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Artigo de método

Do Tecido à Morfometria: Um Fluxo de Trabalho Passo a Passo da Golgi–Cox para Análise Neuronal e Dendrítica da Coluna em Camundongos Adultos

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DOI:

10.3791/71384

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5 de junho de 2026

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Neste artigo

Resumo

Este artigo descreve um método passo a passo para a coloração de Golgi–Cox em camundongos adultos, abrangendo preparação de solução, impregnação de tecidos, crioproteção, seccionamento, revelação e montagem. Ele enfatiza a preservação dos tecidos e a coloração homogênea e de baixo fundo, permitindo uma visualização clara da morfologia neuronal. O método rotulou os eixos dendríticos e suporta análise morfométrica quantitativa de espinhos dendríticos.

Resumo

A análise da morfologia neuronal na saúde e na doença é fundamental para entender a função cerebral e para avaliar os efeitos das intervenções experimentais. A coloração de Golgi–Cox permanece uma técnica clássica, porém altamente relevante, para visualizar árvores neuronais completas e espinhos dendríticos. No entanto, protocolos publicados frequentemente diferem em etapas processuais críticas e frequentemente carecem de detalhes metodológicos essenciais, levando a uma variabilidade substancial na qualidade da coloração e tornando a padronização laboratorial demorada e desafiadora. Aqui, é apresentado um protocolo abrangente e passo a passo do Golgi–Cox para camundongos adultos, abrangendo todo o fluxo de trabalho, desde o manuseio in vivo e processamento de tecidos até a extração de dados de imagem e morfometria. Ele detalha considerações práticas e armadilhas comuns que influenciam a eficiência da impregnação, a integridade da seção e a relação sinal-ruído, além de fornecer orientações metodológicas para melhorar a reprodutibilidade. No geral, esse protocolo permite visualização confiável e análise quantitativa de neurônios inteiros, segmentos dendríticos e espinhos dendríticos. Espera-se que esse recurso facilite a implementação da coloração de Golgi–Cox com maior consistência, transparência e rigor técnico, ao mesmo tempo em que oferece uma estrutura clara para adaptar o método a diversos ambientes laboratoriais.

Introdução

O objetivo geral do método de coloração de Golgi–Cox é permitir a visualização em alta resolução da morfologia neuronal completa, incluindo árvores dendríticas e espinhos dendríticos, em tecido cerebralfixo 1,2,3,4. Essa técnica permite uma análise estrutural detalhada de neurônios individuais dentro de circuitos neurais complexos, tornando-a particularmente valiosa para estudos de plasticidade sináptica, neurodesenvolvimento, neurodegeneração e remodelação estrutural dependente daexperiênc....

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Protocolo

Fêmeas adultas de camundongos selvagens B6129SF2/J (n = 3) foram usadas neste estudo. No entanto, coloração semelhante pode ser realizada usando ambos os sexos no estágio adulto. Todos os procedimentos experimentais receberam aprovação anterior do Comitê de Bioética. (#117.A, Instituto de Neurobiologia (INb), Universidade Nacional Autônoma do México)

1. Preparação de soluções

ATENÇÃO: O cloreto de mercúrio é altamente tóxico e corrosivo. Use o cabo dentro de uma cabeceira química enquanto usa luvas, jaleco e proteção ocular. Descarte os resíduos em um recipiente de....

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Resultados

Impregnação e seccionamento de tecidos
O protocolo Golgi–Cox descrito aqui produziu coloração neuronal confiável e homogênea no tecido cerebral de camundongos adultos. Após a impregnação na solução de Golgi–Cox, o cérebro adquiriu uma coloração dourada escura característica, indicando difusão bem-sucedida da solução de coloração por todo o tecido. A secção por vibratomo preservou a integridade estrutural dos processos somatas e dendríticos neuronais.

