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O protocolo foi aprovado pelo Comitê Institucional para Pesquisa Biomédica em Humanos (CIIBH) do Instituto Nacional de Ciências Médicas e Nutrição Salvador Zubiran (INCMNSZ) (REFERÊNCIA 1734). Todos os participantes forneceram consentimento informado antes de serem incluídos neste estudo.
Desenho do estudo e população
Este foi um ensaio clínico randomizado, controlado por placebo, duplo-cego, com um período de acompanhamento de 5 semanas. Trabalhadores do INCMNSZ foram convidados a participar do estudo, e voluntários saudáveis de 20 a 50 anos sem tratamento antimicrobiano no mês anterior, que aceitaram e assinaram o formulário de consentimento informado, foram incluídos entre 2011 e 2012. Os participantes do estudo foram randomizados 1:1 para o grupo Gel Sinbiótico com 10,32 g de inulina de agave como prebiótico e 4 ×10 9 UFC/ g de Lactobacillus acidophilus NCFM e 4 ×10 9 UFC/g de Bifidobacterium lactis Bi07 por dia, contidos em 4 sachês por 5 semanas, e 200 mg de rifaximina duas vezes ao dia durante a primeira semana. O grupo do Gel Placebo recebeu 4 embalagens de 15 g de gel placebo, com a mesma apresentação e características sensoriais do Gel Sinbiótico, por 5 semanas, e 200 mg de rifaximina duas vezes ao dia durante a primeira semana (Figura 1).
Avaliação clínica
Em ambos os grupos de estudo, os sintomas e a aparência das fezes foram avaliados usando a Escala de Bristol. Peso, altura e índice de massa corporal (IMC) também foram medidos. Um diário foi utilizado para avaliar o consumo de gel sinbiótico, gel placebo e rifaximina, além de registrar a presença ou ausência de efeitos colaterais relacionados à ingestão de gel.
Consumo de fibra
A ingestão de fibras foi avaliada usando um diário alimentar e uma chamada de 24 horas por semana em ambos os grupos.
Adesão ao Tratamento
A adesão ao consumo de rifaximina e gel foi avaliada contando o número de doses de rifaximina e o número de sachês de géis sintbióticos e placebo consumidos por participante. A presença de Lactobacillus acidophilus e Bifidobacterium lactis foi detectada por meio da Reação em Cadeia da Polimerase (PCR).
Avaliação Microbiológica das Fezes
Na consulta 0 e semanalmente em 5 consultas (6 consultas) em cada grupo, os números de Lactobacilos, Bifidobactérias e Enterobactérias foram avaliados em 120 amostras fecais pelo método de contagem de placas. Este método mede as unidades formadoras de colônias (UFC) colocando amostras diluídas sobre meios sólidosespecializados 10. Amostras de fezes eram coletadas no início de cada visita.
Para identificar microrganismos, amostras fecais foram coletadas e armazenadas em tubos BBL. O frasco de PBG era usado para bactérias anaeróbias, e amostras fecais eram transportadas em um resfriador de isopor contendo pacotes de gel congelados para manter uma temperatura baixa antes do processamento no laboratório. A tampa do frasco de PBG para coprocultura foi removida, e a amostra de fezes foi coletada usando um swab, garantindo que o swab fosse impregnado com a amostra. O aplicador era então colocado em um tubo contendo um meio sólido de cultura.
Para bactérias anaeróbias, os frascos eram pesados e 5–10 g de fezes eram coletados usando uma colher. As fezes foram então misturadas com o conteúdo do frasco e bem secradas. Para o processamento da amostra, os frascos contendo as amostras e os sacos Stomacher estéreis eram pesados. A amostra foi esvaziada em um saco, centrifugada por 60 s, e então 4,5 mL de água peptona a 0,1% foram adicionados. Posteriormente, 500 μL da amostra foram transferidos para um frasco e vórtices para homogeneizar a mistura. Após 100 μL da amostra foram inoculados em duplicado em cada placa do meio seletivo específico, meio Man Rogosa Sharpe (MRS) para lactobacilos e meio DP Beerens com cisteína + cicloheximida (para eliminar flora indesejada) para bifidobactérias, até diluição 8 (fator de diluição 0,1 mL). Para enterobactérias, o meio MacConkey foi usado nas diluções 5–8 (fator de diluição 0,1 mL), onde as colônias bacterianas foram separadas equantificadas 11. Cada pó do meio era dissolvido em água destilada purificada, a solução era aquecida até ferver para garantir a dissolução completa, e era esterilizada em um autoclave a 121 °C por 15 minutos. A mistura foi resfriada a 46,5 °C para realizar a técnica de despejamento da placa, despejando 1 mL por placa em duplicado em placas de Petri estéreis contendo 15–20 mL de meio de cultura, permitindo que as placas solidificassem. As amostras inoculadas foram incubadas a 37 °C em uma atmosfera enriquecida com CO2 em sistemas anaeróbicos GasPak para manter condições anaeróbicas por 24–48 horas. As unidades formadoras de colônias (CFU) foram marcadas com uma caneta e contadas12. A seguinte fórmula foi aplicada:
CFU/mL = (número de colônias × fator total de diluição)/volume de cultura revestida (mL)
Identificação das características morfológicas de lactobacilos e bifidobactérias
A mancha de Gram foi usada para identificar as características morfológicas do espécime. Uma amostra das colônias bacterianas de cada cepa era colocada em uma lâmina de microscópio, tingida com violeta cristalina por 1 minuto e depois enxaguada com água destilada. Uma solução de iodo foi aplicada por 1 minuto e depois enxaguada com água destilada. Uma solução de álcool e acetona foi usada por 10 segundos como descolorante e enxaguada com água destilada. Por fim, a safranina foi aplicada como contra-tingimento por 1 minuto e enxaguada com água destilada. As lâminas do microscópio foram observadas sob um microscópio óptico usando óleo de imersão com um objetivo de 100x.
A quantificação total foi realizada usando reação em cadeia da polimerase convencional (PCR) em amostras fecais selecionadas aleatoriamente de cinco participantes por grupo, obtendo um total de 60 amostras ao longo de 5 semanas. Isolados de meios de cultura foram processados para extração de material genético. A PCR foi realizada usando primers bacterianos universais para amplificar um fragmento do gene 13 do rRNA16S. Os produtos PCR eram purificados e sequenciados. As sequências foram verificadas e enviadas ao banco de dados GenBank para confirmar a presença de cepas lactobacilus e bifidobacterianas isoladas das amostras fecais.
Análise estatística
Os dados são apresentados como frequências absolutas e relativas ou mediana (p25-P75). A gravidade acumulada dos sintomas foi determinada usando o escore de Likert (leve, 1; moderado, 2; grave, 3) em cada acompanhamento. Comparações entre grupos foram realizadas usando o teste de soma de ranks de Wilcoxon e o qui-quadrado ou teste exato de Fisher. Comparações intra-grupos entre as semanas 0 e 5 foram realizadas usando o teste de Friedman e comparações múltiplas com Durbin-Conover. A significância estatística foi definida em P < 0,05.