Todos os procedimentos com animais foram realizados de acordo com as diretrizes institucionais para o cuidado e uso de animais de laboratório e foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal da Universidade de Medicina Chinesa de Anhui (número de aprovação AHUCM-rabbits-2023195). Os reagentes, produtos químicos, softwares e ferramentas utilizados neste protocolo estão listados na Tabela de Materiais.
1. Animais experimentais e agrupamento
Cinquenta coelhos adultos machos saudáveis da raça Nova Zelândia Branca (6 meses de idade, pesando 2,0–2,5 kg) foram obtidos na Fazenda de Criação Laifu do Distrito de Pukou, Nanjing (Licença de Produção Animal nº: SCXK (Su) 2024-0007). Todos os animais passaram por um período de aclimatação de 1 semana antes do experimento. O joelho direito foi designado para avaliação do inchaço e o joelho esquerdo para coleta de tecido cartilaginoso, seguindo uma convenção procedural consistente, e não com base em uma hipótese experimental específica. Após a aclimatação, os coelhos foram aleatoriamente distribuídos em cinco grupos (n = 10 por grupo): um grupo controle, que não recebeu procedimento de modelagem nem tratamento; um grupo modelo de OAQ, no qual a OAQ foi induzida pelo método modificado de Videman; um grupo celecoxibe, no qual o tratamento com medicamento foi iniciado 6 semanas após a modelagem; um grupo acupotomia, no qual o tratamento com acupotomia foi iniciado 6 semanas após a modelagem; e um grupo placebo de acupotomia, no qual foi realizada a inserção de agulha sem corte ou soltura, iniciada 6 semanas após a modelagem.
2. Estabelecimento do modelo de AOT
Todos os coelhos, exceto os do grupo controle, foram submetidos ao procedimento modificado de Videman para induzir AOT. Os animais foram mantidos em jejum por 12 h antes da cirurgia. A anestesia foi induzida pela administração intravenosa de pentobarbital sódico a 3% na dose de 30 mg/kg através da veia marginal da orelha. Após a preparação rotineira do campo cirúrgico, desinfecção e colocação de campos estéreis, foi feita uma incisão longitudinal ao longo da face medial da articulação do joelho. O ligamento colateral medial e o ligamento cruzado anterior foram seccionados sequencialmente e o menisco medial foi completamente removido. Em seguida, a incisão foi fechada em camadas.
Para reduzir o risco de infecção pós-operatória, a penicilina foi administrada por via intramuscular na dose de 40.000 U/kg/dia durante 3 dias consecutivos. Após a cirurgia, os coelhos foram devolvidos às suas gaiolas e tiveram movimentação livre, sem imobilização articular.
3. Tratamento simulado com acupotomia
Seis semanas após a modelagem da OA, coelhos no grupo de acupotomia simulada passaram pelos mesmos procedimentos de palpação e marcação dos pontos utilizados no tratamento ativo com acupotomia. Uma agulha estéril descartável de acupotomia medindo 0,35 mm × 25 mm foi inserida perpendicularmente através da pele em cada ponto marcado até alcançar o tecido subcutâneo. Nenhuma incisão, soltura, manipulação transversal ou outra manobra de liberação mecânica foi realizada. A agulha foi retirada imediatamente após a inserção, sem manipulação do tecido. O tratamento simulado foi administrado uma vez por semana durante 4 semanas consecutivas.
4. Tratamento com acupotomia
Seis semanas após a modelagem da OA, os coelhos do grupo de acupotomia foram imobilizados em uma mesa de tratamento. Os tecidos periarticulares ao redor do joelho afetado foram palpados, especialmente ao redor da patela e dos espaços articulares medial e lateral, com o objetivo de identificar estruturas em forma de cordão ou nódulos duros. Quatro a seis pontos de tratamento foram selecionados com base nos achados da palpação e marcados na pele.
