Identificação e anotação funcional de genes coexpressos em cuproptose e ferroptose
Quatro conjuntos de dados de treinamento, compreendendo 421 amostras de UC e 97 controles saudáveis, foram integrados. Um total de 551 genes diferencialmente expressos, incluindo 362 genes superexpressos e 189 genes subexpressos, foram identificados. A análise de correlação gerou 444 genes correlacionados à ferroptose–cuproptose, e a interseção com os genes diferencialmente expressos resultou em 32 genes diferencialmente expressos coexpressos à cuproptose–ferroptose (CF-DEGs).
Os 32 CF-DEGs foram enriquecidos em respostas a lesões, íons cobre, transporte de ácidos graxos, lipopolissacarídeo, doença inflamatória intestinal, sinalização NF-κB, sinalização TNF e ferroptose (Supplementary Table 4).
Priorização de biomarcadores centrais por meio de aprendizado de máquina integrado e WGCNA
A análise de rede de coexpressão gênica ponderada (WGCNA) identificou MEpurple, MEbrown e MEblack como os módulos mais fortemente associados à DC. Juntos, os módulos selecionados continham 1.426 genes (Supplementary Table 5).
O operador de seleção e redução por mínimos absolutos (LASSO), a máquina de vetores de suporte com eliminação recursiva de características (SVM-RFE) e a floresta aleatória selecionaram 21, 32 e 19 características, respectivamente. Treze genes foram compartilhados pelos três modelos. A integração do consenso de aprendizado de máquina, do núcleo de interação proteína-proteína classificado pelo CytoHubba e dos módulos WGCNA selecionados resultou em cinco biomarcadores candidatos associados à colite ulcerativa: LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 e CD274.
Avaliação diagnóstica e enriquecimento de vias da assinatura de biomarcadores
Todos os cinco biomarcadores candidatos foram positivamente correlacionados e regulados para cima na DC na coorte de treinamento (Figura 2A, B). Cada marcador alcançou uma área sob a curva característica de operação do receptor > 0,80 na coorte de treinamento e > 0,75 na coorte de validação independente GSE47908 (Figura 2C–E).
O nômograma de cinco genes apresentou boa calibração, com um valor de P de Hosmer–Lemeshow > 0,05 e erro médio absoluto < 0,1, além de boa discriminação na coorte analisada, com uma área sob a curva e índice de concordância de 0,945 e um intervalo de confiança de 95% para o índice de concordância de 0,922–0,968 (Figura 3).
A análise de enriquecimento de conjuntos de genes associou os cinco candidatos às vias de sinalização JAK–STAT, interferon–RIPK1/3 e receptor tipo Toll–NF-κB (Figura 4).

Figura 2: Expressão dos biomarcadores candidatos e desempenho diagnóstico. (A) Mapa de calor de correlação. (B, C) Expressão dos biomarcadores e curvas de característica operacional do receptor na coorte de treinamento. (D, E) Expressão dos biomarcadores e curvas de característica operacional do receptor na coorte de validação GSE47908. ROC: característica operacional do receptor; AUC: área sob a curva; UC: colite ulcerativa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 3: Desenvolvimento e avaliação do nomograma para colite ulcerativa. (A) Nomograma de cinco genes. (B) Gráfico de calibração. (C) Curva característica de operação do receptor. ROC: característica de operação do receptor; UC: colite ulcerativa; AUC: área sob a curva; C-index: índice de concordância. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 4: Análise de enriquecimento de conjuntos de genes dos cinco biomarcadores candidatos. (A–E) Resultados da análise de enriquecimento de conjuntos de genes para LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 e CD274, respectivamente. GSEA: análise de enriquecimento de conjuntos de genes. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
Análise da paisagem do microambiente imune e da rede regulatória
As amostras de RC mostraram proporções aumentadas de neutrófilos, linfócitos T CD4⁺ de memória ativados, macrófagos M1 e mastócitos ativados, com diminuições recíprocas em macrófagos M2, mastócitos em repouso e células dendríticas em repouso. Esses padrões foram reproduzidos na coorte de validação (Figura 5A–E).
Os cinco candidatos apresentaram correlação positiva com neutrófilos, linfócitos T CD4⁺ de memória ativados e macrófagos M1, e correlação inversa com mastócitos em repouso e macrófagos M2 (Figura 5F–J). A rede gênica de miRNA continha 98 nós e 146 arestas. hsa-miR-34a-5p e hsa-miR-16-5p apresentaram a maior conectividade como biomarcadores, enquanto AR e RELA foram os fatores de transcrição mais conectados (Figura 6).

