Artigo de método

Indução calibrada por fio de estenoses ureterais segmentares em ratos via laparotomia da linha média

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DOI:

10.3791/70726

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17 de abril de 2026

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1Department of Urology and Urosurgery, University Medical Center Mannheim, Medical Faculty of the University of Heidelberg, 2Department of General, Visceral, and Transplantation Surgery, Heidelberg University Hospital, 3Division of Intelligent Systems and Robotics in Urology (ISRU), German Cancer Research Center (DKFZ) Heidelberg, 4DKFZ Hector Cancer Institute at the University Medical Center Mannheim, 5Department of Urology, University Hospital Leipzig, 6Department of Plastic Surgery and Hand Surgery, TUM University Hospital Munich, 7ORSI Academy

Neste artigo

Resumo

Esse protocolo descreve um modelo reprodutível de ratos para induzir estenoses ureterais segmentais graduadas usando ligadura parcial calibrada por fio via laparotomia na linha média. Uma ligadura 6-0 ao redor do ureter e um fio metálico de calibração geram um lúmen residual definido, permitindo confirmação funcional imediata da gravidade da obstrução.

Resumo

As estenoses ureterais continuam sendo um grande desafio na urologia reconstrutiva e podem surgir de lesão iatrogênica, inflamação crônica, trauma, anomalias congênitas ou radiação. Essas lesões frequentemente levam a uma uropatia obstrutiva progressiva e à perda da função renal. Apesar dos avanços nas técnicas endoscópicas e cirúrgicas, as estenoses ureterais continuam desafiadoras de serem tratadas, e seus efeitos de remodelação no parênquima renal continuam sendo objeto de pesquisas contínuas, ressaltando a necessidade de modelos pré-clínicos robustos. Este estudo estabelece um modelo reprodutível de rato para indução controlada de vários graus de estenoses ureterais segmentares usando ligadura parcial calibrada por fio via laparotomia na linha média. O protocolo permite a constrição segmentar e não transectoriza do ureter, destinada a aproximar o estreitamento fibrótico em nível funcional e anatômico, minimizando danos isquêmicos evidentes e mantendo a viabilidade do tecido macroscópico com continuidade ureteral. Ao fornecer uma plataforma experimental confiável com baixa variabilidade entre animais e entre cirurgiões, essa abordagem apoia a pesquisa translacional sobre mecanismos biomoleculares, biomateriais, modalidades de imagem e técnicas reconstrutivas para a doença da estenose ureteral.

Introdução

Estenoses ureterais são relativamente comuns e representam um desafio significativo em urologia. Eles são relatados em até 4,9% dos pacientes após procedimentos endoscópicos para doença dos cálculos 1,2,3, com incidências ainda maiores em populações de alto risco, como receptores de transplante renal, onde até 7% podem serafetados 4. Embora muitas estenoses sejam causadas por lesão cirúrgica ou intervenções médicas, causas não iatrogênicas também representam uma proporção importante. Essas incluem inflamação crônica, infecções urinárias, traumas físicos, anomalias congênitas e radioterapia 5,6. Cada uma dessas etiologias pode, em última instância, resultar em obstrução urinária, infecções recorrentes, dor, formação de pedras e – se não tratada – perda irreversível da função renal. Pacientes afetados frequentemente apresentam morbidade e redução da qualidade de vida, como demonstrado tanto em coortes institucionais quanto em revisões sistemáticas 5,7,8. O ônus de longo prazo é substancial; Em uma coorte multi-institucional de pacientes com estenoses ureteronais após cirurgia de cálculos ureteroscópicos, a nefrectomia do lado afetado foi necessária em 25% dos casos, ressaltando a considerável morbidade dessacondição 9.

