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Animais e modelos da IGT
Todos os procedimentos com animais foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal do Instituto de Pesquisa da Universidade Sudeste de Suzhou (aprovação nº SEU-IACUC-20250318007) e foram realizadas de acordo com as diretrizes institucionais para o cuidado e uso de animais de laboratório. Os ratos foram obtidos e alojados sob condições de livre de patógenos específicos (FPS) a 25 °C, com um ciclo de 12 horas de luz e 12 horas de escuridão. Para procedimentos que exigiam anestesia, os ratos eram anestesiados usando isoflurano administrado em oxigênio através de uma câmara de indução e mantidos usando um cone nasal. Isoflurano foi usado a 3% para indução e 1% para manutenção, com a concentração ajustada de acordo com a frequência respiratória e a resposta procedimental.
A profundidade anestésica adequada foi confirmada antes do needling ou injeção pela perda do reflexo de endireitamento e ausência de resposta ao aperto do dedo do pé. Durante a anestesia, o padrão respiratório, a posição do corpo e a recuperação eram monitorados, e os animais eram colocados em um almofada de aquecimento para manter a temperatura corporal. Os animais eram alojados com 2 pessoas por gaiola, com acesso livre a comida e água, a menos que fosse necessário jejum para o teste de glicose. Após a chegada, os ratos foram aclimatados por 1 semana antes da indução do modelo. O bem-estar animal era monitorado diariamente, incluindo atividade geral, tosa, ingestão de alimentos, peso corporal, condição do local de injeção e recuperação após anestesia. Ao final do estudo, os ratos foram eutanasiados de acordo com o protocolo animal aprovado. A eutanásia foi realizada por inalação gradual de CO₂ de preenchimento gradual, seguida pela confirmação da morte usando o método da luxação cervical. Animais que atenderam aos critérios de desfecho humano, incluindo perda de peso severa, imobilidade persistente, respiração anormal, incapacidade de comer ou beber, ou sofrimento severo, foram eutanasiados imediatamente, em vez de serem mantidos até o desfecho programado. Ratos machos de grau específico livre de patógenos de Sprague–Dawley, pesando 200 ± 20 g, foram usados neste estudo. Após 1 semana de aclimatação, os ratos foram distribuídos aleatoriamente em dois grupos: os três ratos do grupo normal foram alimentados com comida normal, enquanto os 20 ratos do grupo modelo foram alimentados com comida rica em gordura (50% comida basal + 10% banha + 25% sacarose + 15% gema em pó) por 3 semanas. Os animais do grupo modelo receberam injeção intraperitoneal de 20 mg/kg de solução STZ a 2% (solubilizada em 0,1 mol/L, tampão de citrato pH 4,4) por 12 horas, após 12 horas de jejum sem restrição de água. Os do grupo normal receberam uma injeção intraperitoneal da dose correspondente de solução tampão de citrato após serem alimentados com comida normal. Um teste de tolerância à glicose intraperitoneal (IPGTT) foi realizado uma semana depois. Reagentes e equipamentos usados neste estudo estão listados na Tabela de Materiais.
A glicose no sangue em jejum (FPG) foi medida pela coleta de sangue na ponta da cauda de ratos de cada grupo após 12 horas de jejum sem restrição de água, e 2 horas de glicose pós-prandial (2hPG) foram registradas após injeção intraperitoneal de 20% de dextrose 2 g/kg. No grupo normal, a faixa de FPG era de 5,1–6,6 mmol/L, e a faixa de glicose de 2hPG era de 7,3–9,4 mmol/L, comparado a um FPG de ≤7,0 mmol/L e uma faixa de 2hPG de 10–16 mmol/L no grupo modelo. Entre os 20 ratos designados para indução modelo de IGT, 18 atenderam aos critérios pré-definidos de IGT após o IPGTT e foram incluídos no experimento de intervenção subsequente. Dois ratos foram excluídos porque seus valores de FPG ou 2hPG estavam fora da faixa pré-definida de IGT. Os 18 ratos elegíveis foram então aleatoriamente designados para um grupo com dieta rica em gordura e um grupo com dieta normal, com 9 ratos por grupo. Cada grupo da dieta foi ainda dividido em três subgrupos: torção de ponto de acupuntura, torção não de local de acupuntura e inserção direta de pontos de acupuntura, com três ratos por subgrupo. Este foi um estudo exploratório de desenvolvimento de métodos projetado para avaliar a viabilidade de combinar intervenção por acupuntura com rastreamento ratiométrico baseado em SERS em um modelo pré-clínico de ratos IGT. Nenhum cálculo formal de potência estatística foi realizado. O tamanho do subgrupo de três ratos foi selecionado com base na viabilidade, estudos preliminares de SERS-microagulhas e no princípio de redução animal. Ratos foram designados aleatoriamente pelo experimentador; não foram realizados ocultamentos formais de alocação e cegueira.
