Os protocolos experimentais empregados no presente estudo foram aprovados pelo Comitê de Ética do Hospital Geral de Hainan (protocolo nº 2021-239). O Guia dos Institutos Nacionais de Saúde dos EUA para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório e a Declaração de Helsinque foram rigorosamente seguidos em todos os procedimentos experimentais. Os reagentes e os equipamentos utilizados neste estudo estão listados na Tabela de Materiais.
1. Modelo Animal e Design Experimental
Trinta e seis camundongos machos C57BL/6J (4 semanas de idade, aproximadamente 20 g) foram usados neste estudo. Todos os camundongos foram alojados em condições laboratoriais padrão (20–25 °C, 50%–65% de umidade relativa, ciclo de 12 horas luz/escuridão) com acesso ad libitum a comida e água. Após um período de aclimatação de 7 dias, os camundongos foram divididos aleatoriamente em dois grupos (n=18 por grupo): o grupo de sobrecarga de ferro (grupo modelo), que recebeu injeções intraperitoneais de dextrano de ferro (0,2 g/kg) duas vezes por semana durante 4 semanas; e o grupo Controle recebendo volumes equivalentes de soro fisiológico normal por meio de injeção intraperitoneal. Após 4 semanas, os camundongos foram eutanasiados e os tecidos pancreáticos foram colhidos para análises subsequentes.
2. Medição de Ferro Sérico
Amostras de sangue foram coletadas do seio retroorbital sob anestesia pentobarbital de 1% durante o diestro. Após ser deixado em temperatura ambiente por 1 hora, o sangue foi centrifugado a 4 °C, 3.000 rpm por 15 minutos. O soro foi separado e armazenado a -80 °C. As concentrações séricas de ferro foram determinadas usando um kit de ensaio colorimétrico de ferro, seguindo o protocolo do fabricante.
3. Análise histológica
Amostras de tecido pancreático foram imersas em paraformaldeído a 4% para fixação, seguidas de imposição de parafina antes da preparação da secção. Cortes de tecido em série com espessura variando de 4–5 μm foram obtidas e processadas por meio de procedimentos padrão de deparafinização e reidratação. O exame histomorfológico foi posteriormente realizado usando coloração por hematoxilina e eosina, enquanto a deposição de ferro nos tecidos pancreáticos foi avaliada por coloração com azul da Prússia segundo protocolos convencionais de coloração histológica.
4. Cultura celular e transfecção de pequenos ácidos ribonucleicos interferentes
As células β pancreáticas MIN6 foram cultivadas no meio Eagle modificado de Dulbecco, com alta glicemia, suplementado com 15% de soro fetal bovino, 100 U/mL de penicilina, 100 μg/mL de estreptomicina, 10 mM de HEPES, 50 mM de piruvato de sódio e 50 μmol/L β-mercaptoetanol. Todos os experimentos foram realizados em 80% de confluência celular. Cada vez durante a cultura celular, são retirados 6–8 ml de meio de cultura. As células foram mantidas a 37 °C em uma atmosfera umidificada de 5% de CO₂. Para estudos funcionais, células MIN6 na fase de crescimento logarítmico foram transfectadas com pequenos RNAs interferentes específicos de lncRNA (direcionando lncRNA selecionados com base em resultados de microarrays); Grupo inibidor) ou siRNA controle negativo (grupo inibidor NC) usando Lipofectamina 2000, conforme as instruções do fabricante. Após o cultivo por 24 horas, as células foram analisadas por reação em cadeia quantitativa da polimerase (qRT-PCR) ou western blot para determinar a eficiência do knockdown. As sequências-alvo deste siRNA foram as seguintes: siMEG3: GCGUCUUCCUGUGCCAUUUTTAAAUGGCACAGGAAGACGCTT; siNC: UUCUCCGAACGUGUCACGUTTACGUGACACGUUCGGAGAATT. Cada experimento foi conduzido em triplicado e repetido três vezes.