Essa carga clínica ressalta a necessidade de modelos pré-clínicos robustos que possam possibilitar pesquisas sobre processos biomoleculares associados e orientar a otimização do tratamento. As modalidades de tratamento mais comuns são métodos endoscópicos, como dilatação ou incisão a laser, bem como a aplicação de stent, com reconstrução cirúrgica reservada para casos maiscomplexos 10. Apesar da melhora nos resultados iniciais, a recidiva e a restenose continuam problemáticas. As taxas relatadas de recidiva após intervenção variam de 11% a 40%, e muitos pacientes precisam de múltiplas operações ou colocação de stents de longo prazo para alívio duradouro e proteção dosórgãos 11,12. O sucesso do tratamento é influenciado pelo local da estenose, duração, etiologia e detalhes de tratamentos anteriores; Diversas revisões recentes e grandes estudos de coorte ressaltam a necessidade de técnicas aprimoradas e de uma compreensão mecanicista maisprofunda 4,5,13.

A pesquisa translacional eficaz requer modelos experimentais que repliquem de perto os mecanismos fibróticos, características histopatológicas, contexto anatômico e processos renais a montante da doença da estenose ureteral humana. Entre eles, modelos em roedores tornaram-se plataformas confiáveis para estudar fibrose ureteral e perda funcional renal, além de avaliar intervenções anti-fibróticas e estratégiasreconstrutivas 6,14,15,16,17. A base fisiopatológica para esses modelos foi estabelecida por Chevalier et al., que revisaram diferentes estratégias de obstrução ureteral, focando na obstrução ureteral unilateral (UUO) como modelo reprodutível de fibrose intersticial renal e nefropatia obstrutiva emratos 6.

Com base nessa base, modelos contemporâneos refinaram o nível e o padrão de obstrução. Vroomen et al. introduziram uma abordagem tecnicamente segura usando eletroporação irreversível para induzir obstrução urinária parcial unilateral com cicatriz renal14. De forma semelhante, Chen et al. avançaram um modelo de UUO reversível que permite o estudo dinâmico da regressão de fibrose sob condições hemodinâmicasvariáveis 15. Nan et al. e Khater et al. elucidaram ainda mais as cascatas moleculares que impulsionam a progressão da fibrose ureteral e a modulação terapêutica na obstrução parcial16,17.

Modelos anteriores que dependiam de ligadura ureteral completa, resseção segmentar, enterramento no músculo psoas ou lesão térmica frequentemente resultavam em graus não controlados e não padronizados de obstrução, isquemia extensa e necrose, levando a atrofia parenquimatosa renal severa em vez de obstrução graduada. Essas abordagens, descritas por Chevalier et al. e Thornhill et al., forneceram valiosos insights mecanicistas sobre nefropatia obstrutiva, mas não recapitularam o estreitamento fibrótico localizado característico da doença benigna da estenose ureteralbenigna clínica 6,18. Ainda falta modelos simples e padronizados de roedores que gerem estenoses segmentares calibradas, não transectivas, com viabilidade tecidular preservada e graus definidos de obstrução urinária renal.

Para suprir essa lacuna, este estudo estabelece um protocolo cirúrgico padronizado para a indução controlada de estenoses ureterais parciais em ratos. O modelo foi projetado para ser reproduzível, anatomicamente preciso e versátil para uso em pesquisas pré-clínicas que abrangem urologia reconstrutiva, avaliação de imagem intraoperatória e aplicações de engenharia de tecidos. Ao minimizar a variabilidade entre operadores e replicar o estreitamento fibrótico clinicamente relevante, esse modelo oferece uma plataforma translacional para avançar a compreensão mecanicista e acelerar o desenvolvimento terapêutico para a doença da estenose ureteral.

No uso prático, o grau de obstrução pode ser ajustado selecionando o diâmetro do fio de calibração apropriado para corresponder à questão de pesquisa. Diâmetros maiores (por exemplo, 0,65 mm) aproximam obstrução parcial leve com fluxo urinal quase fisiológico, enquanto diâmetros menores (0,30–0,20 mm) modelam obstrução de alto grau com redução significativa do fluxo. Além disso, essa abordagem cirúrgica pode ser aplicada tanto como modelo terminal agudo para estudar mudanças hemodinâmicas e funcionais imediatas quanto adaptada para experimentos de sobrevivência que investiguem remodelação crônica de tecidos, progressão da fibrose e adaptação renal a longo prazo.

