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Artigo de método

Desenvolvimento de um modelo de lesão pulmonar por blast grave em uma cabra para avaliação ultrassonográfica

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DOI:

10.3791/70656

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29 de maio de 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Trauma Medical Center, Daping Hospital, 2No. 951 Hospital of PLA

Neste artigo

Resumo

Este estudo estabeleceu com sucesso um modelo de lesão pulmonar por blast grave em cabras com pressão de condução de 4,5 MPa, causando lesão significativa e mortalidade de 41,67%. A pontuação de ultrassom pulmonar avaliou dinamicamente os danos, correlacionando-se com indicadores tradicionais e demonstrando seu valor diagnóstico. Esse modelo reproduzível avança em diagnósticos e terapias para lesão pulmonar aguda.

Resumo

A lesão pulmonar por blast (BLI) causa danos pulmonares graves e alta morbidade, especialmente em ambientes militares e industriais, levando a hemorragias e possível insuficiência respiratória, destacando a necessidade de diagnósticos e tratamentos aprimorados. Este estudo teve como objetivo desenvolver um modelo padronizado de BLI severo em cabras para avaliar a precisão e viabilidade do ultrassom no ponto de atendimento para avaliação dinâmica. Cabras foram submetidas a sobrepressão controlada do jato usando o tubo de choque biológico (BST-I.) a pressões de acionamento de 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) e 5,0 MPa (n = 4), respectivamente. Parâmetros-chave, como o pico de sobrepressão, foram registrados. Sinais vitais, pontuação de ultrassom pulmonar (LUS), índice de oxigenação (PaO₂/FiO₂) e água extravascular pulmonar (EVLW) foram monitorados no início do início (0 h antes da lesão) e em 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h e 12 h após a lesão. Tomografia computadorizada torácica (TC) às 0 h e 12 h quantificaram a razão de lesão pulmonar, e exame geral após a eutanásia avaliaram a hemorragia pulmonar e a pontuação de lesão. Com 4,5 MPa, a sobrepressão máxima foi de 396,92 kPa, com uma taxa de mortalidade pós-lesão de 41,67%, enquanto em 4,0 MPa, a taxa de mortalidade foi de 0%. A LUS aumentou ao longo do tempo, mostrando correlação negativa com PaO₂/FiO₂ e correlação positiva com o EVLW em 3 horas, 6 horas e 9 horas, e correlação positiva com a razão de lesão pulmonar em 12 horas. A razão bruta de área da lesão pulmonar foi de 42,14% no grupo com 4,5 MPa, indicando lesão grave, enquanto 4,0 MPa mostraram lesão moderada. O modelo de 4,5 MPa era adequado para estudar lesões graves, ao contrário do 4,0 MPa, que causava apenas lesão moderada, e 5,0 MPa resultava em mortalidade de 100%. Foi estabelecido um modelo reprodutível de cabra para lesão pulmonar por blast, utilizando efetivamente a LUS para avaliar de forma não invasiva o dano pulmonar ao longo do tempo, fornecendo uma base para monitoramento e exploração de estratégias terapêuticas para lesão pulmonar aguda.

Introdução

As exposições a explosões, seja em ambientes militares ou civis, continuam a representar um grande contributo para morbidade e mortalidade, sendo a lesão pulmonar um dos principais determinantes dodesfecho 1. Evidências contemporâneas confirmam que a contusão pulmonar é um fator crítico de risco para complicações respiratórias graves, como pneumonia e síndrome do desconforto respiratório agudo (SDRA), que impactam significativamente o prognóstico dos indivíduosafetados 2. A avaliação rápida e precisa da extensão da lesão pulmonar é, portanto, essencial para orientar o manejo clínico e melhorar a sobrevivência.

