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O estudo foi realizado de acordo com as diretrizes de Farmacologia Básica e Clínica & Toxicologia para estudos experimentaise clínicos 25. Todos os protocolos experimentais com animais foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal do Segundo Hospital Afiliado, Faculdade de Medicina da Universidade de Zhejiang (Aprovação nº 20230102), e todos os experimentos foram realizados de acordo com as diretrizes do Comitê de Ética Animal. O estudo foi conduzido em conformidade com as diretrizes da ARRIVE.
Triagem de componentes-chave e alvos via farmacologia de rede
Componentes ativos de Fritillaria cirrhosa D. Don, Lonicera japonica Thunb., Glehnia littoralis F. Schmidt ex Miq., e Adenophora stricta Miq. foram recuperados do Banco de Dados de Farmacologia dos Sistemas de Medicina Tradicional Chinesa (TCMSP; acessado em 12 de março de 2024). Os compostos candidatos foram avaliados segundo os seguintes critérios ADME: biodisponibilidade oral (OB) ≥ 30%, semelhança com fármacos (DL) ≥ 0,18 e permeabilidade ao Caco-2 ≥ −0,425. Compostos que atenderam aos três critérios foram mantidos como ingredientes ativos candidatos para análises subsequentes.
A estrutura canônica do Sistema Simplificado de Entrada de Linha de Entrada Molecular (SMILES) do β-sitosterol foi obtida do PubChem (acessado em 18 de março de 2024) e importada no SwissTargetPrediction (acessado em 21 de março de 2024) para previsão de alvos. Homo sapiens foi selecionado como espécie-alvo. Os alvos potenciais foram previstos com base na similaridade estrutural 2D e 3D entre β-sitosterol e ligandos conhecidos no banco de dados. Alvos previstos com probabilidade maior que 0 foram mantidos, e entradas duplicadas foram removidas.
Genes associados à DPOC foram recuperados do Banco de Dados de Alvos Terapêuticos (TTD; acessado em 25 de março de 2024) e do Banco de Dados de Toxicogenômica Comparativa (CTD; acessado em 28 de março de 2024) usando a palavra-chave "doença pulmonar obstrutiva crônica". Após a remoção dos genes duplicados, os genes associados à DPOC foram intersectados com os alvos previstos de β-sitosterol para identificar alvos candidatos potencialmente envolvidos nos efeitos terapêuticos do β-sitosterol contra a DPOC.
Acoplamento molecular de β-sitosterol e GR
A estrutura tridimensional do β-sitosterol no formato SDF foi recuperada do banco de dados PubChem (acessado em 2 de junho de 2026), enquanto a estrutura cristalina do receptor glucocorticoide (GR) foi obtida do Research Collaboratory for Structural Bioinformatics Protein Data Bank (RCSB PDB; acessado em 3 de junho de 2026). Após a preparação padrão das estruturas do ligante e receptor, o acoplamento molecular foi realizado usando a plataforma online CB-Dock2 (acessado em 3 de junho de 2026). Os arquivos preparados de ligantes e receptores foram carregados para a plataforma, e os cálculos de acoplamento foram realizados usando os parâmetros padrão.
Análise de enriquecimento funcional da Ontologia Gênica (GO) e da Enciclopédia de Genes e Genomas de Kyoto (KEGG)
Todos os genes-alvo previstos do β-sitosterol foram submetidos a análises de enriquecimento funcional GO e enriquecimento da via KEGG. Os resultados do enriquecimento, incluindo processos biológicos significativamente enriquecidos, componentes celulares, funções moleculares e vias de sinalização, foram organizados e armazenados no Arquivo Suplementar 1 para análise bioinformática subsequente.
Modelagem e agrupamento animal
O tamanho da amostra foi definido em seis animais por grupo com base em um estudo anterior que realizou uma análise de potência a priori usando software G*Power (α = 0,05, potência = 0,80) e demonstrou que n = 6 era suficiente para detectar diferenças biologicamente relevantes sob condições experimentaiscomparáveis 26. Machos C57BL/6 camundongos de 6 a 8 semanas (20 ± 2 g) foram aleatoriamente distribuídos em cinco grupos: grupo controle, grupo modelo de DPOC, grupo DPOC + dexametasona (DEX), grupo DPOC + β-sitosterol e grupo DPOC + DEX + β-sitosterol. Os camundongos foram alojados em condições laboratoriais padrão (25 °C, ciclo claro/escuro de 12 horas) com acesso livre a comida e água padrão, e foram permitidos para se aclimatar por 1 semana antes da experimentação.