Neste modelo, a obstrução parcial é obtida amarrando uma ligadura 6-0 ao redor do ureter com um fio metálico de calibração de diâmetro definido e, posteriormente, removendo o fio, deixando um lúmen residual correspondente ao tamanho do fio. Esse desenho permite um estreitamento graduado e controlado geometricamente, que pode ser diretamente correlacionado com a saída urinária funcional renal.

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Protocolo

Todas as atividades animais descritas aqui foram realizadas em instalações credenciadas e aprovadas pelo comitê institucional de cuidado e uso animal (IACUC) do Conselho Regional de Baden-Württemberg em Karlsruhe, Alemanha. Animais experimentais foram manuseados de acordo com protocolos institucionais e em conformidade com a legislação alemã que regula o bem-estar animal, bem como as diretrizes estabelecidas pelo Conselho da Comunidade Europeia (2010/63/UE) e as diretrizes Pesquisa Animal: Relato de Experimentos In Vivo (ARRIVE). Ratos machos Sprague Dawley (peso médio: 400 g) foram usados após um período de aclimatação de 7 dias na instalação animal sob condições padronizadas. Os reagentes e os equipamentos utilizados estão listados na Tabela de Materiais.

1. Anestesia e analgesia

  1. Induza sedação usando isoflurano de 4 vol% entregue em 100% de oxigênio via uma câmara de indução com vazão de 5 L/min.
  2. Após a perda do reflexo de endireitamento, administre uma injeção subcutânea de 100 mg/kg de cetamina (solução a 10%; cerca de 0,35 mL) e 4 mg/kg de xilazina (diluição 1:10 da solução a 2%; cerca de 0,75 mL) para anestesia dissociativa, analgesia e sedação.
  3. Confirme a profundidade anestésica pela ausência de resposta a um estímulo firme de beliscão do dedo do pé usando pinças.
  4. Aplique pomada oftálmica em ambos os olhos para evitar dessecamento da córnea.
  5. Obtenha analgesia adicional por meio de uma injeção subcutânea de 5 mg/kg de carprofeno (diluição 1:10 de solução a 5%; cerca de 0,35 mL).
  6. Mantenha a anestesia com isoflurano suplementar de 4 vol% via máscara facial neonatal conforme necessário durante todo o procedimento.
  7. Mantenha a temperatura corporal entre 36,5 e 37,5 °C usando uma almofada térmica controlada termostaticamente durante todo o procedimento.

2. Preparação do local operacional e do instrumento

  1. Prepare a mesa de esfregamento com todos os instrumentos necessários, incluindo pinças de preparação atraumática, grampos de sobrecarga rombada, tesouras de preparação, ligaduras monofilamentos 6-0 não reabsorvíveis, fios metálicos de calibração (liga com superfície eletropolida e extremidades desebarbadas; 0,65, 0,55, 0,30, 0,20 mm de diâmetro; esterilizadas (autoclaveadas) antes do uso), cotonetes umidificados, zatigas de gaze, seringa de 1 mL com agulha integrada de 30 G, azul de metileno (solução 0,5%, não diluída), solução isotônica de cloreto de sódio (0,9% NaCl) e tubos capilares.
  2. Monte o animal no aparelho de exposição cirúrgica a roedores conforme descrito em relatóriosanteriores 19,20.
  3. Raspe a área de acesso abdominal e realize esfoliações triplas alternadas com etanol a 70% e swabs antissépticos à base de povidona-iodo ou clorexidina, em círculos concêntricos do local da incisão para fora. Repita três vezes.
  4. Cubra o animal com drapeados estéreis, deixando apenas o campo cirúrgico exposto.
  5. Manusear anestésicos voláteis, cortantes cortantes e corantes químicos de acordo com as regulamentações institucionais de biossegurança, utilizando sistemas adequados de recaptação de gás, equipamentos de proteção e recipientes aprovados para descarte de objetos cortantes.