A área de tratamento foi raspada e desinfetada utilizando procedimentos estéreis de rotina. Uma agulha descartável estéril de acupotomia medindo 0,35 mm × 25 mm foi inserida lentamente e perpendicularmente em cada ponto marcado até alcançar a superfície óssea. O procedimento foi realizado de acordo com a técnica de acupotomia em quatro etapas. Primeiro foi realizada a liberação longitudinal, seguida pela separação transversal. Quando um nódulo duro foi encontrado, foi feita uma incisão até que uma sensação distinta de liberação fosse percebida através da agulha-cortante. Após o procedimento, a agulha foi retirada e cada local de inserção foi comprimido brevemente com gaze estéril e coberto com um curativo adesivo. O tratamento foi administrado uma vez por semana durante 4 semanas consecutivas.
5. Tratamento com medicamento
Aos 6 semanas após a modelagem de OAQ, coelhos do grupo celecoxib receberam suspensão de celecoxib por gavagem oral na dose de 24 mg/kg uma vez ao dia durante 4 semanas consecutivas. A suspensão foi preparada diariamente, fresca, em solução salina fisiológica. As informações do fornecedor e do catálogo estão fornecidas na Tabela de Materiais.
6. Avaliação do inchaço da articulação do joelho
Ao final do período de intervenção, correspondente a 10 semanas após a modelagem da OA de joelho, foi avaliado o inchaço da articulação do joelho. Um fio de seda macio foi enrolado ao redor da região mais inchada do joelho direito, normalmente ao nível da placa tibial. O fio foi removido e seu comprimento medido com uma régua até o milímetro mais próximo, sendo o valor registrado definido como a circunferência do joelho.
A razão de inchamento relativo foi calculada usando a seguinte equação:

7. Coleta de amostras
Ao final do período de intervenção, os coelhos foram anestesiados pela administração intravenosa de pentobarbital sódico a 3% na dose de 30 mg/kg pela veia marginal da orelha. A articulação do joelho esquerdo foi aberta com lâmina de bisturi nº 23 para expor as superfícies articulares do platô tibial e dos côndilos femorais. O tecido da cartilagem articular foi coletado dessas regiões.
Cada amostra de cartilagem foi dividida em duas partes. Uma parte foi fixada em paraformaldeído a 4% para exame histopatológico. A segunda parte foi colocada em tubos criogênicos, congelada rapidamente em nitrogênio líquido e armazenada a −80 °C até a realização das análises moleculares. Imediatamente após a conclusão de todos os procedimentos de coleta de tecidos, os coelhos foram eutanasiados por embolia aérea mediante injeção intravenosa rápida de ar pela veia marginal da orelha.
As colorações histológicas e as pontuações de Mankin e Moran foram realizadas utilizando amostras de cartilagem de todos os 10 coelhos por grupo (n = 10). Imagens representativas de hematoxilina e eosina e de Safranina O–Verde Rápido foram selecionadas de três coelhos aleatoriamente escolhidos por grupo. A imuno-histoquímica e o Western blot foram realizados utilizando amostras de três coelhos aleatoriamente selecionados por grupo (n = 3). A reação em cadeia da polimerase com transcrição reversa quantitativa e o ensaio imunoenzimático (ELISA) foram realizados utilizando amostras de seis coelhos aleatoriamente selecionados por grupo (n = 6). Todas as seleções de subconjuntos foram feitas aleatoriamente, sem conhecimento prévio das atribuições aos grupos.
8. Coloração com hematoxilina e eosina
O tecido cartilaginoso fixado em paraformaldeído a 4% foi descalcificado em solução de ácido etilenodiaminotetraacético (EDTA) a 10% com pH 7,4 por 4 a 6 semanas. A solução descalcificante foi substituída a cada 3 dias. Após a confirmação da descalcificação por penetração com agulha, o tecido foi desidratado em uma série crescente de etanol de 70%, 80%, 90%, 95% e 100%, clarificado em xilol e embutido em parafina. O tecido embutido foi seccionado com espessura de 5 µm utilizando um micrótomo, e as seções foram montadas em lâminas de vidro.
