As fórmulas de MTC melhoram a inflamação e os danos colônicos na colite induzida por DSS
A eficácia protetora das fórmulas de MTC foi inicialmente avaliada por meio das alterações no peso corporal. Em comparação com os controles, o grupo modelo de RCU apresentou perda sustentada de peso. BJQF, BSF, JPF e QCF atenuaram significativamente a perda de peso induzida por DSS (Figura 1A). A coloração com HE revelou mucosa colônica íntegra e ausência de inflamação nos controles. Em contraste, o tecido colônico do grupo modelo mostrou grave distorção epitelial, destruição das criptas e intensa infiltração de células inflamatórias na mucosa e submucosa. Todos os tratamentos com MTC promoveram a recuperação tecidual e reduziram a inflamação, sendo o BJQF o que apresentou a melhora mais acentuada (Figura 1B–C). A pontuação histológica quantitativa confirmou que a MTC melhorou significativamente os danos histopatológicos (p < 0,05).
BJQF, BSF, JPF e QCF reduziram o IL-1β sérico (Figura 1D) e o TNF-α (Figura 1F) em graus variados. Os níveis de IL-10 nos grupos tratados não atingiram os níveis do grupo controle, mas foram significativamente mais altos do que no grupo modelo (Figura 1E). Esses resultados indicam que as fórmulas de MTC inibem a inflamação intestinal induzida por DSS.

Figura 1: Efeitos terapêuticos do BJQF e de suas subfórmulas decompostas na colite induzida por DSS em ratos. (A) Alterações dinâmicas na razão entre o peso corporal e o valor basal em cada grupo ao longo do período experimental de 10 dias; (B) Pontuações histológicas quantitativas dos tecidos do cólon em todos os grupos experimentais; (C) Cortes representativos de tecidos do cólon corados com hematoxilina-eosina (HE) de cada grupo (barra de escala = 200 µm); (D–F) Concentrações séricas de citocinas inflamatórias em cada grupo: (D) IL-1β, (E) IL-10, (F) TNF-α. Os dados são expressos como média ± DP. *p < 0,05, **p < 0,01, ****p < 0,0001. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
O tratamento com MTC remodela a estrutura da comunidade microbiana intestinal em ratos com RC
Após a filtragem de qualidade, obteve-se uma média de 68.450 ± 28.297 leituras limpas de alta qualidade por amostra. O tratamento com MTC alterou a diversidade bacteriana α (índice Chao1, Figura 2A). O BJQF reduziu significativamente a diversidade α elevada em ratos com RC (p(FDR) < 0,05). Entre as subfórmulas, o JPF reduziu significativamente a diversidade (p(FDR) < 0,05), enquanto o BSF e o QCF não apresentaram efeito significativo. Quanto à diversidade β, a PCoA não ponderada das distâncias UniFrac mostrou separação clara entre os grupos, indicando que o tratamento com MTC remodelou a composição microbiana geral (Figura 2B). A agrupamento hierárquico demonstrou ainda agrupamentos distintos entre os grupos modelo e de tratamento (Figura 2C).
Um total de 13 filos, 22 classes, 36 ordens, 65 famílias e 158 gêneros foi detectado. No nível de filo, Firmicutes, Bacteroidetes, Actinobacteria, Verrucomicrobia e Proteobacteria predominaram (>99% de abundância total, Figura 2D). Firmicutes foi predominante nos controles (86,98%), diminuiu significativamente na RC (p(FDR) < 0,05) e foi restaurado pela MTC (p(FDR) < 0,05), sendo o BJQF o que apresentou o efeito mais acentuado. Bacteroidetes e Proteobacteria aumentaram significativamente na RC e foram revertidos por todas as fórmulas de MTC. No nível de gênero (abundância >1%, Figura 2E), Lactobacillus foi predominante nos controles (59,77%), reduziu-se acentuadamente na RC (3,57%, p(FDR) < 0,05) e foi restaurado pela MTC (p(FDR) < 0,05). BJQF e JPF mostraram efeitos mais fortes na restauração de Lactobacillus. A RC também aumentou Bacteroides, Ruminococcus_2, Bifidobacterium e Blautia, e reduziu Enterorhabdus e Corynebacterium_1 — a maioria dos quais foi revertida pela MTC. De modo geral, todas as fórmulas atenuaram a disbiose microbiana associada à RC, sendo que BJQF e JPF apresentaram os efeitos mais acentuados.

