Este estudo foi conduzido exclusivamente com a linha celular de condrócitos humanos C28/I2, disponível comercialmente. Nenhum participante humano, amostras de tecido humano, materiais derivados de pacientes ou animais vivos estiveram envolvidos nesta pesquisa. Portanto, a aprovação do Conselho de Revisão Institucional (IRB) e do Comitê de Cuidados e Uso Institucionais de Animais (IACUC) não eram necessárias, de acordo com as diretrizes institucionais e nacionais. As ferramentas, produtos químicos, kits e reagentes usados no protocolo estão listados na Tabela de Materiais.
1. Cultura celular e construção de modelos OA
A linhagem celular de condrócitos humanos C28/I2 (detalhes fornecidos na Tabela de Materiais) foi obtida de um fornecedor comercial. Para garantir a reprodutibilidade experimental, as células foram autenticadas usando perfil de repetição curta em tandem (STR) e testadas rotineiramente para confirmar a ausência de contaminação por micoplasmas. Células entre as passagens 3 e 8 foram usadas em todos os experimentos. As células foram mantidas no DMEM suplementado com 10% de soro fetal bovino (FBS) e 1% de penicilina-estreptomicina (todos os reagentes de cultura estão detalhados na Tabela de Materiais) a 37 °C em uma atmosfera umidificada contendo 5% deCO2.
Para estabelecer o modelo in vitro de osteoartrite (OA), células C28/I2 foram estimuladas com IL-1β humano recombinante. Com base na literaturaestabelecida 6,7, experimentos preliminares de otimização dose-resposta projetados para induzir um estado catabólico robusto sem citotoxicidade imediata excessiva, as células foram tratadas com 20 ng/mL de IL-1β por 24 horas.
2. Agrupamento experimental e transfecção
Para elucidar as vias mecanicísticas, o estudo foi dividido em três principais módulos experimentais, cada um com no mínimo três réplicas biológicas independentes:
- Ganho/Perda de Função do SPRY2:
As células foram atribuídas ao Controle, modelo OA, OA + vetor vazio (NC), plasma de superexpressão OA + SPRY2 (OE-SPRY2) e pequenos grupos de RNA interferentes correspondentes (si-NC e três construtos específicos si-SPRY2: si-695, si-800, si-896) para rastrear a eficiência da interferência.
- Modulação miR-590-5p:
As células foram divididas em grupos Controle, modelo OA, OA + MIMIC NC, OA + miR-590-5p mimic, OA + inibidor NC e OA + miR-590-5p inibidores.
- Validação funcional da relação regulatória miR-590-5p/SPRY2:
Para avaliar melhor a relação regulatória proposta entre miR-590-5p e SPRY2, células foram submetidas a condições de miR-590-5p mimeticamente e inibidor para determinar se a modulação miR-590-5p alterou a expressão do SPRY2 no modelo OA.
Para transfecção, as células C28/I2 foram semeadas em placas de 6 poços em 2 × 10 célulasde 5 poços. Ao atingir 70%–80% de confluência, as transfecções foram realizadas usando um reagente comercial de transfecção à base de lipídios, de acordo com o protocolo do fabricante e procedimentos estabelecidos para entrega de pequenos RNAs em condrócitos24. Brevemente, plasmídeos (OE-SPRY2 e NC; 2 μg/poço) e oligonucleotídeos (miR-590-5p mimetiz/inibidor e siRNAs; 50 nM) foram diluídos em meio sérico reduzido. Os complexos de DNA/RNA lipídicos foram incubados em temperatura ambiente por 15 minutos antes de serem adicionados gota a gota às células em DMEM sem soro. Às 6 horas após a transfecção, o meio foi substituído por DMEM completo contendo 10% de FBS, e as células foram cultivadas por mais 48 horas antes da extração de RNA e proteínas.