Para coloração com hematoxilina e eosina, os cortes foram aquecidos a 60 °C por 60 min, desparafinizados em xilol com três trocas de 5 min cada e reidratados sequencialmente em etanol a 100%, 95%, 80% e 70%, seguido por água destilada. Os cortes foram corados com hematoxilina por 5 min, lavados sob água corrente por 10 min, diferenciados em ácido clorídrico a 1% preparado em etanol a 70% por 2–3 s e lavados com água destilada. Em seguida, os cortes foram corados com eosina por 2 min, lavados com água destilada, desidratados em etanol a 70%, 80%, 90%, 95% e 100%, clarificados em xilol e montados com resina neutra. A morfologia da cartilagem foi examinada e imagens representativas foram obtidas utilizando um microscópio óptico.
9. Coloração com Safranina O–Verde Rápido
As seções de cartilagem em parafina foram desparafinizadas e reidratadas conforme descrito na seção 8. As seções foram coradas com hematoxilina férrica de Weigert por 5 min e lavadas com água destilada. Em seguida, as seções foram coradas com solução a 0,05% de Verde Rápido por 3 min, lavadas brevemente em ácido acético a 1% por 10–15 s e coradas com solução a 0,1% de Safranina O por 5 min.
Após a coloração, as seções foram rapidamente desidratadas em etanol 95% e 100%, clarificadas em xilol e montadas com resina neutra. As seções coradas foram examinadas usando um microscópio óptico. A intensidade da coloração com Safranina O, que reflete o teor de proteoglicanos, foi analisada de forma semiquantitativa utilizando software de análise de imagem.
10. Pontuação histológica
Dois patologistas, que desconheciam as atribuições aos grupos experimentais, avaliaram independentemente as seções coradas utilizando os sistemas de pontuação de Mankin e Moran para avaliar o grau de degeneração da cartilagem. Antes da avaliação, todas as seções receberam códigos de identificação aleatórios. As alocações dos tratamentos não foram reveladas aos patologistas até que toda a pontuação fosse concluída23.
11. Ensaio imunoenzimático
O tecido de cartilagem congelado foi pesado, combinado com solução salina tamponada com fosfato em pH 7,4 e homogeneizado completamente em gelo. O homogeneizado foi centrifugado a 3.000 × g durante 20 min a 4 °C, e o sobrenadante foi coletado para análise. As concentrações de interleucina-1β (IL-1β), fator de necrose tumoral-α (TNF-α) e interleucina-6 (IL-6) no sobrenadante tecidual foram medidas utilizando kits de ensaio imunoenzimático específicos para coelhos, conforme as instruções do fabricante.
12. Reação em cadeia da polimerase com transcrição reversa quantitativa
O RNA total foi extraído de tecido cartilaginoso utilizando um método baseado em fenol–clorofórmio. Resumidamente, o tecido foi lisado em reagente de extração de RNA, e o clorofórmio foi adicionado para separar as fases aquosa e orgânica. A fase aquosa foi coletada, e o RNA foi precipitado com isopropanol, lavado com etanol 75%, seco ao ar e dissolvido em água tratada com pirocarbonato de dietila. A concentração e pureza do RNA foram medidas utilizando um espectrofotômetro.
Antes da transcrição reversa, o DNA genômico residual foi removido utilizando um reagente de eliminação de DNA genômico. O DNA complementar foi então sintetizado usando um kit de transcrição reversa, conforme as instruções do fabricante. A reação em cadeia da polimerase quantitativa foi realizada utilizando um método de detecção baseado em SYBR Green em um sistema de reação em cadeia da polimerase em tempo real. As condições de ciclagem foram as seguintes: desnaturação inicial a 95 °C por 1 min, seguida por 40 ciclos de desnaturação a 95 °C por 20 s e hibridização e extensão a 60 °C por 1 min. Uma análise de curva de dissociação foi realizada para avaliar a especificidade da amplificação.
Os níveis de expressão da metaloproteinase da matriz-3 (MMP-3), metaloproteinase da matriz-13 (MMP-13), fator de transcrição SRY-caixa 9 (SOX9), agregana, RIC8A e circPDE4B foram medidos. β-actina foi utilizada como gene de referência interno. A expressão relativa foi calculada utilizando o método. As sequências dos primers estão fornecidas na Tabela 1.
