Diagnóstico Multimodal e Manejo da Tuberculose Gástrica: Um Relato de Caso

Resumo

Este relato de caso apresenta um fluxo de trabalho multimodal passo a passo para diagnóstico da tuberculose gástrica, integrando gastroscopia, imagem transversal, ultrassom endoscópico, histopatologia e testes moleculares para confirmar infecção quando biópsias superficiais não são diagnósticas.

Resumo

A tuberculose gástrica é uma forma excepcionalmente rara de tuberculose extrapulmonar e frequentemente se apresenta com sintomas não específicos e aparência endoscópica, frequentemente imitando tumores submucosos, doença úlcera péptica ou malignidade. Essas sobreposições, juntamente com o rendimento limitado das biópsias superficiais, podem atrasar o diagnóstico definitivo. Aqui, pesquisadores relatam um caso de tuberculose gástrica e enfatizam a vantagem metodológica de uma estratégia diagnóstica multimodal que integra endoscopia, imagem transversal, histopatologia e testes moleculares para reduzir progressivamente a incerteza diagnóstica. A gastroscopia revelou uma lesão gástrica localizada, enquanto a imagem forneceu caracterização complementar da lesão e sugeriu possível envolvimento extragástrico, motivando uma avaliação adicional para infecção granulomatosa. Amostragem endoscópica repetida não estabeleceu um diagnóstico, e por isso foi realizada uma gastrectomia parcial laparoscópica para obter tecido profundo adequado para avaliação abrangente. O exame histopatológico demonstrou inflamação granulomatosa com necrose caseosa, e os testes moleculares confirmaram infecção pelo complexo Mycobacterium tuberculosis , confirmando tuberculose gástrica. O curso pós-operatório foi tranquilo, e o paciente recebeu posteriormente a terapia antituberculosa padrão. Os sintomas desapareceram e não houve recorrência durante o acompanhamento de longo prazo. Este caso destaca desafios diagnósticos práticos e oferece uma abordagem reprodutível e passo a passo que pode ajudar os profissionais a suspeitar, diferenciar e confirmar tuberculose gástrica mais cedo em apresentações semelhantes.

Introdução

A tuberculose gástrica é uma manifestação excepcionalmente rara da infecção por Mycobacterium tuberculosis no corpo^{humano 1}. Sua incidência é extremamente baixa e, mesmo em regiões com alta carga de tuberculose, o envolvimento gástrico geralmente é relatado como respondendo por menos de 1% dos casos de tuberculose^{gastrointestinal 2}. Essa baixa incidência foi atribuída a vários fatores protetores locais, incluindo o efeito bactericida do ácido gástrico, a integridade da barreira mucosa gástrica e o rápido esvaziamento gástrico, que coletivamente reduzem o contato bacilar sustentado com a parede^{gástrica 3}.

As manifestações clínicas da tuberculose gástrica são heterogêneas e carecem de características patognomônicas, com sintomas e sinais variando conforme a localização da lesão, profundidade de envolvimento e progressão^{da doença 4}. Os pacientes podem apresentar dor ou desconforto na parte superior do abdômen, náusea, vômito, anorexia e perda^{de peso 5}. Quando o envolvimento gástrico coexiste com a tuberculose extragástrica, sintomas constitucionais como febre baixa, suores noturnos e fadiga também podem^{ocorrer 6}. No entanto, essas manifestações são inespecíficas, e a suspeita clínica costuma ser retardada porque a doença pode se assemelhar a condições gástricas comuns, incluindo úlcera péptica, carcinoma gástrico, linfoma e tumores^submucosos.

Uma barreira diagnóstica importante descrita na literatura mais ampla é que a biópsia rotineira com fórceps endoscópicos frequentemente não é diagnóstica, especialmente quando as lesões são predominantemente submucosas ou quando as alterações granulomatosas são irregulares, levando a erro de^{amostragem 8}. Para superar isso, a estratégia diagnóstica multimodal apresentada aqui oferece vantagens significativas em relação às avaliações endoscópicas convencionais de modalidade única. Ao integrar imagens de corte transversal, aquisição de tecidos profundos e testes moleculares (PCR), essa abordagem abrangente aumenta significativamente a confiança no diagnóstico e minimiza atrasos quando colorações convencionais ácido-resistentes são^{negativas a 9}.