3. Acesso cirúrgico via laparotomia da linha média

  1. Realize uma incisão cutânea abdominal mediana de aproximadamente 3 cm usando tesoura fina.
  2. Incire a linha alba longitudinalmente na linha média para acessar a cavidade peritoneal.
  3. Use ganchos de preparação e compressas úmidas para retrair a parede abdominal e expor o retroperitônio.

4. Identificação e mobilização do ureter esquerdo

  1. Identifique o espaço renal e retroperitoneal e mobilize suavemente a gordura retroperitoneal ao redor usando dissecação contundente com pinças e cotonetes umidificados (Figura 1A).
  2. Perfure a pelve renal através do parênquima renal com uma agulha fina de 30 G (Figura 1B).
  3. Injete 0,01–0,2 mL de azul de metileno não diluído para facilitar a identificação visual do ureter (Figura 1B.5).
  4. Observe a demarcação progressiva do corante para acompanhar visualmente o curso ureteral da pelve renal em direção à bexiga (Figuras 1B.6–10).
  5. Separe suavemente o tecido conjuntivo e adiposo ao redor do ureter demarcado pelo corante usando pinças finas e cotonetes umidificados com um movimento de arrancada (Figura 1C). Evite agarrar diretamente, compressão ou tração excessiva da parede ureteral para evitar rupturas ou fístulas. Mobilize o ureter até que ele possa ser seguido continuamente da pelve renal até a junção vesicoureteral (Figura 1D).

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Figura 1: Identificação e mobilização assistida por contraste do ureter esquerdo. A seta verde representa o local da injeção renal. A seta cinza representa o ureter ingênuo. A seta azul representa um ureter demarcado por corante. A caixa preta representa uma área posteriormente ampliada. (A) Exposição retroperitoneal esquerda após laparotomia da linha média. (B) Demarcação do ureter assistida por corante. (C) A dissecção contundente mobiliza o ureter a partir do tecido ao redor. (D) Ureter esquerdo totalmente exposto da pelve renal até a junção vesicoureteral. (E) Ilustração esquemática dos passos descritos, incluindo seringa e azul de metileno. Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.

5. Ligadura parcial distal calibrada do ureter esquerdo usando um fio metálico

  1. Eleve um segmento mobilizado do ureter distal usando fórceps atraumáticos sem comprimir o ureter (Figura 2A.1–2).
  2. Passe um ponto monofilamento 6-0 sob o ureter usando pinças contundentes (Figura 2A.3).
  3. Coloque um fio metálico de calibração com o diâmetro desejado (0,65, 0,55, 0,30 ou 0,20 mm) paralelo ao ureter dentro do laço da ligadura (Figuras 2B.1–6).
  4. Aperte a ligadura gradualmente usando um nó deslizante com vários lançamentos em laço na mesma direção até que a sling de sutura se adapte firmemente ao complexo ureter-fio sem afrouxar, o que requer pelo menos 4 arremessos com movimentos lentos dos dedos quicando para permitir que o ponto se acomode entre os arremessos.
    NOTA: A tensão de sutura deve estar logo abaixo da resistência à ruptura à tração, que é de 5–7 N para uma sutura 6-0 não reabsorvente, então recomenda-se 3 N. Isso se traduz em um peso de puxão de cerca de 306 g e pode ser medido usando uma balança de mola ou é comparável à força digital ao segurar um celular comum com dois dedos em uma empunhadura de pressão. O aspecto essencial é que o ponto esteja completamente fechado ao complexo ureter-fio e que haja tantos arremessos em laço que eles não se soltam antes do início dos lançamentos de travamento. Devido à natureza frágil dos pontos 6-0, não há "apertado demais", pois o ponto se quebra antes de ficar apertado demais para o tecido do ureter degenerar. Agora fixe o nó com 3 lançamentos de laço de travamento contrário para evitar nós de ar (Figuras 2B.7–10).
  5. Retirar cuidadosamente o fio de calibração em movimento lento e reto para evitar lesões por cisalhamento na parede ureteral, deixando um lúmen ureteral residual padronizado correspondente ao diâmetro do fio (Figura 2C.1–5). A superfície do fio polido minimiza o atrito durante a remoção e reduz o risco de danos nos tecidos.