Figura 5: Análise de infiltração imune. (A) Composição de células imunes. (B) Diferenças entre grupos nas proporções de células imunes. (C) Mapa de calor de correlação entre células imunes. (D, E) Infiltração de células imunes nas coortes de treinamento e validação. (F–J) Correlações entre biomarcadores candidatos e populações de células imunes. UC: colite ulcerativa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 6: Redes preditas de microRNA e fatores de transcrição. (A) Rede gene–microRNA. Círculos indicam biomarcadores candidatos e quadrados indicam microRNAs. (B) Rede fator de transcrição–gene. Losangos indicam biomarcadores candidatos e triângulos invertidos indicam fatores de transcrição. microRNA: microRNA; TF: fator de transcrição. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
Dinâmica de expressão espaciotemporal em resolução de única célula
Após o controle de qualidade, 31.712 células formaram 22 agrupamentos que foram anotados como nove populações celulares principais (Figura 7A–C). As proporções de células epiteliais e plasmáticas foram maiores na colite ulcerativa (UC). LCN2 e NOS2 estavam enriquecidos nas células epiteliais, enquanto IDO1, CXCL2 e CD274 estavam enriquecidos nas células mieloides (Figura 7D–G).
A subagrupamento de células epiteliais identificou 11 subconjuntos, com expansão de colonócitos inflamatórios e enriquecimento de LCN2 e NOS2 nesse subconjunto (Figura 8). O subagrupamento de células mieloides identificou sete subconjuntos, com aumento de monócitos, redução de macrófagos e enriquecimento de IDO1, CXCL2 e CD274 nos monócitos (Figura 9).
Os colonócitos inflamatórios acumularam-se tardiamente na trajetória epitelial, com aumento da expressão de LCN2 e NOS2 (Figura 10). Os monócitos exibiram uma trajetória distinta associada à RC, com expressão dinâmica de IDO1, CXCL2 e CD274 (Figura 11).
Os colonócitos inflamatórios apresentaram a sinalização de saída mais intensa e uma comunicação proeminente com monócitos. O par ligante–receptor APP–CD74 foi o principal entre esses subconjuntos (Figura 12).

Figura 7: Expressão de biomarcadores candidatos entre populações celulares. (A) Agrupamentos celulares. (B) Marcadores de anotação. (C) Nove populações celulares anotadas. (D, E) Distribuições e proporções celulares em amostras saudáveis e de colite ulcerativa. (F, G) Expressão de biomarcadores candidatos visualizada por UMAP e gráfico de bolhas. UC: colite ulcerativa; UMAP: uniform manifold approximation and projection. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 8: Subagrupamento de células epiteliais e expressão de candidatos. (A) Agrupamentos iniciais de células epiteliais. (B) Marcadores de anotação. (C) Subconjuntos de células epiteliais anotados. (D) Proporções dos subconjuntos em amostras saudáveis e de colite ulcerativa. (E) Expressão de LCN2 e NOS2 nos subconjuntos de células epiteliais. t-SNE: incorporação estocástica de vizinhos com distribuição t; UC: colite ulcerativa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 9: Subagrupamento de células mieloides e expressão de candidatos. (A) Agrupamentos iniciais de células mieloides. (B) Marcadores de anotação. (C) Subconjuntos de células mieloides anotados. (D) Proporções de subconjuntos em amostras saudáveis e de DC. (E) Expressão de IDO1, CXCL2 e CD274 nos subconjuntos de células mieloides. t-SNE: incorporação estocástica de vizinhos com distribuição t; DC: colite ulcerativa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 10: Análise de pseudotempo em células epiteliais. (A) Trajetória de pseudotempo e atribuições de estado. (B) Distribuição de células epiteliais saudáveis e de colite ulcerativa ao longo da trajetória. (C) Dinâmica de expressão de LCN2 e NOS2 ao longo do pseudotempo. UC: colite ulcerativa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 11: Análise de pseudotempo de células mieloides. (A) Trajetória de pseudotempo e atribuições de estado. (B) Distribuição de células mieloides saudáveis e de colite ulcerativa ao longo da trajetória. (C) Dinâmica de expressão de IDO1, CXCL2 e CD274 ao longo do pseudotempo. UC: colite ulcerativa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 12: Comunicação epitelial–mieloide. (A) Número e intensidade de interações. (B) Intensidades de sinalização de saída e de entrada. (C) Interações envolvendo colonócitos inflamatórios. (D) Mapa de calor da intensidade da comunicação. (E) Pares ligante–receptor envolvendo colonócitos inflamatórios. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
in vitro validação experimental de intervenções na ferroptose e cuproptose
A exposição ao lipopolissacarídeo (LPS) reduziu a viabilidade das células Caco-2 e aumentou a expressão de IL-6 e IL-1β em relação ao controle com veículo (Figura 13A–C e Figura Suplementar 5).
O LPS aumentou os níveis de Fe2⁺, malondialdeído e a abundância de RNA mensageiro de LCN2, IDO1, CXCL2 e NOS2, enquanto o ferrostatina-1 reverteu cada alteração associada ao LPS (Figura 13D–I). Para as comparações entre LPS e LPS + ferrostatina-1, os valores exatos de P bicaudais variaram de 9,45 × 10⁻5 a 0,0027 após a média das réplicas técnicas dentro de cada réplica biológica.