O objetivo geral deste protocolo é formalizar um fluxo de trabalho diagnóstico reproduzível e por etapas para suspeita de tuberculose gástrica. A justificativa por trás da apresentação desse caso específico é demonstrar como os clínicos podem navegar sistematicamente pela incerteza diagnóstica quando biópsias superficiais iniciais falham e a lesão imita fortemente um tumor submucoso.

Este caso representativo é altamente adequado para clínicos e endoscopistas que buscam orientação prática para o manejo de lesões gástricas atípicas e refratárias que coexistem com achados sistêmicos inexplicáveis, como a^{linfadenopatia 10}. Ao seguir esse protocolo multimodal, os profissionais podem melhorar o reconhecimento precoce, evitar ressecções radicais desnecessárias e iniciar terapias antituberculosas direcionadas de forma mais eficiente em ambientes^{clínicos 11}.

Apresentação do Caso:
Uma mulher de 70 anos apresentou-se com um histórico de um mês de dor abdominal, sem sintomas constitucionais típicos de tuberculose. O exame físico e as investigações laboratoriais de base foram pouco notáveis, mas a gastroscopia revelou uma lesão subepitelial indeterminada no fundo gástrico.

Diagnóstico, Avaliação e Plano:
Dado o rendimento não diagnóstico das biópsias endoscópicas superficiais, foram realizadas imagens de corte transversal e ultrassom endoscópico, que revelaram linfadenopatia sistêmica concomitante e uma massa originada da musculatura própria. Para chegar a um diagnóstico definitivo, foi realizada uma gastrectomia parcial laparoscópica para aquisição de tecido em espessura total. Histopatologia demonstrou inflamação granulomatosa com necrose caseosa, e a subsequente reação em cadeia da polimerase tecidual (PCR) confirmou a presença do complexo Mycobacterium tuberculosis. O paciente foi tratado com sucesso com terapia antituberculose padrão de primeira linha, resultando em resolução completa dos sintomas sem complicações.

Protocolo

Este protocolo foi realizado em conformidade com as diretrizes do Comitê de Ética em Pesquisa Humana Institucional do Hospital Popular Dongguan, sob o número de aprovação LW 2026-001. O consentimento informado por escrito foi obtido do paciente antes de todos os procedimentos diagnósticos, terapêuticos e de acompanhamento.

1. Elegibilidade do paciente e avaliação inicial

1. Histórico médico
   1. Registrou a principal queixa e documentou o início dos sintomas, duração, localização, caráter, fatores agravantes (por exemplo, pós-prandiais ou noturnos) e fatores de alívio.
   2. Os sintomas associados foram registrados (por exemplo, arroto, náusea, vômito, refluxo, inchaço, diarreia, calafrios, febre, hematoquezia/melena) e avaliaram os fatores de alarme (por exemplo, perda de peso não intencional, febre persistente).
   3. Histórico médico documentado e medicamentos atuais (por exemplo, hipertensão e diabetes mellitus tipo 2; terapia anti-hipertensiva e para redução de glicose).
   4. Rastreado para fatores de risco relacionados à tuberculose (histórico de exposição, tuberculose prévia, imunossupressão) e histórico relacionado a malignidade.
2. Exame físico
   1. Avaliou o estado geral e os sinais vitais (pressão arterial, frequência cardíaca, temperatura, frequência respiratória) para confirmar a estabilidade clínica.
   2. Examinou a pele e a esclera para icterícia.
   3. Palpou manualmente as regiões dos gânglios linfáticos superficiais (cervical, supraclavicular, axilar) usando as almofadas do indicador e do médio para avaliar aumentação, sensibilidade ou fixação.
   4. Examinou o abdômen sistematicamente por meio de inspeção visual, auscultação dos sons intestinais e palpação manual leve e profunda para avaliar distensão, sensibilidade (incluindo rebote/proteção), massas palpáveis e sinal de Murphy.
   5. Examinou articulações e membros inferiores em busca de anomalias (por exemplo, edema, eritema, deformidade).
3. Investigações laboratoriais iniciais
   1. Colete hemograma completo (CBC) usando equipamentos laboratoriais padrão (veja a Tabela de Materiais).
   2. Obtivemos testes de função hepática e renal [alanina aminotransferase (ALT), aspartato aminotransferase (AST), bilirrubina, creatinina, ureia].
   3. Eletrólitos séricos obtidos [sódio (Na⁺), potássio (K⁺), cloreto (Cl⁻)].
   4. Foram obtidos testes de coagulação [tempo de protrombina (PT), tempo de tromboplastina parcial ativada (APTT)] e troponina cardíaca quando clinicamente indicado.
   5. Obtidos marcadores tumorais séricos [por exemplo, antígeno carcinoembrionário (CEA), antígeno de carboidrato 19–9 (CA19–9), alfa-fetoproteína) (AFP)] para apoiar o diagnóstico diferencial.
   6. Realizou exames de sangue oculto nas fezes.
   7. Avaliei Helicobacter pylori usando um método institucional (sorologia, teste respiratório de ureia ou antígeno de fezes).
      NOTA: Registrou o método utilizado e seu limiar de interpretação.