Os protocolos de tratamento com acupuntura foram avaliados com base em diretrizes de prática clínica baseadas em evidências para a medicina tradicional chinesa e na viabilidade de experimentos comanimais 22. Os pontos de acupuntura selecionados foram Zhongwan (RN12/CV12), Shuifen (RN9/CV9), Yinjiao (RN7/CV7), Tianshu bilateral (ST25), bilateral Shuidao (ST28) e bilateral Zusanli (ST36). RN12, RN9 e RN7 estavam localizados na linha média anterior e tratados como pontos únicos da linha média, enquanto ST25, ST28 e ST36 foram tratados bilateralmente. Os pareamentos de pontos de acupuntura foram baseados nos usados para o tratamento clínico da IGT23. A adaptação foi baseada na literatura24,25, utilizando o método dicotômico. Para ratos, os pontos de acupuntura foram localizados de acordo com marcos anatômicos e conversão proporcional a partir das localizações padrão dos pontos de acupuntura humanos. Os pontos RN/CV abdominais foram identificados ao longo da linha média anterior usando o processo xifoide, umbílico e sínfise púbica como marcos anatômicos. ST25 foi marcado bilateralmente no nível umbilical, e ST28 foi marcado bilateralmente na região inferior do abdômen, na mesma distância lateral da linha média anterior. ST36 foi identificado no membro posterior anterolateral na região anterior do tibial, lateral ao tubérculo tibial. Locais de comparação adjacentes sem acupuntura foram marcados com 5 mm de lateral aos pontos de acupuntura correspondentes e fora da linha do meridiano reconhecido, evitando vasos visíveis, cicatrizes e locais de perfuração anteriores. Antes da agulhada, os ratos eram anestesiados com isoflurano conforme o protocolo animal aprovado e colocados em posição supina sobre uma almofada térmica. A pele abdominal e dos membros posteriores sobre cada local alvo foi raspada e desinfetada com etanol a 75%. Microagulhas ativas com SERS foram inseridas aproximadamente perpendicularmente à pele até uma profundidade de aproximadamente 10 mm. Para os grupos de torção dos pontos de acupuntura, microagulhas ativas no SERS foram inseridas nos pontos de acupuntura selecionados e giradas suavemente bidirecionalmente durante o período de retenção de 20 minutos. Para os grupos sem locais de acupuntura, o mesmo procedimento foi realizado nos locais de comparação de 5 mm adjacentes sem acupuntura. Para os grupos de inserção direta, microagulhas ativas com SERS foram inseridas nos pontos de acupuntura e mantidas por 20 minutos sem torção. Todos os procedimentos de agulhamento foram realizados pelo mesmo operador treinado para minimizar a variação entre operadores.
Agulhamento era realizado duas vezes ao dia, às 10h e 15h, por 7 dias consecutivos. Antes de cada procedimento diário, a FPG foi medida após 8 horas de jejum sem restrição de água. Após cada procedimento de agulhamento diário, as respostas de OC e RP foram registradas. No sétimo dia, após o tratamento de acupuntura, foi realizada a IPGTT, e foram registrados valores de 2hPG.
Advertências
A estreptozotocina é perigosa e deve ser tratada como um produto químico tóxico. Prepare a solução de estreptozotocina em um exaustor químico ou em um armário certificado de biossegurança, enquanto usa jaleco, luvas de nitrilo, óculos de proteção e máscara. Seringas, agulhas, lenços contaminados com estreptozotocina, camas de cama, gaiolas e resíduos relacionados a animais devem ser manuseados de acordo com procedimentos institucionais de resíduos biológicos e químicos perigosos. Agulhas e seringas usadas devem ser descartadas imediatamente em recipientes de perfis resistentes a perfuração, sem recobrir a tampo.
Fabricação de microagulhas ativas SERS para a detecção de CO e RP
Agulhas de acupuntura foram preparadas, conforme relatadoanteriormente, 26. Microagulhas ativas com SERS foram fabricadas utilizando o mesmo tipo de agulhas comerciais de aço inoxidável (0,25 mm × 26 mm) durante todo o estudo. As agulhas eram inseridas aproximadamente perpendicularmente à pele, com uma profundidade de 10 mm. Para grupos de torção, a rotação bidirecional manual foi aplicada suavemente e de forma consistente por 20 minutos durante o período de retenção pelo mesmo operador treinado. A manipulação não era controlada por instrumentos; portanto, a frequência e amplitude exatas da rotação não foram quantificadas. Essa limitação foi reconhecida na Discussão.
