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O estudo foi realizado de acordo com a Declaração de Helsinque, e o protocolo foi aprovado pelo Comitê de Ética do Terceiro Hospital da Universidade Médica de Hebei (W2025-065-1) em novembro de 2024. O consentimento informado foi obtido de todos os participantes envolvidos no estudo.
Fonte de dados e pré-processamento
Foram obtidos dados de RNA-seq associados à HF, incluindo dois conjuntos de dados de microarranjos do Gene Expression Omnibus (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/). Dois conjuntos de dados microarray de sangue periférico foram selecionados: GSE59867 (34 amostras de IC e 30 controles) foi usado como conjunto de dados de treinamento; GSE57338 (177 amostras HF e 136 controles) foi usado como conjunto de dados de validação. As informações clínicas disponíveis para GSE57338, incluindo idade, gênero e estado da doença, foram retiradas do GEO e estão resumidas na Tabela Suplementar 1. Além disso, um total de 3.893 genes relacionados à SUMOilação (SRGs) foram obtidos do banco de dados dbPTM (https://awi.cuhk.edu.cn/dbPTM/index.php) (Tabela Suplementar 2), enquanto 2.030 genes relacionados a mitocôndrias (MRGs) foram coletados com base em um estudoanterior 24 (Tabela Suplementar 3). Em seguida, o pacote R GEOquery (v 2.72.0)25 foi usado para baixar conjuntos de dados do banco de dados GEO, extrair a matriz de expressão e obter as informações do fenótipo da amostra. A anotação era realizada mapeando o arquivo de anotação e comparando os IDs de genes. Identificações genéticas inválidas foram removidas, e as sondas mais expressas foram mantidas.
Seleção de genes-chave via aprendizado de máquina
Uma abordagem em múltiplas etapas foi usada para selecionar os genes relacionados à HF, SUMOilação e mitocôndrias. Primeiro, os genes comuns entre o conjunto de dados de treinamento, os SRGs e os MRGs foram identificados por meio de análise de interseção. A função potencial dos genes comuns foi identificada pela análise de enriquecimento da Gene Ontology (GO) e da Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) usando o pacote R ClusterProfiler (v 4.12.6)26. Depois, três abordagens de aprendizado de máquina, a saber, regressão LASSO, XGBoost e floresta aleatória (RF), foram empregadas para filtrar ainda mais os genes. Na regressão LASSO, o parâmetro ótimo de regularização λ foi selecionado por meio de validação cruzada para identificar as características genéticas com maior valor preditivo. Os genes com coeficientes não nulos foram selecionados para análises subsequentes. Depois, algoritmos XGBoost e RF foram usados para calcular as pontuações de importância das características e triar os 20 genes principais.
Construção e avaliação de modelos diagnósticos
Um modelo diagnóstico foi construído usando regressão logística baseado no conjunto de dados GSE59867. O modelo foi então aplicado para prever o status da doença e calcular escores de probabilidade. Para validar o modelo, os mesmos genes-chave foram extraídos do conjunto de dados GSE57338, normalizados para corresponder ao conjunto de dados de treinamento e usados para previsão externa. O desempenho do modelo foi avaliado usando curvas de Característica de Operação do Receptor (ROC), Matriz de Confusão, Curva de Calibração e Análise de Curva de Decisão (DCA).
Análise de enriquecimento de conjuntos gênicos (GSEA) e localização subcelular
A análise de correlação de Spearman foi usada para identificar genes correlacionados para cada gene-chave. A análise GSEA foi realizada usando o pacote R ClusterProfiler (v 4.12.6) nos genes relacionados aos genes-chave. Enquanto isso, para determinar a localização subcelular precisa dos genes-chave dentro da célula, sua localização subcelular foi determinada usando o banco de dados GeneCards (https://www.genecards.org/).