2. Fluxo de trabalho diagnóstico para lesões gastrointestinais e sistêmicas

1. Gastroscopia e amostragem inicial
   1. Realizou gastroscopia diagnóstica para avaliar o esôfago, estômago (incluindo o fundo de fundo na visão retroflexa) e duodeno.
   2. Localização documentada, tamanho, aparência macroscópica e camada suspeita de origem da lesão, além de imagens representativas arquivadas.
   3. A úlcera duodenal foi classificada usando um sistema padrão de estadiamento endoscópico (por exemplo, estágio ativo com exsudato) e imagens arquivadas.
   4. Obteve biópsias com pinça da superfície da lesão e mucosa adjacente (≥6 fragmentos quando tecnicamente viável) usando pinças endoscópicas (ver Tabela de Materiais) e posicionou amostras em formalina tamponada neutra a 10% (veja Tabela de Materiais).
   5. Amostras rotuladas com identificadores de pacientes e locais de amostragem foram entregues à patologia dentro de 1 hora após a coleta.
   6. Iniciou a terapia de supressão ácida para a úlcera ativa e reavaliou a resposta aos sintomas durante o acompanhamento.
2. Imagem em seção transversal
   1. Realizou tomografia computorizada torácica (TC) sem contraste usando protocolo adulto padrão (por exemplo, 120 kVp; modulação automática de corrente em válvula; tom 0,9–1,2).
   2. Imagens reconstruídas com espessura de corte de 1,0 mm com multiplanar reformatadas e revisadas usando janelas pulmonares e mediastinais.
   3. Nódulos pulmonares documentados (localização, diâmetro máximo, densidade) e linfadenopatia mediastinal/hilar (estações, diâmetro de eixo curto).
   4. Comparado com exames de imagem anteriores quando disponíveis para avaliar mudanças intervalares.
3. Tomografia computorizada abdominal superior com contraste
   1. Realizou tomografia computorizada superior abdominal com contraste, salvo contraindicação.
   2. Administrou contraste iodado (ver Tabela de Materiais) a 1,5 mL/kg (máximo 120 mL) via injetor de potência a 3,0 mL/s, seguido por um flush de 30–40 mL com soro fisiológico (ver Tabela de Materiais).
   3. Fase arterial adquirida em 25–30 s e fase venosa portal em 60–70 s após a injeção, e reconstruída com espessura de corte de 1,0–1,25 mm.
   4. Espessamento/realce documentado da parede gastrointestinal (bulbo duodenal, cardia, antro gástrico) e linfadenopatia abdominal mapeada (pericárdica, hepatogástrica, retroperitoneal) por localização e tamanho.
4. Ultrassom endoscópico (EUS) e amostragem
   1. EUS realizado usando um ecoscópio de matriz linear (faixa de frequência típica 5–12 MHz; veja Tabela de Materiais).
   2. Localizou a lesão e determinou a camada de origem (por exemplo, músculo próprio) e registrou o tamanho da lesão (por exemplo, 12,4 mm × 5,3 mm), ecogenicidade, homogeneidade e características acústicas posteriores com arquivamento de imagens.
   3. Realizou aspiração/biópsia guiada por EUS com agulha fina para melhorar o rendimento tecidular para lesões submucosas.
   4. Utilizou uma agulha calibre 22 (veja Tabela de Materiais) e realizou 3 passagens (2 passadas com sucção usando uma seringa de 10 mL; 1 passagem sem sucção), com 10–15 movimentos de ida e volta por passagem sob visualização contínua por ultrassom.
   5. Preparavam manchas diretas a cada passagem; Fixei imediatamente uma lâmina em etanol 95% para citologia e secou a outra lâmina ao ar para coragem rápida, se disponível.
   6. Colocamos material residual em formalina tampada neutra a 10% para criar um bloco celular para histologia e colocaram uma porção separada em um tubo estéril para testes moleculares.
   7. Monitorado para complicações imediatas (dor, sangramento, perfuração) por pelo menos 2 horas após o procedimento e documentado sinais vitais e status dos sintomas.
      NOTA: Se o caso apresentado não incluiu aspiração por agulha fina (FNA)/biópsia com agulha fina (FNB), substitua os Passos 2.4.3–2.4.7 pelo método exato de amostragem utilizado e indique explicitamente a limitação.