13. Análise por Western blot
O tecido cartilaginoso foi lisado em tampão de radioimunoprecipitação suplementado com fluorureto de fenilmetilsulfonila. O lisado foi centrifugado a 12.000 × g durante 15 min a 4 °C, e o sobrenadante foi coletado como a fração proteica total. A concentração proteica foi determinada utilizando um ensaio com ácido bicinconínico.
Quantidades iguais de proteína (30 µg por poço) foram separadas por eletroforese em gel de poliacrilamida contendo dodecilsulfato de sódio a 10% e transferidas para membranas de fluoreto de polivinilideno previamente ativadas em metanol. A transferência foi realizada a 300 mA a 4 °C. Os tempos de transferência foram os seguintes: aggrecano (250 kDa) por 90 min; MMP-3 (60 kDa), RIC8A (59 kDa), SOX9 (56 kDa) e MMP-13 (52 kDa) por 50 min; e p38 MAPK (41 kDa) e GAPDH (36 kDa) por 40 min. As membranas foram bloqueadas com leite desnatado a 5% em solução salina tamponada com Tris contendo Tween 20 por 2 h à temperatura ambiente. Em seguida, as membranas foram incubadas durante a noite a 4 °C com anticorpos primários contra MMP-3 (1:2.000), MMP-13 (1:1.000), SOX9 (1:1.000), aggrecano (1:1.000), RIC8A (1:1.500), p38 MAPK fosforilada (1:1.000) e p38 MAPK total (1:2.000). GAPDH (1:2.000) foi utilizada como controle de carga. Após três lavagens com solução salina tamponada com Tris contendo Tween 20 (10 min cada), as membranas foram incubadas com anticorpos secundários conjugados à peroxidase do rabanete (1:20.000) por 1,2 h à temperatura ambiente. Após três lavagens adicionais, as bandas proteicas foram visualizadas utilizando um substrato de quimioluminescência aprimorado e imagens foram obtidas com um sistema de documentação de géis. As intensidades das bandas foram quantificadas utilizando o software ImageJ e normalizadas em relação a GAPDH.
14. Imunohistoquímica
Seções de cartilagem em parafina foram desparafinizadas e reidratadas em uma série de etanol progressivo (três mudanças de xilol, 5 min cada; seguidas por etanol a 100%, 95% e 80%, 3 min cada). A recuperação de antígenos foi realizada aquecendo as seções em tampão de EDTA (pH 9,0) em uma panela de pressão. O tampão foi aquecido até fervura, e após a pressurização, a recuperação foi mantida por 2 min, seguida de resfriamento à temperatura ambiente. A atividade de peroxidase endógena foi bloqueada com peróxido de hidrogênio a 3% por 10 min à temperatura ambiente. Após lavagem, a ligação inespecífica foi bloqueada com soro de cabra por 20 min à temperatura ambiente no escuro.
As seções foram incubadas com anticorpos primários contra p38 MAPK fosforilada (1:800) e fator nuclear kappa B (NF-κB) fosforilado (1:300) por 60 min a 37 °C. Após três lavagens com solução salina tamponada com fosfato contendo Tween 20, as seções foram incubadas com os anticorpos secundários conjugados à peroxidase do rabo-de-cavalo apropriados por 30 min a 37 °C. Após mais três lavagens, a diaminobenzidina foi utilizada para o desenvolvimento da coloração (controlado ao microscópio), seguido de contracoloração com hematoxilina (2 min), diferenciação em ácido clorídrico a 1% em etanol a 70% e realce em solução de carbonato de lítio (30 s). Em seguida, as seções foram desidratadas, clareadas, montadas e examinadas ao microscópio óptico. A coloração foi avaliada utilizando o software ImageJ, e a densidade óptica integrada foi calculada para análise semiquantitativa.
15. Análise estatística
Os dados são apresentados como média ± erro padrão da média (SEM). As comparações entre múltiplos grupos foram realizadas utilizando análise de variância unidirecional seguida pelo teste post hoc de Tukey. Um valor de P < 0,05 foi considerado estatisticamente significativo.