horas. Descarte o líquido dos poços e lave 6 vezes com o buffer de lavagem. Para obter resultados ideais, certifique-se de que os poços estejam completamente secos. Adicione 100 μL de solução de trabalho de estreptavidina em cada poço novamente, fele a placa e incube em temperatura ambiente por 45 minutos. Por fim, adicione 100 μL de substrato cromogênico e depois incube-os no escuro por 20 minutos. Depois, adicione 100 μL de solução de parada e misture suavemente. A solução agora aparecerá como um líquido claro e amarelado de variada intensidade. Meça a densidade óptica (OD) da solução em 450 nm e 630 nm usando um leitor de microplaca. A diferença entre esses dois valores corresponde à concentração do fator inflamatório na amostra.
Análise estatística
Os dados foram processados e analisados usando software estatístico comercialmente disponível. Todos os resultados experimentais compreenderam três réplicas válidas. Comparações entre grupos utilizaram testes t de amostras independentes e análise de variância (ANOVA). Comparações múltiplas foram realizadas usando o método de Tukey. A curva ROC foi usada para avaliar o valor diagnóstico da LINC00426 para DT2DM e DKD. A análise de regressão logística avaliou os fatores de risco para DKD. P < 0,05 indicaram significância estatística para os respectivos resultados de dados.
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Comparação das características basais entre indivíduos saudáveis e pacientes com diabetes tipo 2
O estudo incluiu 280 pacientes com DM 2 e 186 indivíduos saudáveis como controles. A análise dos prontuários médicos dos participantes (ver Tabela 1) revelou que a idade média do grupo controle foi de 58,91 ± 17,63 anos, em comparação com 59,50 ± 17,14 anos para os pacientes com DM T2. No entanto, não houve diferenças significativas de gênero ou obesidade ...
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A DKD representa uma complicação microvascular grave no DT2. Sua manifestação mais antiga é a presença de microalbuminúria; detectar isso nos estágios iniciais poderia potencialmente atrasar a progressão do DKD. No entanto, a microalbuminúria carece de sensibilidade na análise de urina de rotina e, consequentemente, é frequentementenegligenciada. Este estudo constatou que LINC00426 é reduzida em pacientes com DT2 e possui valor diagnóstico tanto para DMO2 quanto p...
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Não há conflito de interesses neste estudo.
Não aplicável.
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| 0.25% trypsin | Gibco | 25200056 | |
| Annexin V-FITC Apoptosis Detection Kit | Beyotime | C1062S | |
| Antibiotics for cell culture | Gibco | R-015-10 | |
| Aristo specific protein detector | GOLDSITE | GPP-100 | |
| Bax Antibody | Cell signaling Technology | 2772 | |
| BCA protein assay kit | Beyotime | P0013B | |
| Bcl-2 (124) Mouse Monoclonal Antibody | Cell signaling Technology | 15071 | |
| beta-Actin (13E5) Rabbit Monoclonal Antibody | Cell signaling Technology | 4970 | |
| Blood glucose monitor | Yuwell | 710 | |
| Caspase-3 Antibody | Cell signaling Technology | 9662 | |
| CCK-8 reagent | Sigma | 96992 | |
| ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix | Vazyme | Q711 | |
| Chloroform | Sigma-Aldrich | C2432 | |
| Clarity Western ECL Substrate | Bio-Rad | 1705061 | |
| Constant-temperature cell incubator | SaiLun | DHP-9032 | |
| D-Glucose | MedChemExpress | HY-B0389 | |
| Flow cytometer | Beckman coulted | CytoFLEX | Chloroform |
| Fluorescent quantitative PCR instrument | Roche | Light Cycler 96 | |
| Foetal bovine serum | Sigma-Aldrich | F0193 | |
| Fully automated glycated haemoglobin analyser | Hanyu medical | HLC-723G11 | Phenol |
| Gene PCR amplifier | Bio Rad | S1000 | |
| Glomerular mesangial cells, HGMC | Sunncell Biotechnology Co., Ltd. | SNP-H252 | |
| Human Basic IL-1 beta ELISA Kit | Invitrogen | ECH002 | |
| Human IL-6 ELISA Kit | Invitrogen | EH2IL6 | |
| Human kidney epithelial cells, HK-2 | Sunncell Biotechnology Co., Ltd. | SNL-165 | |
| Human TNF alpha ELISA Kit | Invitrogen | KAC1751 | |
| IkappaB alpha (L35A5) Mouse Monoclonal Antibody | Cell signaling Technology | 4814 | |
| K-SFM medium | Invitrogen | 17005-042 | |
| Lipofectamine 3000 | Invitrogen | L3000015 | |
| Mannitol | Sigma-Aldrich | M9647 | |
| Multifunctional enzyme-linked immunosorbent assay reader | TECAN | GENios Plus | |
| NF-kappaB p65 (D14E12) Rabbit Monoclonal Antibody | Cell signaling Technology | 8242 | |
| non-fat milk | Biosharp | BS102-500g | |
| Opti-MEM™ I Reduced Serum Medium | Invitrogen | 31985062 | |
| P3000 Reagent | Invitrogen | L3000-015 | |
| PBS buffer | Sangon Biotech | E607080 | |
| Phenol | Sigma-Aldrich | P1037 | |
| Phospho-NF-kappaB p65 (Ser536) (93H1) Rabbit Monoclonal Antibody | Cell signaling Technology | 3033 | |
| Primary cell complete medium | Sunncell Biotechnology Co., Ltd. | SNPM-H252 | |
| Prime Script RT reagent Kit | Takara | RR037A | |
| PVDF membranes | Merck Millipore | SE1M003M00 | |
| rotease and phosphatase inhibitor cocktail | Beyotime | P1045 | |
| Trizol | Invitrogen | 15596026CN | |
| Ultraviolet spectrophotometer | Thermo | Nanodrop 2000 |
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