3. Intervenção cirúrgica e testes laboratoriais confirmatórios

1. Gastrectomia parcial laparoscópica
   1. Confirmou a ausência de contraindicações cirúrgicas (por exemplo, coagulopatia não controlada, doença cardiopulmonar instável) e revisou os resultados laboratoriais pré-operatórios.
   2. Induziu anestesia geral e estabeleceu pneumoperitônio em 12–14 mmHg.
   3. Inseriu portas laparoscópicas padrão (por exemplo, porta de câmera umbilical de 10 mm mais 2–3 portas de trabalho; veja Tabela de Materiais) e realizou exploração sistemática.
   4. Localizou a lesão com base em informações endoscópicas/de imagem pré-operatórias (por exemplo, fundo de olho próximo à cardia/curvatura maior).
   5. Realizou gastrectomia em cunha/parcial para remover a lesão com margem bruta de ≥1 cm quando anatomicamente viável, alcançando hemostasia e garantindo fechamento conforme a prática institucional.
   6. A amostra foi entregue imediatamente à patologia, registrou o tempo até a fixação e orientou a amostra (proximal/distal ou anterior/posterior) para avaliação macroscópica.
2. Histopatologia
   1. Tecido fixo em formalina tamponada neutra a 10% por 24–48 horas em temperatura ambiente.
   2. Amostras de áreas representativas (centro da lesão, interface com tecido adjacente e áreas grosseiramente necróticas quando presentes), processadas para embedding com parafina e cortadas em seções com espessura de 3–4 μm.
   3. Realizou coloração de hematoxilina e eosina (H&E) e avaliou inflamação granulomatosa e necrose (incluindo necrose caseosa).
   4. Realizou colorações especiais: coloração periódica ácido-schiff (PAS) e coloração periódica ácido-prata metenamina (PASM) para elementos fúngicos, e coloração Ziehl–Neelsen ou auramina–rodamina para bacilos ácido-resistentes.
      NOTA: Uma coloração negativa para bacilo ácido-rápido (AFB) não excluiu a tuberculose; A interpretação foi integrada com testes moleculares e achados clínicos/de imagem.
3. Testes moleculares [reação em cadeia da polimerase tecidual (PCR)]
   1. Selecionou tecido para testes moleculares usando instrumentos limpos para evitar contaminação cruzada e utilizou áreas de trabalho separadas para as etapas pré e pós-amplificação.
   2. DNA extraído de tecido fresco (preferido) ou tecido fixado em formalina, embutido em parafina (FFPE) usando um kit de extração validado. Para tecido FFPE, cortes desparafinizados com xileno (2 × 10 min) seguidos por lavagens graduadas com etanol (100%, 95%, 70%) (veja Tabela de Materiais para reagentes), e secagem ao ar antes da lise.
   3. Realizou PCR em tempo real direcionado ao complexo de tuberculose M. (por exemplo, IS6110 ou outro alvo validado).
   4. Utilizou as seguintes condições de ciclagem como perfil padrão de PCR em tempo real: desnaturação inicial a 95 °C por 5 minutos; 40 ciclos de 95 °C por 15 s e 60 °C por 60 s.
   5. Os resultados interpretados usando limiares laboratoriais [por exemplo, limiar do ciclo (Ct) ≤ 38 como positivo, Ct 38–40 como indeterminado exigindo testes repetidos, e sem amplificação como negativo] e resultados indeterminados confirmados por extração repetida e PCR repetidos.
      NOTA: Substitua gene(s) alvo e limiares de Ct pelos usados pelo laboratório, caso seja diferente.
4. Ensaio de liberação de interferon-gama (IGRA)
   1. Realizou IGRA em sangue total para apoiar a avaliação da infecção tuberculosa.
   2. Coletou 1 mL de sangue em cada tubo de ensaio [controle zero, tubos de antígeno para o bacilo da tuberculose, controle de mitógeno] e misturou invertendo 10 vezes imediatamente após a coleta.
   3. Incubou tubos a 37 °C por 16–24 horas, centrifugou a 2.000–3.000 × g por 15 minutos e colheu plasma para medição de interferon-gama com ensaio imunossorvente ligado a enzimas (ELISA).
   4. Interpretou IGRA como positiva quando (antígeno TB − nulo) ≥0,35 UI/mL e ≥25% de zero, com critério adequado de resposta mitogênica por ensaio.
      NOTA: Se o IGRA não foi realizado neste caso, declare isso explicitamente e forneça o motivo.
5. Integração diagnóstica
   1. Estabeleceu o diagnóstico integrando (i) inflamação granulomatosa com necrose caseosa na histopatologia, (ii) evidência molecular do complexo M. tuberculosis na PCR, e (iii) achados clínicos/de imagem de suporte.
   2. Diagnósticos alternativos registrados foram considerados (por exemplo, malignidade, linfoma, infecção fúngica) e os achados negativos apoiando a exclusão.