A tomografia computadorizada (TC) é eficaz para avaliar a gravidade da lesão pulmonar por blast (BLI)3. No entanto, envolve exposição à radiação ionizante e pode ser impraticável em cenários envolvendo vítimas em massa ou recursos médicos limitados. O exame clínico para perfuração da membrana timpânica tem sido investigado como um possível marcador para lesão da blastoterapia pulmonar, mas estudos indicam que a perfuração isolada da membrana timpânica não é um indicador confiável de lesão oculta da blasta pulmonar ou de prognóstico ruim, e, portanto, não exclui a necessidade de investigaçãoadicional 4. A apresentação clínica das vítimas de explosão é altamente variável; Alguns pacientes apresentam de forma aguda, enquanto outros podem desenvolver insuficiência respiratória de 12 a 24 horas depois, ressaltando a importância crítica de uma reavaliação frequente no pronto-socorro para detectar lesões que não passaram por apercebimento, especialmente oBLI 5. Essas limitações destacam a necessidade urgente de uma técnica de imagem rápida e compatível com o leito para avaliar prontamente a gravidade da contusão pulmonar. Em eventos com múltiplas vítimas, ferramentas capazes de triagem e avaliação rápidas são cruciais para otimizar a alocação de recursos e melhorar os resultados gerais5.

A ultrassonografia torácica emergiu como uma ferramenta indispensável em ambientes de cuidados críticos, devido à sua natureza em tempo real, não invasiva e portátil6. Seu papel estabelecido no diagnóstico de diversas doenças pulmonares pleurais e parênquimas o torna uma modalidade altamente promissora para avaliação dinâmica de lesão pulmonar por blasto. Sinais ultrassonográficos como consolidação pulmonar, broncogramas, anormalidades da linha pleural e artefatos em forma de cauda de cometa podem servir como indicadores da extensão e gravidade da contusão pulmonar e edema7. Sua ausência de radiação ionizante o torna particularmente adequado para pacientes que necessitam de avaliações repetidas, e sua acessibilidade em ambientes com recursos limitados é uma vantagem significativa.

Embora a literatura existente apoie o uso do ultrassom no ponto de atendimento (POCUS) para triagem e monitoramento, o ultrassom já é rotineiramente utilizado na avaliação de traumas (por exemplo, avaliação focada estendida com ultrassonografia para trauma, eFAST) para detectar pneumotórax ehemotórax 8. No entanto, a validação rigorosa de sua precisão e viabilidade para a classificação de contusão pulmonar grave requer um modelo animal translacional e fisiologicamente relevante. Esta pesquisa busca estabelecer um modelo padronizado de lesão pulmonar por blast grave em cabras, que servirá como plataforma para avaliar sistematicamente a utilidade do ultrassom no ponto de atendimento na triagem rápida e monitoramento contínuo dessa condição potencialmente fatal.

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Protocolo

Todas as metodologias experimentais detalhadas neste manuscrito receberam aprovação do Comitê de Bem-Estar e Ética de Animais de Laboratório da Terceira Universidade Médica Militar (SCXK (Yu) 2017-0002). Além disso, todos os procedimentos relacionados a animais foram realizados em estrita conformidade com as diretrizes de uso animal estabelecidas pelo comitê de aprovação.

1. Animais experimentais

  1. Prepare cabras saudáveis, de 3 a 6 meses, fêmeas, pesando cerca de 15 kg.

2. Plataforma de lesão

  1. Causar lesões por blast pulmonar por tubo de choque biológico (o grande) (BST-I.), que tem 39,4 m de comprimento (Figura 1) e é dividido por dois filmes semirrígidos de alumínio em duas seções — a seção de propulsão e a seção experimental, usando pressão de direção de 4,0 MPa, 4,5 MPa e 5,0 MPa, respectivamente.

3. Preparação animal

  1. Jejue os animais por 24 horas e prive-os de água por 8 horas antes do experimento.
  2. Pese e registre.
  3. Use midazolam para introduzir anestesia (injeção intramuscular: 1 mg/kg).
  4. Raspe o pelo do peito, pescoço e virilha da cabra, depois aplique o creme depilatório para remover completamente o pelo restante.

4. Desenhar partições para detecção de ultrassonografia

  1. Anestesie a cabra com 3% de pentobarbital sódico (10–20 mg/kg) através de uma agulha que permanece na veia safena. Mantenha em uma posição lateral relaxada, com os membros perpendiculares ao tronco e a cabeça estendida.
  2. Mova a sonda ultrassônica paralela ao espaço intercostal, de baixo para cima, do dorsal para o anterior, para marcar as bordas do pulmão.
  3. Desenhe retângulos sucessivos de 2,5 centímetros ao longo do espaço intercostal na área do pulmão como partições para detecção de ultrassonografia. Há um total de 66 partições, sendo 33 à direita e 33 à esquerda, e o número de partições em cada espaço intercostal é 1, 2, 2, 5, 5, 5, 5, 4, 3, 1, respectivamente, do primeiro ao décimo espaço intercostal (Figura 2).

