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Todos os procedimentos foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal da Guangzhou Miles Biotechnology Co., Ltd., com número de aprovação IACUC-MIS2023045.
Estabelecimento do Modelo Rat SUI
Um total de 20 ratas Sprague-Dawley (SD), com idades entre 6 e 8 semanas, foram utilizadas para criar um modelo de lesão do assoalho pélvico, simulando o parto. Para induzir a dilatação vaginal por balão (DBV), os ratos foram anestesiados por meio de injeção intraperitoneal de cetamina (75 mg/kg) e xilazina (10 mg/kg). Um cateter de Foley de 10 Fr desinflado foi cuidadosamente inserido no canal médio vaginal, e então o balão foi inflado com 3 mL de soro fisiológico estéril. O balão foi mantido no lugar por 4 horas para replicar o prolongado alongamento mecânico dos músculos do assoalho pélvico e a compressão do nervo pudendo associada ao trabalho de parto. O período de modelagem foi de 7 dias. No 8º dia, 6 animais foram selecionados aleatoriamente para testes urodinâmicos.
O estabelecimento bem-sucedido do modelo foi verificado por meio de testes urodinâmicos e da medição dos níveis séricos de lactato desidrogenase (LDH), que servem como indicadores de lesão muscular. Após confirmar a modelagem bem-sucedida, os ratos SUE foram divididos aleatoriamente em um grupo operado por simulação e um grupo de tratamento, com cinco ratos em cada grupo. Ao mesmo tempo, cinco ratos SD normais foram fornecidos como grupo controle. No grupo simulado, agulhas de acupuntura foram inseridas nos pontos de acupuntura BL23 (localizados 6 mm laterais ao processo espinhoso L2) e GB30 (localizados na parte posterior da articulação do quadril) sem qualquer estimulação elétrica. No grupo de eletroacupuntura, os mesmos pontos de acupuntura foram estimulados usando um dispositivo de eletroacupuntura, seguindo o método padrão de tratamento clínico. O dispositivo de eletroacupuntura foi ajustado para uma forma de onda densa e esparsa de 1 Hz a 2 V. Cada intervenção durou 30 minutos por dia durante 10 dias consecutivos. Todos os animais eram monitorados diariamente e alojados em condições laboratoriais padrão. Ao final do experimento, foram realizados testes urodinâmicos nos animais de cada grupo. Posteriormente, cada grupo de ratos foi anestesiado com uma mistura de isoflurano a 3% e oxigênio de 1,0 L/min. Após a perda da consciência dos ratos, a concentração de isoflurano foi ajustada para 5%, e amostras foram coletadas após a morte dos ratos por insuficiência respiratória.
Testes urodinâmicos
Após anestesia induzida por isoflurano, os animais foram posicionados em posição supina e fixados. Uma incisão na linha média inferior do abdômen expôs abexiga 18. Um cateter epidural foi implantado através de uma fístula de 2 mm de diâmetro na cúpula da bexiga, avançado 0,5–1,0 cm para dentro do lúmen e fixado com uma sutura 11-0 por meio da técnica de cordão da bolsa. O cateter foi conectado a um sistema de monitoramento de pressão e perfundido com soro salino tingido com azul metileno a 37 °C a 10 mL/h via bomba de microseringa, com monitoramento simultâneo de pressão intravesical. A capacidade máxima da bexiga foi calculada como o produto da duração da infusão (o intervalo entre o início da infusão e a primeira gotícula do líquido uretral) e a taxa de fluxo. A pressão do ponto de vazamento (LPP) foi determinada registrando o pico de pressão intravesical imediatamente após a liberação abrupta da compressão abdominal aplicada manualmente. Todos os parâmetros foram adquiridos usando um sistema de análise urodinâmica, com medições triplicadas por métrica. Todas as amostras foram codificadas aleatoriamente e analisadas de forma simples-cega por três operadores independentes, cada um realizando uma única medição. Os resultados das três medições independentes foram usados para análise estatística.
Meça o nível sérico de lactato desidrogenase (LDH)
No sétimo dia pós-operatório, aproximadamente 1 mL de sangue total foi obtido da veia caudal de cada rato. As amostras coletadas foram deixadas em temperatura ambiente por 1 hora para permitir a formação de coágulos, após o que foram centrifugadas a 2.000 × g por 15 minutos. Aproximadamente 0,5 mL de sobrenadante foi cuidadosamente coletado como soro. Os níveis séricos de lactato desidrogenase (LDH) foram determinados quantitativamente usando um kit de ensaio de D-lactato desidrogenase, de acordo com os protocolos do fabricante.