4. Manejo terapêutico e acompanhamento da terapia antituberculosa

1. Consultei especialistas em doenças infecciosas para confirmar o regime após a confirmação diagnóstica.
2. Administrou terapia antituberculosa padrão de primeira linha (rifampicina, isoniazida, pirazinamida, etambutol) conforme orientação institucional/nacional.
3. Ajustaram as doses com base no peso corporal e na função hepática/renal e documentaram os valores laboratoriais basais e de acompanhamento.
4. Monitorado para eventos adversos (intolerância gastrointestinal, hepatotoxicidade, erupção cutânea, sintomas visuais) e controlado conforme a prática institucional.
5. Acompanhamento agendado em 2 semanas após alta e depois a cada 4 semanas durante o tratamento inicial, com intervalos subsequentes individualizados conforme a resposta clínica.
6. Realizei hemograma completo e testes de função hepática em cada consulta.
7. Avaliou a resolução dos sintomas e foi rastreada para recorrência com base em avaliação clínica e repetição de imagens/endoscopia quando clinicamente indicado.

Resultados

Resultados iniciais da avaliação
Uma mulher de 70 anos apresentou-se com dor abdominal por um mês. Ela relatou não ter exposição conhecida à tuberculose e negou sintomas constitucionais ou alarmantes, incluindo náusea, vômito, febre e perda significativa de peso. Seu histórico médico incluiu hipertensão bem controlada e diabetes mellitus tipo 2, controlados com medicamentos orais crônicos. No exame físico, ela estava alerta e hemodinamicamente estável. Não foi observada icterícia nem linfadenopatia su...

Discussão

A tuberculose gástrica é uma manifestação incomum da tuberculose gastrointestinal e pode surgir por disseminação hematógena ou linfática, extensão direta de lesões adjacentes ou implantação em situações de defesa mucosa comprometida. Como os sintomas são inespecíficos e as aparições endoscópicas frequentemente se sobrepõem à doença úlcera péptica, malignidade, linfoma e tumores subepiteliais, o diagnóstico frequentemente é adiado e pode exigir uma abordagem gradual que integre o contexto...