Figura 2: Composição da microbiota intestinal em grupos. (A) Índice de diversidade bacteriana α avaliado utilizando o Chao 1 (p(FDR) < 0,05 versus Modelo); (B) Análise de coordenadas principais (PCoA) das distâncias UniFrac com base na composição e abundâncias de OTUs em diferentes grupos; (C) Análise de agrupamento hierárquico com base na matriz de distância; (D) Abundância relativa no nível de filo (p(FDR) < 0,05 versus Modelo); e (E) Abundância relativa no nível de gênero (p(FDR) < 0,05 versus Modelo). Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
LEfSe identifica táxons diferenciais associados à DC e à MTC
A análise LEfSe foi realizada para identificar táxons diferencialmente enriquecidos entre os grupos (LDA > 3, p < 0.05, Figura 3). Os táxons enriquecidos em UC incluíram Bacteroidaceae, Bacteroides, Clostridiales, Clostridia, Bacteroidia, Bacteroidales, Bacteroidetes, Faecalibaculum e Ruminococcaceae, principalmente de Bacteroidetes e Firmicutes. Após o tratamento com TCM, a maioria dos táxons enriquecidos por BJQF pertencia a Firmicutes, com apenas Bifidobacteriaceae, Bifidobacteriales, e Bifidobacterium de Actinobactérias. Os táxons enriquecidos em BSF foram também principalmente Firmicutes. Táxons enriquecidos com JPF, tais como Turicibacter e Dorea pertenciam a Firmicutes. QCF mostrou o maior enriquecimento de Verrucomicrobia (incluindo Akkermansia), indicando alta sensibilidade desse filo à intervenção com QCF. Em geral, Firmicutes foi o filo mais responsivo ao BJQF, BSF e JPF.

Figura 3: O LEfSe identificou as OTUs mais diferencialmente abundantes em diferentes grupos. Diferenças significativas nos escores LDA (p < 0,05) foram observadas entre classes (teste de Kruskal–Wallis) e entre subclasses (teste de Wilcoxon). Os táxons diferenciais foram determinados com base em um escore limiar de LDA > 3 e um nível de significância estatística de 0,05. (p: filo c: classe o: ordem f: família g: gênero). Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
A intervenção com MTC normaliza os perfis fecais de ácidos biliares em ratos com RC
Dada a má absorção de ácidos biliares (AB) na DII, os autores utilizaram LC-MS/MS para quantificar ABs fecais. A ACP mostrou separação clara entre os grupos controle e modelo, enquanto todos os grupos tratados se agruparam mais próximos aos controles, indicando normalização parcial do metabolismo de ABs (Figura 4A). Os ABs mais alterados no grupo modelo foram LCA-3S elevado e GDCA reduzido (Figura 4B). Após o tratamento, os ABs mais aumentados foram ILCA (BJQF), GCDCA (BSF), DLCA (JPF) e GCDCA (QCF); os ABs mais reduzidos foram TLCA-3S (BJQF), LCA-3S (BSF), LCA-3S (JPF) e TLCA-3S (QCF) (Figura 4C–F). Gráficos de violino visualizaram os ABs diferencialmente expressos comuns entre os grupos (Figura 5). Notavelmente, todas as fórmulas de MTC aumentaram 23-DCA, 3-oxo-DCA e DLCA, e reduziram HCA, LCA-3S, TCA e TLCA-3S.