3. detecção de qPCR
O RNA total e o miRNA foram isolados usando um kit dedicado de extração de miRNA, de acordo com o protocolo do fabricante. A pureza e concentração de RNA foram avaliadas usando um espectrofotômetro UV-Vis, e amostras com razões A260/A280 de 1,8–2,0 foram usadas para análises posteriores. Reagentes comerciais de transcrição reversa foram usados para sintetizar cDNA. O procedimento de ciclo da qPCR foi o seguinte: 95 °C por 10 minutos; 40 ciclos de 95 °C por 10 s, 58 °C por 30 s e 72 °C por 30 s; seguida por análise da curva de fusão para verificar a especificidade do primer e a ausência de dímeros do primer. β-actina e U6 serviram como controles internos para mRNA e miRNA, respectivamente. A expressão gênica relativa foi calculada usando o método 2-ΔΔCt 25. Todas as sequências de espoletão, incluindo as de Col-II, SPRY2, Beclin-1, LC3, Bcl-2, miR-590-5p e genes de referência, estão listadas na Tabela 1.
| Nome de base | Primer frontal (5′-3′) | Primer reverso (5′-3′) |
| U6 | ATTGGAACGATACAGAAGATT | GGAACGCTTCACGAATTTG |
| miR-590-5p | GCGTAAGGCACGCGGTG | AGTGCAGGGTCCGAGGTATT |
| β-actina | TGGCACCCAGCACAATGAA | CTAAGTCATAGTCCCCCCTAGAAGCA |
| SPRY2 | TAAGCCACTGAGCAAGGAAGAT | TGGAAGGTAACACCATAAAAAGG |
| BCL-2 | TGGGATTCCTGCGGATTGAC | TCAGTCTACTTCCTCTGTGATGTTG |
| Beclin-1 | TCCCGTGGAATGGAATGAATGAGA | GTAAGGAACAAGTCGGTATCTCTCTG |
| LC3-II | CATCCAACCAAAATCCCGGT | GAGCTGTAAGCGCCTTTTTTAA |
Tabela 1: Sequências de primer usadas para análise quantitativa de PCR (qPCR). Sequências de primer direto e reverso usadas para amplificação e quantificação de transcritos alvo e controles internos de referência por qPCR.
Salvo especificação em contrário, os dados são expressos como média ± desvio padrão (DS). A significância estatística foi determinada usando ANOVA unidirecional seguida pelo teste post hoc S-N-K. Símbolos indicam: *P < 0,05 vs. Controle; #P < 0,05 vs. o modelo indicado ou grupo controle negativo; &P < 0,05 vs. OA+Inibidor-NC.
4. Detecção de manchas ocidentais
As células foram colhidas e lisadas usando tampão RIPA suplementado com coquetéis inibidores de protease e fosfatase, seguindo procedimentos estabelecidos de extração proteica e imunoblotagem. Após centrifugação a 14.000 × g por 15 minutos a 4 °C para remover detritos celulares, o sobrenadante foi coletado e as concentrações de proteína foram quantificadas usando um kit de ensaio de proteínas BCA. Quantidades iguais de lisado proteico (30 μg) foram desnaturadas, resolvidas por SDS-PAGE por 1,5 hora e transferidas para membranas de PVDF a 300 mA por 1,5 h26. As membranas foram bloqueadas com 5% de leite desnatado em soro tampão Tris contendo 0,1% Tween 20 (TBST) por 1 hora em temperatura ambiente, seguida por incubação a 4 °C por 16 horas com anticorpos primários específicos (por exemplo, anti-SPRY2, diluição 1:1000). Após três lavagens em TBST, as membranas foram incubadas com anticorpos secundários conjugados com HRP apropriados em temperatura ambiente por 2 horas. As bandas proteicas foram visualizadas usando um sistema de detecção ECL e quantificadas pelo software ImageJ.
5. Análise estatística
Os dados foram analisados usando software de análise estatística. Todos os experimentos foram realizados com pelo menos três réplicas biológicas independentes (n ≥ 3), e os dados quantitativos são apresentados como a média ± desvio padrão (DS). Antes dos testes paramétricos, a normalidade dos dados era avaliada usando o teste de Shapiro-Wilk, e a homogeneidade da variância era avaliada. A significância estatística entre múltiplos grupos foi avaliada usando análise unidirecional da variância (ANOVA), seguida pelo teste post hoc Student-Newman-Keuls (S-N-K) para comparações múltiplas. P < 0,05 foi considerado estatisticamente significativo.