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Figura 2: Ligadura parcial calibrada distal do ureter esquerdo usando um fio metálico. (A) Ureter distal isolado e elevado com pinças de sobre-holt; Ponto 6-0 colocado embaixo. (B) Fio de calibração posicionado paralelo ao ureter dentro da ligadura e ligadura usando um nó deslizante. (C) Retirada de fio, deixando um lúmen residual padronizado. (D) Ilustração esquemática dos passos descritos com o ureter (azul), fio de calibração (cinza) e ligadura (preto). Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.

6. Identificação e mobilização do ureter direito

  1. Repita os passos em analogia com o lado contralateral (Figura 3).

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Figura 3: Identificação e mobilização assistida por contraste do ureter direito. (A) Exposição retroperitoneal direita com demarcação do ureter assistida por contraste. (B) Dissecção contusa que mobiliza o ureter a partir do tecido ao redor. (C) Ilustração esquemática dos passos descritos. Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.

7. Ligadura completa proximal do ureter direito usando um nó deslizante sem fio

  1. Eleve um segmento mobilizado do ureter proximal usando fórceps atraumáticos sem comprimir o ureter (Figura 4A.1–3).
  2. Passe uma sutura monofilamentosa 6-0 não reabsorvente sob o ureter usando pinças rombas (Figuras 4A.4,5).
  3. Aperte a ligadura gradualmente usando um nó deslizante com vários lançamentos em laço na mesma direção até que a sling de sutura liga firmemente o ureter sem afrouxar, conforme descrito acima. Depois, fixe com lançamentos de laço de travamento contrário para alcançar o fechamento luminal quase completo (Figuras 4B.1–4).

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Figura 4: Ligadura completa proximal do ureter direito usando um nó deslizante sem fio. (A) Ureter proximal isolado e elevado com pinças Overholt; Ponto 6-0 colocado embaixo. (B) Ligadura completa sem fio usando nó deslizante. (C) Ilustração esquemática dos passos descritos. Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.

8. Validação funcional da obstrução ureteral parcial e completa

  1. Para validação da obstrução parcial do lado esquerdo, injete 0,2 mL de azul de metileno não diluído transparâmpatamente na pelve renal usando uma seringa e observe o preenchimento antegrado do ureter distal ao local da ligadura (Figura 5A.1–3).
  2. Injete 1,0 mL de soro fisiológico na pelve renal para eliminar progressivamente o sinal do contraste por lavagem e confirmar a continuidade da patência ureteral (Figura 5A.3). Para aumentar ainda mais a certeza de obstrução ureteral incompleta, continue a injeção até que a capacidade volumétrica da bexiga seja superada e que seja possível observar uma saída visível de fluido pela uretra (Figura 5A.4–5).
  3. Para validação da obstrução completa no lado direito, injete 0,2 mL de azul de metileno não diluído de forma transparâmática na pelve renal e confirme a ausência de passagem distal do corante (Figura 5B.1,2).
  4. Identifique a dilatação proximal do calibre ureteral a montante do local da ligadura como indicador do bloqueio completo de saída (Figura 5B.3).
  5. Para validação adicional além da viabilidade do modelo animal, transecto ambos os ureteres distalmente e posicione as extremidades ureterais abertas diretamente adjacentes aos capilares de vidro para medições da coleta urinária (Figura 5C).
  6. Para validação desse modelo, quantifique-se a produção urinária por rim ao longo de um período de 30 minutos sob condições fisiológicas e após ligação parcial usando fios de calibração de 0,65, 0,55, 0,30 e 0,20 mm de diâmetro (Figura 5C.2).

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Figura 5: Validação funcional da obstrução ureteral parcial e completa. (A) Obstrução parcial: coloração do corante e lavagem salina demonstram preenchimento distal do ureter e saída uretral, indicando permeabilidade residual. (B) Obstrução quase completa: ausência de corante distal, com ureter proximal inchado a montante da ligadura. (C) A coleta capilar do volume urinário unilateral durante 30 minutos por rim mostra uma redução gradual da produção de urina de condições fisiológicas para oclusão completa. (D) Medidas microscópicas de (1) diâmetro da ligadura, (2) diâmetro do ureter externo, (3) diâmetro do ureter interno e (4) espessura da parede do ureter. Asteriscos indicam níveis de significância exploratória. Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.

