Identificação de genes sobrepostos, análise de enriquecimento e construção da rede de interação proteína-proteína
Do conjunto de dados GSE54837, foram identificados 3.371 genes diferencialmente expressos (DEGs), incluindo 1.675 DEGs superexpressos e 1.696 DEGs subexpressos. Os 10 principais genes com maior significância de superexpressão e subexpressão são apresentados em Figura 1A. Foi realizada uma análise de agrupamento hierárquico dos dados do GSE54837 (Figura Suplementar 1A) e foi aplicada uma potência de limiarização suave de 10 para garantir uma topologia de rede livre de escala (Figura 1B). Módulos de coexpressão gênica foram construídos utilizando o método de corte dinâmico de árvores com um tamanho mínimo de módulo de 50 genes, e cada módulo recebeu uma cor distinta (Figura Suplementar 1B). Módulos com correlações de eigengenes > 0,75 foram posteriormente mesclados (Figura Suplementar 1C, Figura 1C), resultando em 14 módulos distintos. Com base na análise de correlação de Pearson entre os eigengenes dos módulos e as características clínicas, o módulo MEsalmon (composto por 5.226 genes) apresentou a correlação positiva mais significativa com DPOC (r = 0,35, p = 7 x 10⁻8, Figura 1D). A análise de Venn identificou 160 genes sobrepostos entre os 3.371 DEGs, os 5.226 genes do módulo MEsalmon e os 2.118 ac4C-RGsFigura 1E). A análise de enriquecimento funcional desses 160 genes mostrou que os termos GO significativos incluíram ligação ao RNA de fita simples, regulação do processo metabólico de mRNA e via de sinalização RIG-I (Figura 1F). Além disso, a análise KEGG demonstrou que esses genes foram principalmente enriquecidos na fagocitose mediada por receptores Fc gama R, na via de vigilância de mRNA e na adesão focal (Figura 1G). A rede PPI dos genes sobrepostos continha 118 nós e 196 arestas (Figura 1H).
Identificação de seis genes-chave na DPOC
Para identificar ainda mais os genes-chave potenciais entre os 160 candidatos sobrepostos, foram aplicados três algoritmos de aprendizado de máquina. Primeiramente, foi aplicada a regressão LASSO, utilizando validação cruzada para determinar o parâmetro de penalidade ótimo (λ) ≈ 0,091 (Figura 2A). O gráfico do perfil dos coeficientes indicou que 17 genes foram mantidos no valor ótimo de λ (Figura 2B). A análise XGBoost identificou os 30 principais genes com maior ganho, dentre os quais PTRF, WBP11 e LDOC1L apresentaram alto valor preditivo (Figura 2C). O algoritmo RF classificou de forma semelhante os 30 principais genes com base em suas pontuações de importância de Gini, sendo PTRF, RFX5 e PRKCDBP os mais preditivos (Figura 2D). A análise de interseção dos genes selecionados pelos três métodos identificou seis genes-chave sobrepostos: PTRF, PRKCDBP, UPP1, TOR3A, FAM168B e B4GALT2 (Figura 2E).
Construção do modelo diagnóstico e análise da expressão de genes-chave
Utilizando 70% do conjunto de dados GSE54837 como conjunto de treinamento, foi estabelecido um modelo de regressão logística que incorpora os seis genes-chave. A análise da curva ROC indicou desempenho diagnóstico moderado, com AUCs de 0,766 (IC 95%: 0,691–0,8417), 0,759 (IC 95%: 0,6368–0,8817) e 0,723 (IC 95%: 0,6085–0,8596) para os conjuntos de treinamento, teste interno e validação externa, respectivamente (Figura 3A–C). A análise de calibração confirmou alta confiabilidade, e a DCA indicou benefício clínico líquido claro em uma ampla faixa de probabilidades de limiar, tanto nos conjuntos de treinamento (Figura 3D–E) quanto de validação (Figura 3F–G). Foi construído um nomograma para visualizar a contribuição de cada gene e facilitar a estimativa de risco individualizada (Figura 3H). A análise de expressão revelou que B4GALT2, PRKCDBP e UPP1 estavam significativamente superexpressos em amostras de DPOC, enquanto FAM168B, PTRF e TOR3A estavam subexpressos (Figura 3I).