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Discussão

O método de coloração de Golgi–Cox continua sendo uma das técnicas mais amplamente utilizadas para visualizar a morfologia neuronal e espinhos dendríticos em tecido cerebralfixo 3,4. Ao impregnar um pequeno subconjunto aleatório de neurônios, esse método permite a visualização de árvores dendríticas completas com coloração mínima de fundo. No protocolo atual, a técnica permitiu a visualização clara dos neurônios piramidais do hip.......

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Divulgações

Os autores não declaram conflitos de interesse.

Agradecimentos

Esse trabalho foi apoiado pela Secretaría de Ciencia, Humanidades, Tecnología e Innovación (SECIHTI) (CBF-2025-G-35), pela Direção Geral de Assuntos do Acadêmico Pessoal (DGAPA) e pelo Programa de Posgrado en Ciências (Neurobiología), UNAM, México (PAPIIT-IN-209325). Humberto Martínez recebeu uma bolsa de pós-doutorado do SECIHTI (nº 2330239). Pedro F. Rubio recebeu apoio financeiro da SECIHTI (Beca Nacional de Posgrado). Agradecimentos a A. R. Aguilar Vázquez e à equipe técnica do Instituto de Neurobiologia (INb), A. Castilla León, M. García Servín e M. A. Carbajo Mata pelo apoio ao vivário; E. de los Ríos Arellano e E. N. Hernández ....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
AgaroseTecnologias de Vida15510-027CAS 9012-56-6
Solução de amônia 25%Merck208380CAS 1336-21-6. Perigoso.
Dibásico fosfato de sódio anidroSigma-AldrichS3264CAS 7558-79-4
Microscópio de campo claroNikonEclipse Ci
Sulfato de cromo potássioSigma-Aldrich243361
Microscópio ConfocalZeissLSM 780
Balanço digitalInstrumentos AccurisW3200-1200
Embedding moldesMerckE6032Dimensões: 22x22 mm
EtanolMeyer394
Animais experimentaisO Laboratório Jackson2124-01B6129SF2/J cepa de camundongos
Pó de gelatinaSigma-AldrichG2500
GraphPad Prism SoftwareGraphPad Software Inc.Versão 8.0.2
ImageJ Fiji SoftwareInstituto Nacional de Saúde dos EUAVersão 1.54p, https://imagej.net/software/fiji/downloads
Cloreto de mercúrioJ.T. Baker2594-01CAS 7487-94-7. Perigoso.
Câmera de MicroscópioNikonDS-Vi1
Objetivo de microscópio (10x)Nikon93183Plano 10x/0,25 N.A.
Objetivo de microscópio (1x)Nikon93180Plano UW 1x/0,04 N.A. 
Objetivo de microscópio (20x)Nikon93184Plano 20x/0,40 N.A. 
Objetivo de microscópio (4x)Nikon93182Plano 4x/0.10 N.A. 
Objetivo de microscópio (63x)Zeiss420782-9900-799Plano APO 63x/1.4 N.A. DIC de óleo
Lâminas de microscópioSigma-AldrichS8902
Monobásico monohidratado fosfato de sódioJ.T. Baker3818-05CAS 10049-21-5
EsmalteCORES PECAMINOSASCOR FORTETransparente
Mídia de montagem permountFisher ScientificSP15-500
Cromato de potássioProdutos Quí micos Monterrey2784CAS 7789-00-6. Perigoso.
Dicromato de potássioSigma-Aldrich207802CAS 7778-50-9. Perigoso.
PyReconstruct SoftwareUniversidade do Texas, AustinVersão 1.19.0, https://github.com/SynapseWeb/PyReconstruct
Cloreto de sódioFermont24912CAS 7647-14-5
Tiosulfato de sódioProdutos Quí micos Monterrey7291CAS 7772-98-7. Perigoso.
SacaroseJ.T. Baker (Avantor)4072-0566,55 e grau; Rotação específica, reagente ACS
VibratomeLeica BiosystemsVT1200SVELOCIDADE 20 mm/s, AMPL & ndash; 0,60 mm
XyleneCTR ScientificCTR05128CAS 1330-20-7. Perigoso.

Reimpressões e permissões

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