5. Operação cirúrgica

  1. Certifique-se de que a cabra está sob anestesia. Se não, injete um suplemento de 3% de pentobarbital sódico de 10 mg/kg.
  2. Cateterismo da veia cervical
    1. Posicione a cabra em posição lateral direita e prenda a cabra corretamente.
    2. Faça uma incisão longitudinal na pele, com aproximadamente 4 cm de comprimento, sobre o terço médio do sulco jugular. Realize uma dissecação contundente através do tecido subcutâneo e do músculo cólico cutâneo para expor e isolar a veia jugular externa.
    3. Insira um cateter venoso central de duplo lúmen (7Fr) sob a orientação de uma agulha introdutora. Avance o cateter aproximadamente 15 a 20 cm até que sua ponta fique posicionada dentro da veia pré-cavalal da cabra, aproximadamente 2 cm do átrio direito. Ligue e fixe o cateter com segurança.
    4. Conecte o lúmen distal por meio de uma torneira de parada de três vias a um sensor de temperatura e a um transdutor de pressão para monitoramento da pressão venosa central e injeção de soro salino gelado. Conecte o lúmen proximal por meio de uma torneira de três vias a uma linha de infusão intravenosa para administração de fluidos e administração de anestésico suplementar.
  3. Intubação endotraqueal
    1. Posicione a cabra em posição dorsal deitada e assegure o pescoço em extensão.
    2. Realize uma incisão longitudinal cutânea de 5–6 cm ao longo da linha média. Use dissecação contundente para separar os músculos esternoquioides e expor um segmento de 2–3 cm da traqueia.
    3. Coloque um trecho de ponto não absorvível sob a traqueia exposta para levantar e estabilizar suavemente a traqueia. Faça uma incisão horizontal em "T" através de 2–3 anéis traqueais no ponto médio do segmento estabilizado.
    4. Insira um tubo endotraqueal manguito tamanho 6.0 no lúmen traqueal e avance distalmente. Enche a algema. Suture a incisão traqueal de forma frouxa e suture firmemente o tubo à pele. Conecte o tubo endotraqueal diretamente ao circuito do ventilador mecânico.
      NOTA: Parâmetros do ventilador: o modo de ventilação é ventilação intermitente de pressão positiva (IPPV); o volume de maré (VT) é ajustado em 8 mL/kg; a frequência respiratória (RR) é mantida em 15 respirações por minuto; a razão inspiratória para expiratória (I: E) é configurada como 1:1,5; a vazão (V) é estabelecida em 7,2 L/min; a fração de oxigênio inspirado (FIO 2) é ajustada para 21%; a pressão positiva no final da expiração (PEEP) é ajustada a 3,9 cm H2O; e a pressão inspiratória (Pinsp) varia de 9 a 12 cm H2O.
  4. Cateterismo da artéria femoral
    1. Posicione a cabra em posição lateral direita e prenda a cabra corretamente.
    2. Realize uma incisão longitudinal cutânea de 3–4 cm ao longo da face medial da virilha. Empregue técnicas de dissecação contundente para revelar o feixe neurovascular femoral, garantindo a separação meticulosa da artéria femoral da veia e do nervo vizinhos por meio de uma combinação de métodos de dissecação contundente e aguda.
    3. Realize uma pequena arteriotomia transversal no segmento isolado da artéria femoral e insira um cateter de termodiluição Picco (4Fr) na artéria. Avance o cateter para 16 cm, garantindo que a ponta esteja na artéria ilíaca comum. Suture firmemente o cateter à pele ou tecido subcutâneo ao redor.
      NOTA: Tenha cuidado para não dobrar ou forçar o cateter contra a parede do vaso, pois isso comprometerá medições precisas de transdução de pressão e termodiluição.
    4. Conecte o cateter por meio de uma torneira de três vias a um transdutor de pressão para monitoramento hemodinâmico contínuo, como pressão arterial e água extravascular pulmonar. Essa linha também é usada para amostragem intermitente de sangue arterial. Mantenha uma lavagem contínua de soro fisiológico heparinizado (1–2 mL/h) para evitar a oclusão do cateter.