Inicialmente, as agulhas foram embebidas em uma solução de PMMA a 20% (p/v) em MMA, seguidas de secagem em temperatura ambiente (25 °C) por 1 dia. Em seguida, duas reentrâncias paralelas de tamanho uniforme e forma e profundidade semelhantes na camada protetora de PMMA (separadas por 5 mm) foram feitas usando uma pequena lâmina de faca artesanal que havia sido limpa com etanol; depois, as agulhas eram submersas em ácido sulfúrico de 0,5 M, servindo como eletrólito por 10 s para sofrer gravação eletroquímica a uma tensão de 12 V, gerando assim dois sulcos quase circulares nos locais de marca. Terceiro, após enxaguar em três ocasiões, as agulhas foram imersas em temperatura ambiente por 24 horas em uma solução de etanol contendo 0,1 mol L−1 MPTES e 0,3 mol L−1 APTES, conferindo assim funcionalidade sulfhidril às superfícies sulcadas. Quarto, o revestimento foi removido mergulhando a agulha no MMA. Microagulhas ativas SERS-responsivas ao potencial redox foram preparadas com base em um método27 previamente relatado. O substrato SERS foi adsorvido em uma das ranhuras gravadas de cada agulha de acupuntura, após o que as microagulhas ativas para SERS resultantes eram submersas em uma solução aquosa de p-PDA a uma concentração de 1 × 10-4 mol/L por 60 minutos a 37 °C, resultando em microagulhas SERS ativas responsivas à oxidação. Substratos SERS baseados em nanocascas de ouro foram sintetizados conforme descritoanteriormente, 28. No presente trabalho, essas microagulhas foram pingadas na outra ranhura de cada agulha de acupuntura, que depois foram deixadas secar naturalmente. Isso gerou microagulhas ativas em SERS com resposta a CO e RP.
Avaliação ex vivo da resposta de CO e RP a microagulhas ativas no SERS
As respostas das sondas OC e RP foram avaliadas inserindo as microagulhas ativas no SERS no tecido ex vivo. Para verificar a resposta da sonda OC a mudanças oxidativas, espectros SERS do p-PDA foram registrados antes e depois da oxidação. Espectros das sondas redox SERS também foram adquiridos em uma solução fortemente redutora deNaBH 4 e em uma solução fortemente oxidante de HAuCl4. A seletividade da sonda OC foi avaliada usando agentes redutores, incluindo 1 × 10-4 MFeSO 4, 1 × 10-4 MNa 2SO4 e 1 × 10-4 M ácido ascórbico, e agentes oxidantes, incluindo 1 × 10-4 M CuSO4, 1 × 10-4 MH 2O 2, 1 × 10-4 M FeCl3, e 1 × 10-4 M HAuCl4. Todas as soluções foram preparadas em 20 mM de PBS (pH 7,4), e as sondas foram incubadas com cada solução por 20 minutos a 37 °C. A robustez das microagulhas ativas no SERS foi avaliada registrando as respostas do CO antes e depois da reação com 1 × 10-4 mol/L deFeCl 3 em temperatura ambiente. Esses testes ex vivo e baseados em solução foram usados para confirmar a resposta da sonda em condições controladas. No entanto, eles não reproduzem totalmente a complexidade do microambiente tecidular in vivo, onde variações locais de pH, adsorção de proteínas, componentes da matriz extracelular e outras substâncias biológicas podem afetar os sinais SERS. Portanto, as leituras in vivo de OC e RP foram interpretadas como índices SERS relativos associados ao redox, em vez de medições bioquímicas independentes da matriz.
Detecção de OC e RP em locais de acupuntura e não acupuntura
Para avaliar o desempenho das sondas OC e RP em pontos e pontos não acupunturas, as microagulhas ativas para SERS foram inseridas em ratos saudáveis nos pontos ST36 e RN12, e 5 mm adjacentes a cada um desses pontos, em uma profundidade aproximada de aproximadamente 10 mm, pelo mesmo período de tempo.
Efeitos da torção da agulha na detecção de OC e RP
Para avaliar a resposta das sondas OC e RP sob diferentes técnicas de agulhamento, microagulhas ativas com SERS foram inseridas nos pontos de acupuntura ST36 e RN12 e 5 mm adjacentes a esses pontos em ratos saudáveis, com uma profundidade de cerca de 10 mm. Em cada ponto de acupuntura, uma agulha era torcida, enquanto a agulha correspondente adjacente à ponta não era, e vice-versa (uma agulha adjacente ao ponto de acupuntura era torcida, enquanto sua contraparte no ponto de acupuntura não era). Os sinais SERS das sondas foram coletados no mesmo tempo de inserção para cada agulha.