Associação gene-doença e previsão de fármacos
Para avaliar a relevância clínica dos genes-chave identificados, foram realizadas análises sistemáticas de associação de doenças e interações medicamentosas. As associações doença-gene foram analisadas usando o Banco de Dados Comparativo de Toxicogenômica (CTD; https://ctdbase.org/), com resultados classificados tanto por escores de inferência quanto por contagem de referências (as 10 principais associações relatadas). Os dados de interação gênico-fármaco para genes-chave foram obtidos do banco de dados Drug-Gene Interaction (DGIdb), e os medicamentos foram excluídos com base em um escore de interação < 0,5. Posteriormente, baixamos as estruturas 3D das proteínas correspondentes a genes-chave do banco de dados PDB (https://www.rcsb.org/) e as estruturas moleculares de potenciais medicamentos do PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/). Em seguida, foi realizada uma análise de acoplamento molecular usando CB-Dock227 (https://cadd.labshare.cn/cb-dock2/php/index.php) para calcular as pontuações de ligação entre os potenciais fármacos e proteínas. Uma energia livre de ligação menor indica uma interação mais estável, sugerindo que o composto pode ter maior potencial de direcionamento.
Análise de infiltração imune
A infiltração de células imunes foi avaliada usando três métodos complementares: contador de populações celulares de microambiente (MCP-contador)28, identificação de tipos celulares estimando subconjuntos relativos de transcritos de RNA (CIBERSORT)29 e análise de enriquecimento por amostra única (ssGSEA)30. A análise por contador MCP e CIBERSORT foi realizada usando o pacote R IOBR (v 0.99.0)31. O contador MCP foi usado para estimar a abundância de células imunes e estromais, enquanto o CIBERSORT foi usado para quantificar as proporções relativas de 22 tipos de células imunes. O ssGSEA foi realizado usando o pacote GSVA (v1.52.3)32 para avaliar o enriquecimento em nível amostral de subtipos de células imunológicas.
Construção da rede reguladora concorrente de RNA endógeno (ceRNA)
Para investigar os possíveis papéis regulatórios do miRNA–lncRNA associados a genes-chave previamente identificados, foi construída uma rede reguladora de ceRNA. O pacote R multiMiR (v 1.26.0)33 foi usado para prever potenciais interações microRNA (miRNA)–mRNA para genes-chave, integrando dados do PITA (https://omictools.com/pita-tool/) e do banco de dados miRDB (https://mirdb.org/). Pares miRNA–mRNA com alta confiança e consistência foram selecionados. Posteriormente, as interações lncRNA–miRNA foram recuperadas do banco de dados StarBase (https://rnasysu.com/encori/) e filtradas para interações suportadas por ≥ 10 experimentos CLIP-seq e categorizadas como lincRNAs. Uma rede de ceRNA foi construída integrando interações lncRNA-miRNA-mRNA.
Validação qPCR
Para validar a expressão dos genes-chave, amostras de sangue de pacientes com IC e controles saudáveis foram coletadas da coorte clínica (n = 6 por grupo) no Terceiro Hospital da Universidade Médica de Hebei (W2025-065-1) sob protocolos aprovados e consentimento informado. O RNA total foi isolado usando o reagente TRIzol em conjunto com clorofórmio e isopropanol. Após a extração, o RNA foi dissolvido em água tratada com DEPC, e sua concentração e pureza foram avaliadas usando um espectrofotômetro NanoDrop. Para análise transcricional, o RNA foi transcrito reversamente em cDNA usando a Mistura Rápida de Síntese de CDNA de Primeira Fita para RT (com dsDNase). A PCR quantitativa foi posteriormente realizada usando o Fast Taq qPCR SYBR Green Mix. As sequências específicas de estúdios são detalhadas na Tabela de Materiais. Os níveis relativos de expressão gênica foram calculados usando o método 2-ΔΔCT , com a normalização adequada.
Análise estatística
Todas as análises estatísticas foram realizadas usando o software R e o GraphPad Prism. Comparações estatísticas entre dois grupos independentes foram realizadas usando o teste t de Student ou o teste U de Mann-Whitney, dependendo da distribuição dos dados. Um valor p inferior a 0,05 foi considerado indicativo de significância estatística.