6. Monitoramento e medições

  1. Sinais vitais
    1. Meça e registre sinais vitais nos seguintes momentos: 0 h antes da lesão, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h e 12 h após a lesão.
    2. Conecte todas as linhas sensores ao módulo de monitoramento PiCCO. Posicione o transdutor de pressão no nível do coração. Abra a torneira do transdutor para o ar atmosférico e realize calibração zero tanto para as linhas de pressão arterial quanto venosa.
    3. Monitore e registre a pressão arterial média (MAP). Posicione as almofadas de eletrodos para monitorar temperatura central (T), frequência respiratória (RR) e frequência cardíaca (HR) nos locais especificados: no lado esquerdo do tórax, entre a segunda e a terceira costelas; no lado esquerdo do peito, entre a quinta e a sexta costelas; e no lado direito do peito, entre a segunda e a terceira costelas.
  2. Ultrassonografia (Modo B)
    1. Realize exames de ultrassom pulmonar nos seguintes momentos: 0 h antes da lesão, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h e 12 h após a lesão. Mantenha uma sequência de varredura consistente: examine primeiro o pulmão direito e depois o esquerdo em cada ponto de tempo.
    2. Posicione a sonda de ultrassom perpendicular à superfície da pele no ponto médio de cada partição. Certifique-se de que o ponto marcador da sonda esteja orientado em direção à coluna.
    3. Obtenha clipes de vídeo escaneando os espaços intercostais da 10ª costela até a 1ª canela. Salve gravações de vídeo que incluam pelo menos dois ciclos respiratórios completos.
    4. Aplique a seguinte pontuação padronizada de ultrassom pulmonar (LUS) às imagenssalvas 9: Designe dois ultrassonistas treinados para realizar o processo de pontuação de forma independente. Calcule a média das duas pontuações para a avaliação final.
      NOTA: A pontuação 0 indica a presença de linhas A. A pontuação 1 é caracterizada por múltiplas linhas B distintas e separadas, ou por uma fusão de linhas B que abrange menos de 50% da linha pleural. A pontuação 2 indica linhas B coalescentes difusas, comumente chamadas de "pulmão branco". A pontuação 3 é atribuída quando há evidência de consolidação, que pode se manifestar como ecotextura semelhante a tecido ou broncogramas aéreos dinâmicos.
  3. Análise de gases sanguíneos arteriais (GG)
    1. Colete amostras de sangue arterial para análise nos seguintes momentos: 0 h antes da lesão, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h e 12 h após a lesão.
    2. Usando uma seringa, primeiro aspire e descarte a lavagem fisiológica heparinizada e aproximadamente 5 mL de sangue da linha arterial PiCCO. Subsequentemente, extraia 0,3 mL de sangue arterial fresco diretamente pelo cateter.
    3. Injete imediatamente a amostra de sangue em um cartucho de teste CG4+. Insira o cartucho no analisador portátil de gases sanguíneos para realizar a análise.
    4. Registre os valores medidos para pH, pressão parcial de oxigênio (PaO 2) e outros parâmetros relevantes. Calcule o índice de oxigenação (a razão entre a pressão parcial de oxigênio e a fração de oxigênio inspirado, PaO₂/FiO₂).
  4. Medição de água extravascular pulmonar (EVLW)
    1. Realize medições de EVLW via termodiluição transpulmonar nos seguintes momentos: 0 h antes da lesão, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h e 12 h após a lesão.
    2. Re-zere os transdutores de pressão arterial e venosa conforme descrito na seção 6.1.2. Certifique-se de que uma forma de onda arterial estável seja exibida no monitor antes de prosseguir.
    3. Injete exatamente 10 mL de soro salino gelado (0 °C) como bolus através do sensor de temperatura do cateter venoso central. Complete a injeção em até 7 segundos. Realize três injeções consecutivas em cada momento. Use a média das três medições para o valor final do EVLW.
    4. Registre o EVLW e outros parâmetros hemodinâmicos fornecidos pelo sistema PiCCO.
  5. Tomografia computadorizada (TC)
    1. Faça tomografias torácicas às 0 h antes da lesão e 12 h após a lesão.
    2. Realize a varredura usando um scanner de tomografia computadorizada de 64 fatias com o seguinte protocolo: corrente de válvula: 200 mas; tensão de válvula: 100 kV; Tempo de rotação: 0,4 s.
    3. Peça para um radiologista qualificado realizar o exame e a análise subsequente sem conhecimento das condições experimentais. Use a estação de trabalho especializada para realizar uma análise volumétrica tridimensional do volume pulmonar total e do volume pulmonar lesionado, com um limiar definido da unidade de Hounsfield (HU) para segmentar o tecido pulmonar lesionado. Corrija a faixa de dano manualmente.
    4. Calcule a porcentagem do volume pulmonar lesionado (razão de lesão pulmonar) usando a fórmula: (volume pulmonar lesionado / volume pulmonar total) * 100%.