Perfilamento Proteômico e Análise Bioinformática
Uma análise proteômica quantitativa foi realizada em tecidos musculares lisos uretrais isolados dos grupos modelo e de tratamento. As proteínas foram identificadas a partir de dados brutos de espectrometria de massa usando o Proteome Discoverer 2.4, com um limiar de taxa de falsa descoberta de 1%. A análise bioinformática de proteínas diferencialmente expressas (DEPs) foi realizada usando pacotes baseados em R: a análise de expressão diferencial foi realizada usando o pacote limma (|log2FC| > 1, ajustado p < 0,05), a análise de enriquecimento de ontologia gênica (GO) e a análise de vias da Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) foram realizadas usando o pacote clusterProferer, com termos/vias enriquecidos considerados significativos no p ajustado < 0,05 e valor q < 0,2; O agrupamento hierárquico foi visualizado usando o pacote pheatmap. Uma rede de interação proteína-proteína (PPI) foi construída usando o banco de dados STRING (v11.5, pontuação de confiança > 0.7).
Coloração por hematoxilina-eosina
Os tecidos do músculo liso do rato estavam fixados com 4% de paraformaldeído e embutidos na parafina. Seções seriadas (5 μm de espessura) foram preparadas usando um micrótomo e coradas com um kit padronizado de coloração H&E. A avaliação morfológica foi realizada usando microscopia de campo claro com ampliação de 40× a 400×, focando na integridade estrutural do tecido muscular, infiltração de células inflamatórias e remodelação da matriz.
Coloração Tricroma de Masson
De acordo com o protocolo experimental aprovado pelo comitê de ética, coletamos amostras dos animais no décimo dia de tratamento. Os tecidos musculares do rato foram fixados com 4% de paraformaldeído e parafina embutidos. Seções seriadas (5 μm de espessura) eram cortadas usando um micrótomo rotativo. Seções desparafinizadas foram tingidas com o tricromo de Masson. As seções tingidas foram fotografadas sob um microscópio de campo claro com ampliação de 100×.
Western blot
Proteínas totais foram extraídas do tecido muscular liso de rato por interrupção mecânica no tampão de lise RIPA mantido a baixa temperatura e suplementado com inibidores de protease. Os lisados foram clarificados por centrifugação a 10.000 × g durante 15 minutos a 4 °C, e o sobrenadante contendo proteína foi coletado para análise. A concentração de proteína foi determinada com um ensaio de ácido bicinconínico (BCA) usando albumina sérica bovina como padrão de calibração. Quantidades iguais de proteína (30 μg) foram carregadas em géis SDS–poliacrilamida de 10% ou 12% e separadas sob condições redutivas. Após a eletroforese, proteínas foram transferidas para membranas PVDF com tamanho de poros de 0,22 μm. As membranas foram incubadas em 3% de BSA por 1 hora em temperatura ambiente para bloquear sítios de ligação inespecíficos, seguidas por incubação noturna a 4 °C com anticorpos primários reconhecendo GAPDH, MYL1, TNNI2, TNNT1, TNNT3 e MYLPF. Após lavagem com TBST três vezes, anticorpos secundários marcados com HRP foram aplicados por 2 horas em temperatura ambiente. A detecção de sinais era realizada usando um substrato quimioluminescente, e as imagens eram capturadas com um sistema de imagem de luminescência. A quantificação da expressão proteica foi realizada por análise densitométrica, com o GAPDH servindo como referência interna.
PCR quantitativa em tempo real (qPCR)
As amostras de tecido foram lisadas usando um reagente de extração total de RNA, e o RNA foi isolado seguindo as instruções do fabricante fornecidas com o kit de extração de RNA. Primers específicos para genes foram projetados usando software dedicado (Tabela 1) e sua especificidade foi verificada por análise BLAST (homologia ≥18 bp, Tm = 58–62 °C). O RNA foi então transcrito reversamente usando um kit de transcrição reversa, e a expressão do gene alvo foi detectada usando um kit de detecção SYBR Green qPCR.
Análise estatística
Comparações estatísticas entre dois grupos foram realizadas usando um teste t com amostras independentes, enquanto as diferenças entre múltiplos grupos foram avaliadas usando ANOVA unidirecional seguida por análise post hoc de Bonferroni. Os dados são expressos como média ± desvio padrão (DS) ou média ± erro padrão da média (SEM). Um valor de p < 0,05 foi considerado indicativo de significância estatística.