9. Etapas terminais e considerações

  1. Feche a parede abdominal em múltiplas camadas sob condições estéreis, conforme descrito em relatórios anteriores 19,20,21.
  2. Após a cirurgia, observe cada animal continuamente até que ele recupere a reclinação esternal e a mobilidade espontânea. Realoque os animais somente depois que estejam totalmente alertas e capazes de se movimentar coordenadamente. Administrar analgesia pós-operatória com carprofeno subcutâneo a 5 mg/kg duas vezes ao dia durante 48 horas e garantir que a equipe veterinária realize avaliações clínicas diárias para monitorar a recuperação e detectar possíveis complicações.
  3. Documente o bem-estar animal usando sistemas padronizados de pontuação como a Escala de Careta de Rato22 e a Pontuação de Condição Corporal23. Os desfechos humanos incluem uma Pontuação de Careta de Rato ≥ 6 ou uma Pontuação de Condição Corporal de 1, apesar da analgesia adequada. Eliminar imediatamente os animais que apresentem esses achados, bem como aqueles que apresentam infecção pós-operatória ou deiscência da parede abdominal, de acordo com os padrões institucionais de cuidado.
  4. Para experimentos não de sobrevivência ou para interrupção após acompanhamento, eutanasie o animal por cardiectomia aguda sob anestesia profunda ou por luxação cervical (seguindo protocolos institucionalmente aprovados). Opcionalmente, ressecar tanto rins quanto ureteres em bloco para posterior inspeção anatômica, análise biomolecular ou imagem histopatológica.
  5. Descarte carcaças de animais, tecidos ressecados, objetos cortantes e soluções químicas restantes conforme as diretrizes institucionais de instalações animais e biossegurança.

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Resultados

A técnica de ligadura calibrada produziu uma redução dependente do diâmetro no fluxo urinário em todos os grupos experimentais. O fluxo urinário foi avaliado em um total de 14 ratos usando ambos os rins, resultando em medições de 5 órgãos por nível de obstrução parcial (0,65, 0,55, 0,30 e 0,20 mm de diâmetro). Além disso, foram incluídos 4 animais que receberam tratamento simulado de um lado (o ureter foi mobilizado, e uma ligadura frouxa e não constritiva de nó de ar foi amarrada sem fi...

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Discussão

Este estudo estabelece um método cirúrgico reprodutível para induzir estenoses ureterais unilaterais em ratos por laparotomia na linha média e ligadura parcial calibrada, resultando em estreitamento ureteral segmentar com viabilidade preservada do tecido macroscópico que funciona e anatomicamente se assemelha a estenoses ureterais humanas benignas.

Clinicamente, a doença da estenose ureteral continua sendo um dos principais contribuintes para a obstrução do tr...

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Divulgações

Nenhum conflito de interesse declarado. Nenhum financiamento específico foi recebido. Uso animal aprovado pelo Conselho Regional de Baden-Württemberg (IACUC 35-9185.81/G-62/23).

