Matrícula das disciplinas
Pacientes com trauma agudo na medula espinhal (n = 300) tratados no hospital de janeiro de 2023 a maio de 2025 foram selecionados e classificados no grupo de lesão completa da medula espinhal (CSCI) (grau A, n = 98), grupo de lesão incompleta da medula espinhal (ISCI) (graus B, C e D; n = 95) e grupo de função neurológica normal (NNF) (grau E, n = 107) de acordo com a Escala de Insuficiência da American Spinal Injury Association (classificação AIS). Para pacientes do grupo NNF, evidências radiológicas de LM, como edema, contusão ou compressão, foram confirmadas por ressonância magnética (RM), mas nenhum déficit sensorial ou motor foi demonstrado. Outros 90 participantes saudáveis recrutados no mesmo período foram selecionados como grupo controle. Os critérios de inclusão foram: (1) diagnóstico de LM confirmado por imagem (ressonância magnética ou tomografia), de acordo com as diretrizes de manejo clínicoestabelecidas 16; (2) trauma sofrido dentro de 24 horas antes da internação; e (3) participantes adultos com dados clínicos completos. Os critérios de exclusão foram: (1) histórico de cirurgia anterior relacionada a fratura ou LME; (2) doença arterial coronariana grave ou doença cardiopulmonar significativa; (3) lesão craniocerebral aguda e grave; e (4) tumores malignos, doenças cardiovasculares/cerebrovasculares ou doenças imunológicas. A aprovação para este estudo foi obtida do Comitê de Ética do Quarto Hospital Popular de Shenzhen, e o consentimento informado foi obtido dos participantes. Os procedimentos utilizados neste estudo seguiram os princípios da Declaração de Helsinque.
Coleção de espécimes
Amostras venosas de sangue (5 mL) foram coletadas dos participantes na admissão usando tubos separadores séricos dentro de 24 horas após a lesão. O sangue foi deixado coagular em temperatura ambiente por 30 minutos e depois centrifugado a 3.000 × g por 10 minutos a 4 °C. O soro sobrenadante foi cuidadosamente separado, aliquotado em microtubos livres de RNase e armazenado a -80 °C até análise adicional.
Cultura celular e indução de LPS
Células de feocromocitoma de rato (PC-12) e microglias murinas (BV-2) foram cultivadas no meio Eagle modificado de Dulbecco, suplementado com 10% de soro fetal bovino a 37 °C. Para estabelecer modelos de lesão inflamatória in vitro , células PC-12 e BV-2 foram expostas a lipopolissacarídeos (LPS) em concentrações de 0, 1, 5 e 10 μg/mL durante 12 horase 17 horas. Cada concentração foi testada em três réplicas biológicas independentes.
RT-qPCR
O RNA total foi isolado das amostras usando um protocolo de extração de fenol-clorofórmio, seguido pela precipitação com isopropanol. A pureza do RNA foi avaliada por espectrofotometria, e amostras com uma razão A260/280 nm na faixa de 1,8–2,1 foram usadas para análise a jusante. O RNA foi transcrito reversamente em cDNA de acordo com o protocolo do kit de transcrição reversa, e o cDNA resultante foi usado como molde para reações RT-qPCR com uma pré-mistura SYBR Green em um instrumento PCR. Gliceraldeído 3-fosfato desidrogenase (GAPDH) foi usado como gene de referência para o mRNA CASC11 e SPP1 , e RNA nuclear pequeno (U6) foi usado como gene de referência para miR-130b-5p. Para amostras de soro, cel-miR-39 sintético foi injectado no soro antes da extração de RNA para controlar variações na recuperação do RNA. Os primers eram os seguintes: CASC11 dianteiro 5'-ACCCTATGGAGAACCAGAC-3' e reverso 5'-GAGGACCAACTCAGTAGGAAAT-3'; miR-130b-5p para frente 5'-ATCCATGGTTGAGCTTCCG-3' e para trás 5'-TAGTGCAACCTCGTCAGAGC-3'; e SPP1 mRNA para frente 5'-GTTAAACAGGCTGATTCTGG-3' e 5'-CATGGTCATCATCATCATTCA-3' reverso. A expressão foi calculada usando o método 2-ΔΔCt . Cada reação RT-qPCR foi realizada em réplicas técnicas triplicadas com três réplicas biológicas.
Transfecção
O silenciamento CASC11 (si-CASC11), miM/inibidor miR-130b-5p, plasmídeo de superexpressão de SPP1 (ov-SPP1) e seus respectivos controles negativos (NC) foram sintetizados e transfectados em células PC-12 e BV-2 usando um reagente de transfecção. A eficiência da transfecção foi avaliada 48 horas após a transfecção em réplicas biológicas triplicadas.