Figura 4: Fórmulas de MTC regularam a desordem de ácidos biliares induzida por DSS no modelo de RC. (A) Gráfico PCA de ácidos biliares dos grupos Controle, Modelo, BJQF, BSF, JPF e QCF. (B) Diagrama de barras da variação de expressão no grupo Modelo em relação ao Controle. (C) Diagrama de barras da variação de expressão no grupo BJQF em relação ao Modelo. (D) Diagrama de barras da variação de expressão no grupo BSF em relação ao Modelo. (E) Diagrama de barras da variação de expressão no grupo JPF em relação ao Modelo e (F) Diagrama de barras da variação de expressão no grupo QCF em relação ao Modelo. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 5: Gráfico de violino das BA diferenciais em cada grupo de comparação. (A) BA diferenciais em BJQF versus Modelo. (B) BA diferenciais em BSF versus Modelo. (C) BA diferenciais em JPF versus Modelo e (D) BA diferenciais em QCF versus Modelo. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
Correlação entre ácidos biliares fecais e abundância microbiana intestinal
Foi realizada análise de correlação de Spearman entre filos diferenciais e ácidos biliares diferenciais (Figura 6A–F, Figura 7A–D). Os gráficos em cordas mostram correlações com |r| ≥ 0,8 (Figura 6B, 6D, 6F). Na comparação modelo versus controle, a 23-DCA apresentou correlação positiva com Saccharibacteria e Firmicutes, e correlação negativa com Proteobacteria e Bacteroidetes (Figura 6B). Na comparação BJQF versus modelo, Proteobacteria esteve associado a TLCA-3S, LCA-3S, TCA, α-MCA, 6,7-DKLCA, HCA, CDCA e THCA (Figura 6D). Na comparação BSF versus modelo, Proteobacteria apresentou correlação positiva com TDCA, 6,7-DKLCA e LCA-3S; Saccharibacteria apresentou correlação positiva com GUDCA e 23-DCA (Figura 6F).

Figura 6: Correlações entre ácidos biliares (AB) diferenciais nas fezes e a abundância de bactérias diferenciais ao nível de filo. (A, C, E) Análises de correlação de Spearman para os grupos Controle versus Modelo, BJQF versus Modelo e BSF versus Modelo, respectivamente. (B, D, F) Gráficos circulares correspondentes ilustrando correlações fortes (|r| ≥ 0,8) para os grupos Controle versus Modelo, BJQF versus Modelo e BSF versus Modelo, respectivamente. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
Os gráficos de cordas mostram correlações com |r| ≥ 0,8 (Figura 7B, 7D). Na comparação entre JPF e o modelo, Saccharibacteria apresentou associação negativa com TLCA-3S, LCA-3S e HCA, e correlação positiva com 23-DCA (Figura 7B). Na comparação entre QCF e o modelo, Saccharibacteria apresentou correlação negativa com HCA, CA, LCA-3S, THCA e TLCA-3S, e correlação positiva com 23-DCA (Figura 7D). Esses resultados indicam que diferentes fórmulas de MTC modulam a rede de interação bactéria–AB por meio de padrões distintos.

Figura 7: Correlações entre ácidos biliares (AB) diferenciais nas fezes e a abundância de bactérias diferenciais. (A, C) Análises de correlação de Spearman para os grupos JPF versus Modelo e QCF versus Modelo, respectivamente. (B, D) Gráficos de cordas correspondentes ilustrando correlações fortes (|r| ≥ 0,8) para os grupos JPF versus Modelo e QCF versus Modelo, respectivamente. O vermelho indica correlações positivas, enquanto o azul indica correlações negativas. p < 0,05, p < 0,01. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
DISPONIBILIDADE DE DADOS:
Todos os dados brutos foram enviados para o banco de dados NCBI Sequence Reads Archive (SRA) (Número de acesso: PRJNA749732). https://www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject/PRJNA749732