Para o estabelecimento modelo de DPOC, os camundongos foram colocados em uma câmara de exposição ao cigarro de corpo inteiro (63 cm × 55 cm × 45 cm) e expostos à fumaça convencional do cigarro por 12 semanas. Cada cigarro continha 10 mg de alcatrão, 0,9 mg de nicotina e 10 mg de monóxido de carbono. A exposição à fumaça foi realizada duas vezes ao dia (5 dias por semana) às 9h30 e às 15h, com fumaça gerada por 18 cigarros entregues na câmara por 90 minutos por27 sessões de 27.
Para avaliar os efeitos terapêuticos das intervenções, a administração de medicamentos foi iniciada após 8 semanas de exposição à fumaça de cigarro e continuou pelas 4 semanas restantes. A partir da 9ª semana, camundongos dos respectivos grupos de tratamento receberam administração diária intragástrica de DEX (1 mg/kg)28 ou β-sitosterol (50 mg/kg)29,30 1 hora antes da exposição à fumaça do cigarro. Estudos farmacocinéticos anteriores relataram uma biodisponibilidade oral de aproximadamente 4% para β-sitosterol emroedores 31. Além disso, vários estudos com camundongos utilizaram doses que variam de 20 a 50 mg/kg 32. Portanto, foi selecionada uma dose de 50 mg/kg para garantir exposição sistêmica adequada, mantendo-se dentro da faixa comumente usada em estudos pré-clínicos.
Os camundongos do grupo controle foram expostos ao ar filtrado da sala, enquanto os camundongos dos grupos modelo e de tratamento receberam um volume equivalente de soro fisiológico normal como veículo. Ao final do período experimental, os camundongos foram profundamente anestesiados com isoflurano até a perda do reflexo pedal e eutanasiados por exsanguinação via coleta de sangue da aorta abdominal. A cavidade torácica foi imediatamente aberta, e os tecidos pulmonares bilaterais intactos foram cuidadosamente excisados, enxaguados com soro salino fosfatado tamponado gelado (PBS) e colocados sobre gelo. Para a coleta do líquido de lavagem broncoalveolar (BALF), a traqueia foi canulada e lavada com PBS frio e estéril, que foi suavemente instilado e retirado repetidamente para coletar o fluido de lavagem. Tecidos pulmonares e amostras de BALF foram mantidos no gelo e posteriormente processados para análises a jusante.
Cultura celular BEAS-2B
Células epiteliais bronquiais humanas BEAS-2B foram mantidas no Modified Eagle Medium/F12 (DMEM/F12) da Dulbecco, contendo 10% de soro bovino fetal (FBS) e 1% de penicilina/estreptomicina abaixo de 5% de CO₂ a 37 °C.
Preparação de CSE e exposição a células BEAS-2B
As células BEAS-2B foram lavadas com soro salino tamponado com fosfato e semeadas em placas de 24 poços em triplicado com uma densidade de 5 × 104 células por poço. Após 12 horas de cultura, as células atingiram aproximadamente 60% de confluência e foram então expostas à CSE. O CSE foi preparado de forma refrescante, conforme descrito anteriormente, com modificaçõesmenores no 33. Brevemente, um cigarro comercial não filtrado era continuamente queimado, e a fumaça comum era bolhada em 10 mL de meio sem soro usando uma bomba de vácuo a uma vazão constante de 1,05 L/min (aproximadamente −11 kPa pressão negativa) por aproximadamente 5 minutos até que o cigarro estivesse completamente queimado. A solução obtida foi inicialmente submetida a pré-filtração para remover grandes impurezas particuladas, depois esterilizada por meio de um filtro microporoso estéril de 0,22 μm para eliminar partículas residuais; a solução resultante foi definida como 100% CSE. Todo o CSE recém-preparado era usado para tratamento celular imediatamente após filtração, sem armazenamento. As células foram estimuladas com meio contendo 2,5% de CSE. Após 24 horas de tratamento com CSE, os supernadantes da cultura foram coletados e armazenados a -40 °C para análisesubsequente 34.
Reação em cadeia quantitativa da polimerase em tempo real (RT-qPCR)
O RNA total foi extraído das células BEAS-2B usando um kit de extração total de RNA e transcrito reversamente em cDNA usando um kit de transcrição reversa, conforme as instruções do fabricante. Posteriormente, o RT-qPCR foi realizado usando um sistema de detecção de PCR em tempo real e uma mistura master qPCR baseada em SYBR Green. Todos os experimentos RT-qPCR foram realizados com três réplicas biológicas e três réplicas técnicas por amostra para garantir a confiabilidade dos dados.