7. Procedimento de lesão por explosão da cabra

  1. Aloque aleatoriamente as cabras em uma de três categorias distintas de sobrepressão de explosão utilizando o tubo de biochoque BST-I. Ajuste a pressão de propulsão para níveis de 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) e 5,0 MPa (n = 4), respectivamente, para produzir as correspondentes ondas de choque primárias.
  2. Complete todas as medições e monitoramentos pré-lesão conforme descrito na Seção 6. Prenda a cabra com tiras de lona na posição de pé sobre a estrutura de fixação dentro do tubo de choque. Posicione a cabra a 37,5 m da fonte da explosão, com seu lado direito voltado para o epicentro da explosão (Figura 3).
  3. Posicione o sensor de pressão de ar na localização do animal dentro do BST-I.. Conecte o módulo de condicionamento de sinal ao sistema de aquisição de dados. Parâmetros de lesões registradas: o pico de sobrepressão, tempo de subida, duração positiva da fase e impulso positivo da fase para cada evento de lesão.
    NOTA: Sobrepressão de pico: O valor máximo da sobrepressão gerada pela onda de choque. Tempo de subida: O tempo necessário para a pressão subir de 0 até o valor máximo. Duração positiva da fase: A sobrepressão permanece acima da pressão ambiente após a passagem da frente de choque. Impulso de fase positiva: O momento total por unidade de área transmitido pela sobrepressão da onda de choque.
  4. Imediatamente retire a cabra do tubo de choque após a explosão. Realize uma avaliação rápida da condição geral da cabra. Use um aparelho de sucção para eliminar rapidamente qualquer secreção sangrenta do tubo endotraqueal e das vias aéreas. Inicie ventilação manual imediatamente se for observada apneia.
  5. Complete todas as medições e monitoramentos pós-lesão conforme descrito na Seção 6.

8. Eutanásia e necrópsia

  1. Anestesie profundamente a cabra com uma injeção intravenosa de pentobarbital de sódio a 3% após completar o período de observação pós-lesão de 12 horas. Realize a exsanguinação pelo cateter arterial ou outro vaso principal. Proceda a uma esternotomia para extrair cuidadosamente o pulmão.
  2. Realize a pontuação grosseira usando o software ImageJ.
    1. Abra a imagem do pulmão grosso no ImageJ e converta-a para uma imagem em tons de cinza de 16 bits usando o caminho do menu: Imagem > Tipo > 16 bits. (Figura 4A–B)
    2. Defina o valor em escala de cinza na junção entre o tecido lesionado e o tecido normal como limiar. Designe todas as áreas acima desse limite em vermelho para representar a zona de lesão (Figura 4C).
    3. Trace manualmente a borda externa do tecido pulmonar para definir o limite da área total do pulmão (Figura 4D).
    4. Calcule a razão de pixels (área da lesão / área pulmonar total) tanto para o lado dorsal quanto para o ventral usando o caminho do menu: Analisar > Definir Medições > Ctrl + M. Certifique-se de que as opções 'Área', 'Fração de Área' e 'Limite ao Limiar' estejam selecionadas. Faça a média dessas duas razões para determinar a razão final da área da lesão para todo o pulmão.
  3. Avalie a contusão pulmonar usando um sistema padronizado de pontuação adaptado de Yelverton etal 10, e os critérios históricos do nosso laboratório.
    NOTA: Critérios de pontuação para lesão pulmonar grossa: Grau 0 (Ausência de lesão): Sem contusões ou hemorragias visíveis. Grau 1 (Leve): Petéquias ou contusões dispersas envolvendo menos de 10% da área total da superfície pulmonar. Grau 2 (Moderado): Contusões ou hepatização que abrangem até 30% de toda a área superficial pulmonar. Grau 3 (Grave): Contusão ou hepatização que afeta até 50% da área total da superfície pulmonar. Grau 4 (Muito Grave): Contusão ou hepatização que afeta mais de 50% da área total da superfície pulmonar.