Alterações no CO e RP em ratos com IGT em relação a pontos de acupuntura, torção da agulha e condições alimentares
Para avaliar os efeitos dos pontos de acupuntura, torção da agulha e condições alimentares sobre o CO e RP de ratos com IGT, ratos do grupo da dieta rica em gordura foram aleatoriamente distribuídos em três grupos (A1, A2 e A3; três ratos em cada grupo), assim como os do grupo da dieta normal (grupos B1, B2 e B3; três ratos em cada grupo). Para ratos dos grupos A1 e B1, microagulhas ativas com SERS foram inseridas nos pontos de acupuntura após a sedação e torcidas por 20 minutos; o mesmo procedimento foi realizado em ratos dos grupos A2 e B2, exceto que as microagulhas foram inseridas 5 mm adjacentes aos pontos de acupuntura. Para ratos em A3 e B3, as microagulhas ativas no SERS foram inseridas nos pontos de acupuntura do rato sem torcer; As agulhas ficaram no lugar por 20 minutos. O agulhamento era realizado duas vezes ao dia, às 10:00 e 15:00, por 7 dias. Antes de cada procedimento diário, um medidor de glicose era usado para registrar os valores de FPG para cada grupo de ratos (após jejum, mas sem restrição de água por 8 horas). Após cada dia de agulhagem, as respostas de OC e RP foram medidas e registradas. No sétimo dia, após a acupuntura, foi realizada a IPGTT em cada grupo de ratos, e os valores de 2hPG foram registrados.
Caracterização e medição
A morfologia das microagulhas ativas em SERS foi examinada com microscopia eletrônica de varredura (MEV). Os espectros SERS foram adquiridos a 25 °C, usando um espectrômetro Raman configurado com um objetivo de 50× longa distância de trabalho (NA: 0,5) e um laser de 785 nm. Para todas as medições, o tempo de aquisição foi de 10 s, e o sistema Raman operava em uma potência nominal de laser de 600 μW sob a mesma configuração óptica. A potência real do laser entregue à superfície do tecido não foi medida diretamente neste estudo. Portanto, os espectros SERS foram usados para comparações relativas entre grupos sob configurações idênticas de aquisição, e nenhuma conclusão foi tirada sobre a segurança fototérmica absoluta do tecido. As razões de intensidade de duas sondas SERS foram calculadas usando a seguinte abordagem: a razão entre valores de intensidade em 1450 cm−1 e 1500 cm−1 foi designada como indicador para OC (I1450 cm−1/I1500 cm−1), após subtrair a intensidade em 1700 cm−1 (como fundo) de cada um dos dois picos, respectivamente, como em relatórios anteriores, 17; e usando I1606 cm−1/I1666 cm−1 como indicador de RP, a intensidade em 1700 cm−1 (como fundo ) foi subtraída de cada um dos dois picos, respectivamente. Os valores calculados I1450 cm−1/I1500 cm−1 e I1606 cm−1/I1666 cm−1 foram analisados como índices relativos derivados do SERS das respostas associadas a OC e RP, respectivamente. Essas razões foram usadas para comparar mudanças entre grupos e pontos de tempo sob configurações idênticas de aquisição.
Nenhuma curva de calibração externa foi estabelecida no presente estudo para converter essas razões em concentrações absolutas de espécies oxidativas ou valores absolutos eletroquímicos de potencial redox. Cada espectro foi registrado duas vezes em cinco pontos diferentes da sonda SERS em três amostras replicadas. O Origin era usado para processar dados e produzir gráficos. Para minimizar a variabilidade relacionada à aquisição, o mesmo comprimento de onda do laser, objetivo, tempo de aquisição, ajuste de potência do laser e fluxo de trabalho de processamento espectral foram aplicados a todos os grupos. Os potenciais efeitos fototérmicos ou fotoquímicos causados pela irradiação a laser não foram quantificados de forma independente e são reconhecidos como uma limitação. Os dados estatísticos são apresentados como média ± erro padrão da média (SEM). O tamanho da amostra e o teste estatístico usado para cada experimento ou painel de figuras são especificados nas legendas correspondentes das figuras. Para experimentos de validação de sonda ex vivo , a sonda SERS ou microagulha preparada independentemente era usada como unidade de análise. Para análises in vivo de glicose no sangue e índice SERS, o rato foi usado como unidade de análise biológica. Espectros coletados em múltiplos pontos da mesma sonda foram tratados como medições técnicas e mediados antes da análise em nível de grupo. Análises estatísticas foram realizadas usando o software SPSS. Comparações entre grupos foram realizadas usando os testes estatísticos indicados nas legendas correspondentes das figuras. Medições seriadas de glicose no sangue em jejum e índice SERS durante o período de intervenção de 7 dias foram interpretadas como tendências longitudinais exploratórias devido ao pequeno tamanho do subgrupo, e nenhum modelo formal de medidas repetidas ou efeitos mistos foi aplicado. A significância estatística foi definida como p < 0,05. *p < 0,05, **p < 0,01, ***p < 0,001, ****p < 0,0001.