Cada reação qPCR foi realizada em um volume total de 20 μL, contendo 10 μL de mistura master SYBR Green qPCR, 0,4 μL de primer direto, 0,4 μL de primer reverso, 2 μL de molde de cDNA diluído e 7,2 μL de água livre de RNase. As condições de amplificação foram as seguintes: desnaturação inicial a 95 °C por 3 minutos, seguida por 40 ciclos de desnaturação a 95 °C por 10 s e recozimento/extensão a 60 °C por 30 s. Os níveis relativos de expressão gênica foram calculados usando o método 2−ΔΔCt, com o GAPDH atuando como gene de referência interno. As sequências de primers utilizadas neste estudo são mencionadas na Tabela Suplementar 1.
Análise de espécies reativas intracelulares de oxigênio (ROS)
A produção intracelular de ROS em células BEAS-2B foi avaliada usando o diacetato fluorogênico de sonda 2′,7′-diclorodihidrofluoresceína (DCFH-DA) e analisada por citometria de fluxo. Durante a aquisição de citometria em fluxo, foi aplicada uma estratégia padrão de espalhamento frontal (FSC) e dispersão lateral (SSC) para excluir detritos celulares e selecionar células individuais intactas. Um total de 10.000 eventos celulares válidos foram adquiridos para cada amostra. Os comprimentos de onda de excitação e emissão foram ajustados em 488 nm e 525 nm, respectivamente. Dados citométricos de escoamento foram posteriormente analisados para quantificar a intensidade de fluorescência intracelular do ROS.
Determinação do nível de Malondialdeído (MDA)
O conteúdo intracelular de MDA foi medido usando um kit de ensaio de peroxidação lipídica conforme as instruções do fabricante. Brevemente, células BEAS-2B tratadas foram colhidas e lisadas, depois centrifugadas a baixa temperatura para coletar o sobrenadante. A reação colorimétrica do ácido tiobarbitúbico (TBA) foi então realizada, e a absorção foi medida a 532 nm usando um leitor de microplacas. Os níveis relativos de MDA foram calculados de acordo com a curva padrão.
Avaliação da senescência celular
A senescência celular foi avaliada usando um ensaio de detecção de senescência baseado na atividade associada à senescência β-galactosidase (SA-β-gal). Células SA-β-gal-positivas foram quantificadas por citometria de fluxo. Paralelamente, os níveis de expressão de mRNA dos marcadores associados à senescência p53 e p21 foram determinados por RT-qPCR.
Ensaio de proliferação celular
A proliferação celular foi avaliada usando um kit de ensaio de viabilidade celular colorimétrica. A absorvância foi medida em 450 nm usando um leitor de microplaca.
Ensaio de knockdown da GR
A transfecção celular foi realizada usando um reagente de transfecção à base de lipídios. Os seguintes oligonucleotídeos foram transfectados: RNA pequeno interferente direcionado ao receptor de glucocorticoides (si-GR) e RNA interferente pequeno controle negativo (si-NC). Sequências candidatas de siRNA direcionadas à RG foram projetadas usando a plataforma online de bioinformática siDirect 2.0. Após a transfecção, as células foram cultivadas por 48 horas, e todos os siRNAs foram usados em uma concentração final de 50 nM. A eficiência do knockdown foi verificada medindo a expressão do mRNA da GR usando RT-qPCR.
Grupos de controle de veículos foram incluídos tanto em experimentos de tratamento com β-sitosterol quanto em experimentos de transfecção. Para a intervenção com β-sitosterol, células tratadas apenas com solvente do veículo serviram como grupo controle do veículo (denotado como CSE+0). A análise estatística confirmou que não foram observadas diferenças significativas entre os grupos controle do veículo e controle em branco.
Análise estatística
Todos os resultados quantitativos foram expressos como média ± desvio padrão de três experimentos in vitro biologicamente independentes. As análises estatísticas foram realizadas usando software de análise estatística. O teste de Shapiro–Wilk foi usado para examinar a normalidade da distribuição do conjunto de dados antes dos testes estatísticos; A correção pós-hoc de Bonferroni foi adotada para ajustar os valores de P para comparações múltiplas após análise de variância (ANOVA). As comparações entre dois grupos foram avaliadas por um teste t de Student não pareado, enquanto ANOVA unidirecional ou bidirecional foi empregada para comparações multigrupos. Um valor p ≤ 0,05 foi considerado estatisticamente significativo.