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Kit de tintura ácido-resistente (Ziehl– Neelsen)	BD Difco	215073	Para coloração AFB; alternativa aceitável para a coloração de auramina
Centrífuga (2.000– 3.000 e mais vezes; g)	Eppendorf	5810 R	Separação de plasma para IGRA
Coberturas	Citotest	10212424C	Para preparação para microscopia
Scanner de tomografia computadorizada (multi-detector)	Siemens Healthineers	Definição SOMATOM AS+	Qualquer ≥ CT de 64 fatias aceitável; registrar kVp, espessura de fatia, fases
Pinças descartáveis para biópsia	Boston Scientific	1395 (Mandíbula Radial 4)	Para biópsias mucosas/superficiais; qualquer pinça estéril de uso descartável é aceitável
Kit de extração de DNA (FFPE)	QIAGEN	56404 (Kit de Tecido FFPE com DNA QIAamp)	Se estiver usando seções FFPE para PCR
Kit de extração de DNA (tecido)	QIAGEN	69504 (DNeasy Blood & Kit de Tecido)	Para extração de DNA de tecido fresco
Leitor de placas ELISA	BioTek (Agilent)	Sinergia H1	Para leitura IGRA ELISA (se usar kit que exige leitor)
Processador de ultrassom EUS	Olympus	EU-ME2	Qualquer processador EUS equivalente aceitável
Agulha EUS-FNA/FNB, 22G	Cook Medical	EchoTip Ultra (22G)	Se seu caso usou FNA/FNB; registre o calibre e o número de passagens
Gastroscópio	Olympus	GIF-HQ190	Gastróscopo diagnóstico padrão; modelos equivalentes aceitáveis
Grocott' S Uniforme de prata de metenamina (GMS/PASM)	Abcam	ab150680	Para triagem fúngica (PASM/GMS)
H& Kit de coloração E ou reagentes	Sigma-Aldrich (Merck)	HT110116	Coloração de hematoxilina e eosina
Kit de teste IGRA	Qiagen	QuantiFERON-TB Gold Plus	IGRA de sangue total; critérios de interpretação de registros
Software de análise / rotulagem de imagens	NIH	ImageJ/Fiji	Para adicionar barras de escala/anotações a imagens histológicas
Insufflador	Karl Storz	ENDOMAT	Manter pneumoperitônio; registrar a pressão utilizada
Laparoscópio	Karl Storz	26003BA	laparoscópio de 10 mm; equivalente aceitável
Bolsa de recolha de amostras laparoscópicas	Medicina Aplicada	Endo Catch II	Para extração segura do espécime
Grampeador laparoscópico (cunha / gastrectomia parcial)	Medtronic	GIA endometriose	Use grampeador institucional; tipo de cartucho de gravação, se relevante
Torre laparoscópica (câmera + fonte de luz)	Karl Storz	IMAGE1 S	Qualquer sistema equivalente de imagem laparoscópica é aceitável
Ecoendoscópio EUS linear	Olympus	GF-UCT180	EUS linear recomendado para amostragem; equivalente aceitável
Lâminas de microscópio	Citotest	188105	Para esfregologia de citologia
Microtome	Leica Biosystems	RM2235	Para 3&ntraço; 4 & mu; M seccionamento
Meio de montagem	Sigma-Aldrich (Merck)	6522	Coverslipping
Kit PCR complexo de MTB (validado)	Sansure Biotech	Kit de Diagnóstico de DNA para MTB	Use o complexo de MTB validado da sua instituição e o complexo PCR validado; registre o alvo e o limiar de CT
Contraste iodinado não iônico (para tomografia computadorizada)	GE Healthcare	Omnipaque 350	Use o padrão institucional de contraste; registre a concentração e a dose
Sistema de incorporação de parafina	Leica Biosystems	HistoCore Arcadia	Qualquer sistema de incorporação equivalente é aceitável
Kit de coloração PAS	Sigma-Aldrich (Merck)	395B	Para triagem fúngica
Suprimentos limpos para fluxo de trabalho por PCR (ponteiras de filtro)	Thermo Fisher Scientific	2069G	Use pontas resistentes a aerossol para reduzir a contaminação
Injetor de potência para contraste	Bayer	MEDRAD Stellant	Qualquer injetor aceito; taxa de injeção e lavagem de soro fixo
Instrumento de PCR em tempo real	Roche	LightCycler 480 II	Qualquer sistema validado de PCR em tempo real aceitável
Recipiente de amostra (à prova de vazamentos)	Thermo Fisher Scientific	02-544-208	Para transporte de tecidos fixados em formalina
Software de estatísticas/números	GraphPad Software	Prisma	Se usado para plotamento; opcional
Seringa (10 mL)	BD	309604	Para sucção durante a FNA quando usada
Sistema de videogastroscópio (endoscopia diagnóstica do GI superior)	Olympus	CV-190 (processador), CLV-190 (fonte de luz)	Qualquer plataforma de endoscopia equivalente é aceitável; modelo de registro utilizado
Formalina tamponada 10% neutra	Sigma-Aldrich (Merck)	HT501128	Fixação de amostras de biópsia e resseção
37 & deg; Incubadora C	Thermo Fisher Scientific	Heratherm	Para incubação IGRA
95% de etanol	Sigma-Aldrich (Merck)	459844	Fixação imediata de lâminas de citologia