Ensaio de proliferação e apoptose
Para o ensaio de viabilidade celular, as células foram semeadas em placas de 96 poços a 5 × 103 células por poço e cultivadas por 24 horas para permitir a fixação. Após essa incubação, 10 μL do reagente CCK-8 foram dispensados em cada poço, seguidos por incubação por 2 horas a 37 °C. A densidade óptica era então registrada em 450 nm com um leitor de microplaca. Para a detecção de apoptose, as células foram destacadas com tripsina, enxaguadas duas vezes com soro tampão fosfatado (PBS) e suspensas em tampão de ligação até uma concentração final de 1 × 106 células/poço. Em seguida, 100 μL da suspensão foram colocados em um tubo de citometria de fluxo de 5 mL, seguido pela adição de 5 μL de Annexin V-FITC e 5 μL de solução de coloração de iodeto propidio (PI). As amostras foram misturadas suavemente e mantidas por 15 minutos em temperatura ambiente, protegidas da luz. O tampão de ligação foi então adicionado a um volume adicional final de 400 μL por tubo, e as células apoptóticas foram quantificadas por citometria de fluxo. Todas as condições foram analisadas usando três réplicas técnicas em três experimentos biológicos independentes.
Ensaio de atividade com dupla luciferase
Os alvos a jusante do CASC11 e do miR-130b-5p foram previstos por meio de sites de bioinformática (lncRNASNP2 e TargetScan). Fragmentos contendo as sequências complementares do tipo selvagem (wt) ou mutantes (mut) foram sintetizados e clonados em um vetor repórter duplo-luciferase para construir plasmídeos repórteres wt e mut. As células PC-12 foram semeadas e co-transfectadas com miR-130b-5p mimic/inibidor e os plasmídeos wt/mut construídos usando um reagente de transfecção à base de lipídios. Após 48 horas, a atividade da luciferase foi quantificada para avaliar a interação. Cada grupo consistia em três réplicas técnicas e três réplicas biológicas.
Ensaio de imunoprecipitação de RNA (RIP)
O RIP foi realizado usando um kit de imunoprecipitação de proteínas que se ligam a RNA. As células foram lisadas com tampão de lise e incubadas com anticorpo anti-Ago2 ou anticorpo IgG normal. Complexos RNA-proteína foram enriquecidos usando esferas magnéticas. Após a lavagem, as proteínas ligadas foram removidas e o RNA imunoprecipitado foi isolado. Os níveis de enriquecimento do CASC11 e do miR-130b-5p foram quantificados por RT-qPCR. Cada grupo consistia em três réplicas técnicas e três réplicas biológicas.
Western blot
Lisados proteicos foram preparados a partir de células PC-12 e BV-2 usando tampão de lise celular, e o teor total de proteína foi medido com um ensaio de BCA. Para cada amostra, 30 μg de proteína foram carregados em géis SDS-PAGE de 12% e transferidos para membranas PVDF após separação eletroforética. As membranas foram bloqueadas por 2 horas em temperatura ambiente em leite desnatado a 5% diluído em TBST e depois incubadas durante a noite a 4 °C com anticorpos primários contra Bcl-2, Bax, caspase-3 clivada e GAPDH em diluição de 1:1.000. Após a lavagem, as membranas foram incubadas com anticorpos secundários conjugados com HRP por 1 hora em temperatura ambiente. Os sinais proteicos foram analisados usando software de análise de imagem, e densidades de bandas foram usadas para avaliar a expressão de proteínas relacionadas à apoptose. Os experimentos com western blot incluíram três réplicas biológicas, com três réplicas técnicas para cada grupo.
ELISA
As concentrações das citocinas inflamatórias TNF-α, IL-1β e IL-6 no soro do paciente e nos supernadantes das células PC-12 e BV-2 foram quantificadas usando kits ELISA, conforme as instruções do fabricante. Amostras foram incubadas em poços pré-revestidos, e anticorpos de detecção foram adicionados para incubação posterior. Conjugados enzimáticos foram adicionados e incubados. Após a lavagem, substratos foram adicionados para o desenvolvimento da cor e as reações foram encerradas. A absorvância foi medida em 450 nm usando um leitor de microplacas e convertida em concentrações de fatores inflamatórios com base na curva padrão fornecida. Cada ensaio ELISA foi realizado em réplicas técnicas triplicadas em três réplicas biológicas independentes.
Análise estatística
As variáveis contínuas foram reportadas como média ± desvio padrão (DS), e variáveis categóricas foram apresentadas como números e porcentagens (n, %). Comparações entre dois grupos foram realizadas usando o teste t de Student. Para comparações envolvendo mais de dois grupos, foi aplicada a análise unidirecional da variância (ANOVA), seguida pelo teste pós-hoc de Tukey. A capacidade do CASC11 de discriminar entre grupos clínicos foi avaliada usando análise da curva da característica operacional do receptor (ROC). As associações entre duas variáveis foram examinadas pela análise de correlação de Pearson. Para experimentos baseados em células, cada grupo continha três réplicas biológicas independentes, e cada medição era repetida em três réplicas técnicas. A significância estatística foi definida como P < 0,05.