Agradecimentos

Os autores agradecem com gratidão o serviço de armazenamento de dados SDS@hd apoiado pelo Ministério da Ciência, Pesquisa e Artes de Baden-Württemberg (MWK) e pela Fundação Alemã de Pesquisa (DFG) por meio das bolsas INST 35/1314-1 FUGG e INST 35/1503-1 FUGG. Além disso, os autores agradecem com gratidão o apoio do NCT (Centro Nacional de Doenças Tumorais em Heidelberg, Alemanha) por meio de seu programa estruturado de pós-doutorado e do programa de Oncologia Cirúrgica. Também reconhecemos o apoio, por meio de fundos estatais aprovados pelo Parlamento Estadual de Baden-Württemberg, à Aliança de Inovação Saúde + Ciências da Vida Heidelberg Mannheim, proveniente do programa estruturado de pós-doutorado Alexander Studier-Fischer: Inteligência Artificial em Saúde (AIH) - Uma colaboração entre DKFZ, EMBL, Universidade de Heidelberg, Hospital Universitário de Heidelberg, Hospital Universitário de Mannheim, Instituto Central de Saúde Mental, e o Instituto Max Planck de Pesquisa Médica. Além disso, agradecemos o apoio do Instituto de Câncer Hector da DKFZ do Centro Médico Universitário de Mannheim.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Pinças de preparação atraumáticaEsculapaFB395RDE BAKEY ATRAUMATA Pinças atraumaticas, reto
Grampos de sobrecarga sem embutidoEsculapaBJ012RPreparação do BABY-MIXTER e grampo de ligadura, curvado, 180 mm
cânulaBD (Beckton, Dickinson)301300BD Microlance 3 cânula 20 G
Tubos capilaresSigma AldrichP1174Tubo microcapilar, calibrado 100 & micro; L
CarprofenoCP Pharma115carprofeno 0,5% (5% com 50 mg/mL diluído 1:10) (Carprosol®)
Trocas de algodão whoolAmazonASIN: B0FPDB8ZGSTrocas de algodão não estéreis
(autoclave para experimentos de sobrevivência)
Varas de fixaçãolegefirm‎ 500343896Diapasões usados como hastes de fixação metálicas em formato de Y
Trocas de gazeMedrullASIN: B09164D1JGtrocas de gaze estéreis
Bolsa térmicaGardineer RealIP67Bolsa Térmica Royal Gardineer tamanho S, 20 watts
isofluranoPiramal Cuidados CríticosPZN / EAN 09714675 / 4150097146757100% isoflurano 250 mL
Vaporizador de isofluranoUNO ROESTVASTSTAAL BV180000002Vaporizador de isoflurano
Solução isotônica de cloreto de sódioB. BraunASIN: B007PZJOQ4Solução de cloreto de sódio a 0,9%
KetaminaCP Pharma1202cetamina 10% (100 mg/mL)
Fio de calibração metálico
(0,20 mm de diâmetro)		QUARKZMANASIN: B0DCZBT4LWFio metálico Cr20Ni80-Nichrom
(0,20 mm de diâmetro)
Fio de calibração metálico
(0,30 mm de diâmetro)		Rayher4006166052859Fio metálico Cr20Ni80-Nichrom
(0,30 mm de diâmetro)
Fio de calibração metálico
(0,55 mm de diâmetro)		SKYPROUPC: 792138793816Fio metálico Cr20Ni80-Nichrom
(0,55 mm de diâmetro)
fio de calibração metálico
(0,65 mm de diâmetro)		twippASIN: B07WFWNNRMFio metálico Cr20Ni80-Nichrom
(0,65 mm de diâmetro)
Azul de metileno 0,5%ProvepharmPZN / EAN 10179678 / 4150101796787METILTIIONINIUMCLOREDO Proveblue 5 mg/mL em frascos de 10 ml
Ligaduras monofilamentos 6-0 não reabsorvíveisCOVIDIENVP-889-Xsutura cirúrgica monofilamento feita de polipropileno não reabsorvível; agulha pode ser removida
Pomada oftálmicaBayer Vital GmbH15786815% de dexpantenol
Tubo de perfusor plásticoM. Schilling GmbHS702NC150tubo de ligação COEX 150 cm
Tesoura de preparaçãoEsculapaBC177RTesoura de preparação JAMESON, curvada, modelo fino, cega/romba, 150 mm (6")
Placa de açoMaschinenbau Feld GmbHC010206Chapa galvanizada, 40 x 50 cm, espessura 4,0 mm
seringa com agulha integradaBLPRKOTBL2509L3yici08Seringa de 1 ml com agulha integrada de 30 G
xilazinaCP Pharma1206xilazina 0,2% (2% com 20 mg/mL diluído 1:10) (Xylavet)

Referências

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