9. Análise estatística

  1. Realize todas as análises estatísticas usando o software SPSS (Versão 22.0).
  2. Expresse os dados de medição contínua como média ± desvio padrão (x ± s).
  3. Teste todos os conjuntos de dados para verificar a normalidade.
  4. Utilize um teste t de amostras independentes para comparar as médias entre dois grupos.
  5. Use o coeficiente de correlação de Pearson para análises de correlação.
  6. Defina o limite de significância em p < 0,05.
    NOTA: '#' significa p < 0,05, comparado à pontuação pré-lesão; '##' significa p < 0,01, comparado à pontuação pré-lesão. '*' significa p < 0,05, comparação entre o grupo 4,0 MPa e o grupo 4,5 MPa; '**' significa p < 0,01, comparação entre o grupo 4,0 MPa e o grupo 4,5 MPa.

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Resultados

No grupo de 4,5 MPa, os parâmetros medidos da lesão são os seguintes: sobrepressão máxima 396,92 ± 23,11 kPa, tempo de subida 9,41 ± 0,32 ms, duração positiva da fase 51,57 ± 1,39 ms, e impulso positivo de fase 5884,26 ± 231,44 kPa.ms. O perfil pressão-tempo da onda de choque é mostrado na Figura 5. Na coorte de 4,0 MPa, a taxa de mortalidade foi de 0% tanto imediatamente após a lesão quanto em 12 horas. Na coorte de 4,5 MPa, a taxa de mortalidade imediatame...

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Discussão

A lesão pulmonar por blast é uma condição grave resultante da exposição a explosões. É caracterizado por danos parênquimatos pulmonares, hemorragia alveolar, inflamação e distúrbios da coagulação, e frequentemente progride para SDRA com altamortalidade 11,12,13. Os métodos diagnósticos atuais incluem TC para avaliação morfológicadetalhada 3,14...

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Divulgações

Todos os autores declararam que não há conflitos de interesse.

Agradecimentos

Esse trabalho foi apoiado pelo Jovem Destaque em Ciência e Tecnologia de Defesa Nacional (2023-JCJQ-ZQ-001), pelo Talento Jovem Excepcional de Biotecnologia de Defesa Nacional (01-SWKJYCJJ06), pelo Fundo de Juventude Excepcional de Chongqing (CSTB2022NSCQ-JQX0017) e pelo Projeto de Construção de Especialidades Científicas Militares.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Scanner de tomografia computadorizada de 64 fatiasGE Lightspeed, EUA5133730-3
Babylog 8000Drä Alemanha, Alemanhahttps://www.draeger.com/en_in/Products/Babylog-8000-plus
Tubo de choque biológico (o grande) (BST-I)Daping Hosipital, Universidade Médica do ExércitoBST-I
Cartucho de teste CG4+Abbott, EUACG4+
Cateter venoso central de duplo lúmenBraun, AlemanhaDuo V730
Aparelho de Sucção ElétricaEquipamentos Médicos e Equipamentos Médicos de Jiangsu Yuyue Supply Co., Ltd.7A-23D
Tubo endotraquealTAMPA, HangzhouETT6014C
Heparina sódicaChangzhou Qianhong Bio-pharma Co., Ltd.
Cateter I.V. para uso únicoWeihai Jierui Medical Products Co., Ltd.22G e horários; 25mm/Y-G
Software ImageJ
IOTech  Software WaveView 7.15.6IOtech, EUAhttps://iotechsoftware.com/
MidazolamNhwa Pharma Co. Chinahttp://pharma-api.com/2-2-5-midazolam-injection/
PCB  sensorPCB Piezotronics, Inc. (EUA)M102A02
Pentobarbital sódicoShanghai PharmaceuticalNA
Estação de trabalho Philips IntelliSpace Portalhttps://www.philips.ca/healthcare/product/HC881101/intellispace-portal-12
Kit de Monitoramento PiccoPULSION, AlemanhaPV8215
Analisador portátil de gases sanguíneosAbbott, EUAi-STAT 300G
Dispositivo portátil sem fio de ultrassom de corYoukey Bio-Medical Electronics Co., ChinaD-236
Creme puro depilatória VeetReckitt Benckiserhttps://www.veet.co.in/en/products/hair-removal-creams/

Referências

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Reimpressões e permissões

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