Todos os procedimentos foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal da Guangzhou Miles Biotechnology Co., Ltd., com o número de aprovação IACUC-MIS2023076. A empresa mencionada é um centro de experimentação animal; Nossos experimentos com animais são realizados aqui e, portanto, estão sujeitos à revisão do Comitê de Ética do Centro.
Animais e desenho experimental
Trinta camundongos BALB/c (machos, 8 semanas, pesando 22 ± 2 g) foram comprados comercialmente. Critérios de indução e validação do modelo: Um modelo de miocardite induzida por inibidor de checkpoint imunológico (ICI) foi estabelecido por injeção intravenosa de ipilimumabe (5 mg/kg) e nivolumabe (10 mg/kg) por 2 semanas consecutivas. A dosagem ocorreu a cada 3 dias, totalizando uma duração de modelagem de 2 semanas. Esse protocolo já foi demonstrado induzir lesão cardíaca imunomediada significativa10. Às 24 horas após a injeção final, amostras de sangue foram coletadas pelo plexo retroorbital e centrifugadas a 300 x g por 15 minutos a 4 °C para isolar o soro; subsequentemente, os níveis séricos de cTnT foram quantificados usando um kit ELISA específico, envolvendo etapas sequenciais de carregamento de amostras, incubação de anticorpos conjugados com HRP, lavagem automática e reação do cromógeno TMB, com a densidade óptica medida em 450 nm para calcular concentrações com base em uma curva logística de quatro parâmetros, e uma concentração de cTnT ≥10 ng/mL foi considerada um estabelecimento bem-sucedido do modelo.
Seis camundongos modelo com peso corporal e concentração de cTnT mais próximos foram divididos aleatoriamente em dois grupos: um grupo controle e um grupo de tratamento (n=3 para ambos, replicação biológica). O grupo controle recebeu injeções intravenosas diárias de soro fisiológico normal na dose de 5 mL/kg. O grupo de tratamento recebeu injeções intravenosas diárias de emulsão lipídica à base de azeite de oliva (OOLE) a 5% em uma dose de 5 mL/kg pela veia caudal por 6 dias (essa representa a dosagem que utilizamos para tratamento clínico em nossa instituição; foi extrapolada para uso em camundongos com base nas razões de área de superfície corporal). Os seguintes exames foram realizados em uma janela de observação de 6 dias: a função cardíaca foi avaliada no início (dia 0) e após o tratamento (dia 6) utilizando um sistema de imagem fotoacústica por ultrassom. O sangue foi coletado pela veia retroorbital no dia 6, e as citocinas séricas foram quantificadas pelo ELISA. Após a eutanasia dos animais com uma overdose de anestesia, o tecido cardíaco foi congelado rapidamente para análise de proteínas.
Isolamento de células T
Os camundongos do grupo controle foram eutanasiados com uma overdose de anestesia. Os baços foram excisados assépticamente após uma esterilização superficial de 5 minutos com etanol de 75%, e todos os tecidos conjuntivos foram removidos. Os baços foram dissociados mecanicamente usando um filtro de células de 70 μm com PBS suplementado com 2% de FBS para criar uma suspensão de célula única. Essa suspensão foi então centrifugada a 300 x g ., 4 °C por 5 minutos, e os eritrócitos foram lisados com 1 mL de Buffer de Lisagem ACK por 2 minutos em temperatura ambiente. O processo de lise foi interrompido por lavagem com PBS. As células T foram enriquecidas negativamente para evitar a ativação usando um kit de isolamento de células T de camundongo. Para cada 10 milhões de células, 50 μL de coquetel de seleção foram adicionados e incubados em temperatura ambiente por 10 minutos. Em seguida, foi adicionada 75 μL de esferas magnéticas de estreptavidina por 10 milhões de células, com incubação de 5 minutos. Células ligadas à esfera foram retidas usando um ímã por 3 minutos, e as células T enriquecidas (com mais de 94% de pureza) foram coletadas do sobrenadante. Para separar os subconjuntos CD4⁺ e CD8⁺, as células enriquecidas foram coradas com anticorpos anti-CD3ε-PE, anti-CD4-APC e anti-CD8-FITC por 15 minutos no escuro, depois lavadas 3 vezes com PBS pré-resfriado. A separação foi realizada em um citômetro de fluxo usando a seguinte estratégia de gate: linfócitos (FSC/SSC), depois CD3⁺, depois CD4⁺ ou CD8⁺. As células foram separadas em modo Pureza em tubos de coleta pré-preenchidos com 200 μL de PBS, resultando em subconjuntos-alvo com pureza superior a 98%.