5. Ensaio de Reação em Cadeia da Polimerase por Transcrição Reversa
O RNA total foi extraído de amostras de tecido pancreático e células MIN6 usando um reagente de isolamento de RNA à base de fenol comercialmente disponível, conforme as instruções do fabricante. O DNA complementar foi sintetizado usando um kit de transcrição reversa em um volume total de reação de 20 μL. Após a transcrição reversa, a concentração de cDNA da maioria das amostras foi de aproximadamente 1 μg/μL, com base na análise de quantificação da amostra. Posteriormente, 1 μL de molde de cDNA foi usado para amplificação quantitativa em tempo real por PCR. A qRT-PCR foi realizada usando um kit de detecção de PCR baseado em SYBR Green sob as seguintes condições de ciclo: 95 °C por 30 s, 90 °C por 15 s, 60 °C por 34 s e 68 °C por 30 s. Os níveis relativos de expressão gênica foram determinados usando o método do ciclo limiar comparativo (método 2-ΔCT ). O GAPDH foi usado como gene de referência interno para a normalização de dados de PCR em tempo real. Todos os procedimentos experimentais foram realizados de acordo com os protocolos dos respectivos fabricantes, e cada experimento foi repetido independentemente pelo menos três vezes. As sequências de primers utilizadas neste estudo estão listadas na Tabela Suplementar 1 e na Tabela 2.
6. Kit de Contagem de Células-8 Ensaio
A capacidade de proliferação celular foi determinada usando um ensaio de contagem celular kit-8, de acordo com as diretrizes do fabricante. Brevemente, as células MIN6 foram placadas em placas de cultura de 96 poços com uma densidade de 5 x 10células de 3 por poço após transfecção com si-MEG3 ou si-NC e mantidas por 24 horas. Nos pontos de tempo designados, 10 μL de reagente de viabilidade celular foram introduzidos em cada poço, e as placas foram incubadas a 37 °C por 2 horas. Os valores de absorvância foram posteriormente medidos a 450 nm usando um leitor de microplacas. A viabilidade celular foi calculada como uma porcentagem em relação ao grupo controle.
7. Detecção de Apoptose por citometria de fluxo
Alterações apoptóticas em células MIN6 foram examinadas usando um kit de detecção de apoptose Annexin V-FITC/PI conforme as instruções do fabricante. Após 48 horas de transfecção de siRNA, as células foram colhidas, lavadas duas vezes com soro salino tamponado com fosfato frio e ressuspensas em tampão de ligação. Posteriormente, as células foram incubadas com 5 μL de Annexina V-FITC e 5 μL de iodeto propidiano por 15 minutos em temperatura ambiente em condições escuras. Imediatamente após a coloração, as amostras foram analisadas por citometria de fluxo. Populações celulares apoptóticas iniciais e tardias foram quantificadas usando software de análise citométrica de fluxo. A proporção de células apoptóticas foi posteriormente calculada para comparações entre grupos. Cada experimento foi conduzido de forma independente três vezes.
8. Análise da mancha ocidental
Experimentos com Western blot foram realizados de acordo com os protocolos18 previamente relatados. As células foram primeiro digeridas com tripsina, coletadas e lisadas em gelo usando o tampão de lise por radioimunoprecipitação. As concentrações de proteína foram quantificadas e quantidades equivalentes de proteína foram submetidas à separação em gels de eletroforese gel de dodecil sulfato de sódio e poliacrilamida a 10% antes da transferência para membranas de polivinilideno fluoreto. Após o bloqueio de membranas, amostras foram incubadas com anticorpos primários contra NF-κB (1:1000), Bcl-2 (1:1000), Bax (1:1000), caspase-3 (1:1000) e gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase (GAPDH) (1:2000) nas razões de diluição indicadas, seguidas pela incubação com anticorpos secundários ligados à peroxidase de raiz-forte. Os sinais proteicos foram detectados usando um sistema de quimioluminescência e quantificados com o software ImageJ. O GAPDH foi usado como controle de carga interna, e os níveis de expressão proteica foram expressos como mudanças de dobra em relação ao grupo controle.
9. Análise estatística
Os dados foram expressos como média ± desvio padrão (DS). Comparações entre grupos foram realizadas usando o teste Mann–WhitneyU 19 usando análise estatística. Um valor-p <0,05 foi considerado estatisticamente significativo.