Rede regulatória e análise funcional dos genes-chave na DPOC
Foi construída uma rede de interação funcional composta pelos 20 principais genes mais relacionados aos genes centrais identificados, utilizando a análise GeneMANIA (Figura 4A). As interações físicas representaram a maioria das conexões, seguidas por correlações de coexpressão e domínios proteicos compartilhados. A anotação funcional indicou enriquecimento significativo em processos como processo catabólico de molécula pequena contendo nucleobase, processo catabólico de nucleosídeo e microdomínio de membrana plasmática. A regulação pós-transcricional foi investigada por meio da interseção de predições de miRNAs provenientes dos bancos de dados DIANA-microT e miRanda, identificando oito miRNAs sobrepostos (Figura 4B). Um eixo regulatório lncRNA-miRNA-mRNA foi posteriormente construído. De acordo com o diagrama de Sankey, dois dos miRNAs identificados, ambos associados à regulação de FAM168B, foram preditos como alvos de sete lncRNAs; nenhuma interação regulatória desse tipo foi identificada para os cinco genes centrais restantes (Figura 4C). A regulação transcricional foi ainda explorada utilizando a plataforma ChEA3, que predisse fatores de transcrição (FTs) upstream para B4GALT2, UPP1, FAM168B e TOR3A. Os dez principais FTs para cada gene foram selecionados para a construção de uma rede regulatória FT-alvo (Figura 4D). A GSEA foi realizada para investigar as funções biológicas dos seis genes-chave. UPP1 apresentou enriquecimento significativo em processos biológicos como processo metabólico de diacilglicerol e processo biossintético de trifosfato de nucleosídeo de purina, bem como em vias incluindo proteassoma e metabolismo de xenobióticos pelo citocromo P450 (Figura 4E–F). Os resultados de enriquecimento para os cinco genes-chave restantes estão apresentados na Figura Suplementar 2A–J.
Infiltração imune de UPP1 e predição de alvos farmacológicos na DPOC
Os níveis de infiltração imune de 28 tipos de células imunes foram avaliados nos grupos controle e DPOC utilizando o algoritmo ssGSEA. Em pacientes com DPOC, células B de memória, células supressoras derivadas de mieloides e células dendríticas ativadas apresentaram escores de enriquecimento significativamente mais altos. Em contraste, células T auxiliares tipo 1, células B ativadas e células B imaturas apresentaram escores de enriquecimento significativamente mais baixos (Figura 5A). Deve-se observar que o ssGSEA fornece estimativas relativas de enriquecimento de células imunes com base em dados transcriptômicos, e não em medições diretas das proporções de células imunes. A análise de correlação revelou que os seis genes-chave exibiram padrões diferenciais de associação com subconjuntos de células imunes. Especificamente, UPP1, PRKCDBP e B4GALT2 correlacionaram-se positivamente com os níveis de infiltração de células B de memória, células dendríticas ativadas e células supressoras derivadas de mieloides (Spearman ρ > 0,4, p < 0,05), enquanto PTRF, TOR3A e FAM168B mostraram correlações negativas com células T auxiliares tipo 1 e células B ativadas (Spearman ρ < −0,3, p < 0,05). A matriz completa de correlação é apresentada no mapa de calor (Figura 5B). A análise de predição de fármacos identificou UPP1 como o único gene entre os seis candidatos com interações previstas com moléculas pequenas. Três compostos, incluindo fluorouracila, capecitabina e 5-benzilacilouridina, foram identificados no banco de dados como compostos potencialmente interagentes com UPP1 (Figura 5C). Esses compostos são principalmente utilizados em oncologia ou em contextos experimentais, e sua relevância para a DPOC exige investigação adicional. Os cálculos de energia livre de ligação revelaram que a 5-benzilacilouridina exibiu a maior afinidade de ligação, sugerindo uma afinidade de ligação prevista relativamente mais alta (Table 3). As visualizações de encaixe molecular para os três compostos indicaram conformações de ligação previstas favoráveis com UPP1, consistentes com previsões computacionais de encaixe molecular e não com validação experimental (Figura 5D–F). Adicionalmente, a análise CTD indicou que os seis genes-chave estavam fortemente associados a diversos fenótipos de doenças, incluindo efeitos tardios da exposição pré-natal, perda de peso, hepatomegalia e inflamação (Figura 5G–L).