Construção e tratamento do modelo celular de miocardite
As células HL-1 foram cultivadas em meio DMEM/F12 suplementado com 10% de soro fetal bovino (FBS) e 1% de penicilina-estreptomicina (PS) sob condições padrão (37 °C, 5% CO₂). As células foram divididas em três grupos: grupo controle (não tratado), grupo modelo (células HL-1 tratadas com células T CD4+/CD8+ por 24 horas) e grupo OOLE (grupo modelo co-tratado com 10% de OOLE por 24 horas).
ELISA para detecção sérica de proteínas relacionadas a lesão do miocárdio
Incube 50 μL da amostra de soro nos poços de microplacas ricos em anticorpos pré-revestidos do kit por 30 minutos, depois lave três vezes com PBST para remover os componentes não ligados. Adicione a solução preparada de avidina marcada com peroxidase de raiz-forte (HRP) para uma segunda incubação. Lave três vezes novamente com PBST, adicione 100 μL de substrato 3,3',5,5'-tetrametilbenzidina (TMB) para iniciar a reação colorimétrica e termine a reação com 100 μL de solução de parada dentro de 30–45 minutos após o início. Meça a absorvância (OD) a 450 nm usando um leitor de microplacas e quantifique a concentração do analito-alvo usando uma curva padrão plotada com padrões de referência conhecidos.
Western blot
Os tecidos cardíacos foram pulverizados usando um homogeneizador de tecidos com nitrogênio líquido. Posteriormente, amostras de tecido e celulares foram lisadas em 200 μL de tampão RIPA sobre gelo por 30 minutos. Os lisados foram centrifugados a 12.000 x g por 15 minutos a 4 °C para coletar supernadantes proteicos. As concentrações de proteína foram determinadas usando um kit de ensaio de proteínas BCA. Após ajustar a concentração de proteína para 5 μg/μL, as amostras foram misturadas com tampão de carga de 5× e desnaturadas por aquecimento a 95 °C por 10 minutos. As proteínas foram separadas em géis SDS-PAGE de 10% (administradas a 100 V por 90 minutos) e posteriormente transferidas para as membranas PVDF por meio de eletroblotting semi-seco a 15 V por 30 minutos. As membranas foram bloqueadas com leite desnatado a 5% e depois sondadas durante a noite a 4 °C com anticorpos primários (incluindo IL-1β, NLRP3, MyD88, NF-κB p65 e Tubulina; diluição 1:1.000)2. Após lavar as membranas três vezes por 10 minutos cada com soro salino tampado com Tris contendo 0,1% de Tween 20 (TBST), foram incubados com anticorpos secundários conjugados com peroxidase de raiz-forte (HRP) (diluição 1:10.000) por 1 hora em temperatura ambiente. As bandas proteicas foram visualizadas aplicando um substrato de quimiluminescência (ECL) aprimorada, e os sinais foram capturados usando um sistema de imagem por quimiluminescência. Por fim, os níveis relativos de expressão foram analisados quantitativamente normalizando os valores densitométricos das bandas proteicas alvo para o controle interno da Tubulina usando o software ImageJ.
Ensaio de apoptose celular por citometria de fluxo
As células HL-1 foram lavadas 2x com soro salino tamponado com fosfato (PBS). Para dissociação celular, 1 mL de tripsina foi adicionado e incubado por 1 minuto, seguido imediatamente pela neutralização com 2 mL de meio de cultivo completo. A suspensão da célula era então centrifugada a 250 x g por 5 minutos a 4 °C, e o sobrenadante era descartado. A pastilha coletada foi lavada duas vezes com PBS gelado e ressuspensa em 1x tampão de ligação para alcançar uma densidade celular de 1x6 células /mL. Uma alíquota de 100 μL dessa suspensão celular foi transferida para um tubo de citometria de fluxo, seguida pela adição de 5 μL de FITC-Anexina V e 5 μL de iodeto de prodídio (PI). Após um leve vórtice, a mistura foi incubada por 15 minutos em temperatura ambiente (25 °C) no escuro. Finalmente, 400 μL de 1 x binding buffer foram adicionados a cada tubo, e a apoptose celular foi posteriormente analisada usando um citometro de fluxo. Para a estratégia de gate, os eventos foram primeiro direcionados para dispersão direta (FSC) e dispersão lateral (SSC) para excluir detritos subcelulares e isolar a população intacta de células HL-1. Dentro desse portão primário, as células apoptóticas foram quantificadas por análise de quadrantes, com células apoptóticas iniciais definidas como FITC-Anexina V⁺/PI⁻ e células apoptóticas tardias definidas como FITC-Anexina V⁺/PI⁺.
Análise estatística
Cada experimento foi realizado em triplicado, e a análise estatística foi realizada usando software estatístico. As diferenças entre dois grupos foram analisadas usando o teste t de amostras independentes; as diferenças entre três ou mais grupos foram analisadas usando ANOVA unidirecional, seguida pelo teste pós-hoc de Bonferroni. Os dados são expressos como média ± erro padrão (SEM). p < 0,05 foi considerado estatisticamente significativo.