Validação por RT-qPCR de genes diagnósticos-chave em amostras clínicas
Para validar os níveis de expressão de genes-chave, amostras de sangue foram coletadas de oito pacientes com DPOC e oito indivíduos controle, e esta análise foi considerada uma validação preliminar devido ao tamanho limitado da amostra. Conforme mostrado na Figura 6A–F, PTRF, TOR3A e FAM168B foram significativamente subexpressos, enquanto PRKCDBP e UPP1 foram significativamente superexpressos nas amostras de DPOC, o que está de acordo com as tendências observadas na análise de bioinformática. Em contraste, nenhuma diferença significativa foi observada na expressão de B4GALT2 entre os dois grupos. Essa discrepância pode ser atribuída ao tamanho limitado da amostra ou às diferenças nos tipos de amostras entre os conjuntos de dados e os espécimes clínicos.
DECLARAÇÃO DE DISPONIBILIDADE DE DADOS:
Todos os dados de sequenciamento de RNA foram obtidos do banco de dados Gene Expression Omnibus (GEO, https://www.ncbi.nlm.nih.gov), sendo o conjunto GSE54837 selecionado como conjunto de treinamento e o GSE112811 como conjunto de validação. O código utilizado nesta análise pode ser obtido em https://doi.org/10.5281/zenodo.21771476.

Figura 1: Identificação de genes sobrepostos, análise de enriquecimento e construção da rede PPI. (A) Gráfico de vulcão dos genes diferencialmente expressos (DEGs) no conjunto de dados GSE54837. (B) Seleção do limiar suave. (C) Dendrograma de agrupamento por módulos (após fusão). (D) Mapa de calor da correlação entre módulos e características. (E) Diagrama de Venn para identificação de genes sobrepostos. (F) Diagrama de ameixa-mulberry da análise de enriquecimento GO, mostrando os principais resultados de enriquecimento dos genes de interseção em MF, CC e BP. (G) Diagrama de pirulito da análise de enriquecimento de vias de sinalização KEGG, em que o tamanho da bolha representa o número de genes enriquecidos. (H) Rede PPI dos genes sobrepostos; os nós representam proteínas e as arestas representam interações proteína-proteína. Abreviações: DEGs = genes diferencialmente expressos; PPI = interação proteína-proteína; GO = Ontologia Genética; MF = função molecular; CC = componente celular; BP = processo biológico; KEGG = Enciclopédia de Genes e Genomas de Quioto; ac4C-RGs = genes relacionados à N4-acetilcitidina. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 2: Identificação de seis genes-chave na DPOC. (A) Curva de validação cruzada LASSO. (B) Diagrama do caminho dos coeficientes da regressão LASSO. À medida que λ aumenta, os coeficientes dos genes não importantes convergem para 0. (C) Classificação da importância das características pelo XGBoost. O eixo x representa o valor de ganho, o eixo y representa o nome do gene e a intensidade da cor representa a importância. (D) Classificação da importância das características pela RF. O eixo x representa a diminuição média no índice de Gini. (E) O diagrama de Venn dos genes sobrepostos obtidos pela análise cruzada dos três algoritmos. Abreviações: LASSO = operador de redução e seleção por módulo mínimo; XGBoost = reforço gradiente extremo; RF = floresta aleatória. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 3: Construção de um modelo diagnóstico e análise da expressão de genes-chave. (A) Curva ROC do conjunto de treinamento. (B) Curva ROC do conjunto de teste interno. (C) Curva ROC do conjunto de validação externa. (D) Curva de calibração do conjunto de treinamento. (E) Análise da curva de decisão (DCA) do conjunto de treinamento. (F) Curva de calibração do conjunto de validação externa. (G) Análise da curva de decisão (DCA) do conjunto de validação externa. (H) Nômograma de seis genes-chave. Para a predição do risco individual de DPOC, cada gene recebe uma pontuação correspondente. (I) Análise da expressão de seis genes-chave em amostras de DPOC e controles do conjunto de dados GSE54837. Abreviações: ROC = característica operacional do receptor; AUC = área sob a curva; DCA = análise da curva de decisão; DPOC = doença pulmonar obstrutiva crônica. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 4: Rede regulatória e significado funcional dos genes-chave na DPOC. (A) Resultados da análise GeneMANIA de 6 genes-chave. A cor das linhas indica a correlação entre os genes, e a cor dos nós indica diferentes categorias funcionais. (B) Diagrama de Venn da análise cruzada dos bancos de dados DIANA-microT e miRanda. (C) Diagrama de ameixeira da rede regulatória ceRNA. (D) Rede regulatória potencial de fatores de transcrição. Nós azuis representam fatores de transcrição e nós laranjas representam genes alvo. (E) Análise de enriquecimento GSEA de gene único para UPP1, incluindo GO. (F) Análise de enriquecimento GSEA de gene único para UPP1, incluindo KEGG. Abreviações: GO = Gene Ontology; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 5: Infiltração imune de genes-chave e predição de alvos farmacológicos na DPOC. (A) Diferenças na abundância de células imunes entre os grupos. (B) Mapa de calor da correlação entre células imunes e genes-chave. (C) Rede de interação entre genes-chave e fármacos preditos. (D) Encaixe molecular da fluorouracila com UPP1. (E) Encaixe molecular da capecitabina com UPP1. (F) Encaixe molecular do 5-benzilacilouridina com UPP1. Para cada composto, a imagem à esquerda mostra a conformação geral do encaixe, e a imagem à direita mostra as interações locais de ligação. (G) Análise CTD de B4GALT2. (H) Análise CTD de FAM168B. (I) Análise CTD de PRKCDBP. (J) Análise CTD de PTRF. (K) Análise CTD de TOR3A. (L) Análise CTD de UPP1. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 6: Validação por RT-qPCR da expressão gênica chave em amostras de DPOC e controles. (A) Expressão relativa de PTRF. (B) Expressão relativa de PRKCDBP. (C) Expressão relativa de UPP1. (D) Expressão relativa de TOR3A. (E) Expressão relativa de FAM168B. (F) Expressão relativa de B4GALT2. ns = não significativo, p > 0,05; * p < 0,05; ** p < 0,01; *** p < 0,001; **** p < 0,0001. Abreviação: RT-qPCR = reação em cadeia da polimerase quantitativa com transcrição reversa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
Figura Suplementar 1: Amostras do conjunto de dados GSE54837 e agrupamento de módulos gênicos. (A) Diagrama de agrupamento de amostras do conjunto de dados GSE54837. (B) Dendrograma de agrupamento de módulos antes da fusão. Os genes foram agrupados utilizando o método de corte de árvore dinâmico para identificar módulos distintos. (C) Dendrograma de agrupamento hierárquico de eigengenes dos módulos. Módulos com padrões de expressão semelhantes foram agrupados com base na similaridade de seus eigengenes.Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 2: Análise de enriquecimento GSEA. (A) Análise GO do PRKCDBP. (B) Análise KEGG do PRKCDBP. (C) Análise GO do PTRF. (D) Análise KEGG do PTRF. (E) Análise GO do TOR3A. (F) Análise KEGG do TOR3A. (G) Análise GO do FAM168B. (H) Análise KEGG do FAM168B. (I) Análise GO do B4GALT2. (J) Análise KEGG do B4GALT2. Abreviações: GO = Ontologia Genética; KEGG = Enciclopédia de Kyoto de Genes e Genomas.Clique aqui para baixar este arquivo.
| Conjunto de dados | Controles | Pacientes | Plataforma de sequenciamento |
| GSE54837 | 90 | 136 | GPL570 |
| GSE112811 | 44 | 20 | GPL570 |
Tabela 1: Conjuntos de dados de expressão gênica utilizados no estudo. Características dos conjuntos de dados GSE54837 e GSE112811 utilizados para o desenvolvimento/teste interno do modelo e para a validação externa, respectivamente.
| Paciente | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
| Sexo (F/M) | M | M | M | F | M | M | M | M |
| Idade (anos) | 69 | 72 | 75 | 73 | 68 | 70 | 69 | 71 |
| Estado de tabagismo | Sim | Sim | Parou de fumar (2 anos) | Não | Sim | Sim | Sim | Parou de fumar (5 anos) |
| Maços-ano | 20 por dia / 30 anos | 15 por dia / 35 anos | 20 por dia / 50 anos | | 20 por dia / 40 anos | 30 por dia / 40 anos | 15 por dia / 40 anos | 20 por dia / 30 anos |
| Grupo de DPOC | 2 | 3 | 3 | 2 | 2 | 3 | 2 | 3 |
Tabela 2: Características basais dos participantes do estudo. Características demográficas e clínicas basais dos pacientes com DPOC e controles saudáveis incluídos na validação por RT-qPCR.
| Nome molecular | Gene | Pontuação (kcal/mol) |
| 5-Benzilacilouridina | UPP1 | -9.6 |
| Capecitabina | UPP1 | -6.1 |
| Fluorouracila | UPP1 | -5.5 |
Tabela 3: Resultados da simulação de ligação molecular para UPP1 e compostos candidatos.
Resultados preditos da simulação de ligação molecular para a interação de UPP1 com fluorouracil, capecitabina e 5-benzilacilouridina, incluindo suas afinidades de ligação.