O LPS reduziu a viabilidade e aumentou a IL-6, IL-1β, FDX1/DLAT, CD274 e a fluorescência sensível ao cobre, enquanto a tetratiomolibdata reverteu essas alterações (Figura 14 A–E). Para as comparações entre LPS e LPS + tetratiomolibdata, os valores P exatos bicaudais variaram de < 1 × 10⁻15 a 0,0008.
Em conjunto, as análises identificaram cinco candidatos diagnósticos associados à colite ulcerativa, localizaram sua expressão em populações epiteliais e mieloides e mostraram que LCN2, IDO1, CXCL2 e NOS2 responderam à inibição da ferroptose, enquanto CD274 respondeu à quelacão de cobre em células Caco-2.

Figura 13: O ferrostatina-1 atenua alterações associadas ao LPS relacionadas à inflamação e à ferroptose em células Caco-2. (A) Viabilidade celular. (B, C) Expressão de RNA mensageiro de IL-6 e IL-1β. (D, E) Níveis intracelulares de malondialdeído e Fe2⁺. (F–I) Expressão de RNA mensageiro de LCN2, IDO1, CXCL2 e NOS2. As réplicas técnicas em triplicata foram médias dentro de cada réplica biológica independente; as barras de erro indicam o desvio padrão. Os números disponíveis de réplicas biológicas foram: Controle n = 4 em A e C, Controle n = 2 em F, e n = 6 para todas as outras combinações de painel/grupo. Os valores exatos de P bicaudais e as verificações de pressupostos estão relatados na Tabela Suplementar 5. Fer-1: ferrostatina-1; LPS: lipopolissacarídeo; MDA: malondialdeído. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 14: O tetratiomolibdato atenua alterações inflamatórias e relacionadas à cuproptose associadas ao LPS em células Caco-2. (A) Viabilidade celular. (B, C) Expressão de RNA mensageiro de IL-6 e IL-1β. (D) Expressão de RNA mensageiro de FDX1 e DLAT. (E) Expressão de RNA mensageiro de CD274. (F) Fluorescência intracelular de Cu2⁺; barra de escala = 50 µm. As réplicas técnicas triplas foram médias dentro de seis réplicas biológicas independentes por grupo; as barras de erro indicam o desvio padrão. Os valores de P exatos bicaudais e as verificações de pressupostos estão relatados na Tabela Suplementar 5. TTM: tetratiomolibdato; LPS: lipopolissacarídeo. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
Os dados brutos e processados, scripts de análise e planilhas-fonte dos experimentos com células estão disponíveis publicamente em https://doi.org/10.5281/zenodo.21202720.
Figura Suplementar 1: Pré-processamento de dados e diagnósticos de expressão diferencial. (A–F) Distribuições das amostras antes (A–C) e após (D–F) a correção de lote. (G) Gráfico de vulcão dos genes diferencialmente expressos. (H) Mapa de calor dos padrões de expressão normalizados. DEGs: genes diferencialmente expressos; GEO: Gene Expression Omnibus.Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 2: Análise de enriquecimento dos CF-DEGs. (A) Enriquecimento da Ontologia Genética. (B) Enriquecimento do Enciclopédia de Kyoto de Genes e Genomas. CF-DEGs: genes diferencialmente expressos coexpressos por cuproptose-ferroptose; GO: Ontologia Genética; KEGG: Enciclopédia de Kyoto de Genes e Genomas.Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura suplementar 3: Diagnósticos de triagem do WGCNA. (A) Seleção do limiar suave. (B) Agrupamento de eigengenes de módulo. (C) Dendrograma gene-módulo. (D) Associações entre módulo e característica. (E–G) Relações entre significância gênica e pertencimento ao módulo para os módulos roxo, marrom e preto. WGCNA: análise de rede de coexpressão gênica ponderada; UC: colite ulcerativa.Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura suplementar 4: Triagem multietapas de biomarcadores. (A, B) Seleção de características pelo LASSO. (C, D) Seleção de características pelo SVM-RFE. (E, F) Classificação de características pela floresta aleatória. (G) Consenso entre os três modelos. (H, I) Rede de interação proteína-proteína e nós centrais do CytoHubba. (J) Integração dos resultados de aprendizado de máquina, WGCNA e PPI. (K) Localizações cromossômicas dos cinco candidatos. LASSO: operador de redução e seleção absoluta mínima; SVM-RFE: eliminação recursiva de características por máquina de vetores de suporte; RF: floresta aleatória; PPI: interação proteína-proteína; WGCNA: análise de rede de coexpressão gênica ponderada.Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 5: Validação do modelo de LPS em células Caco-2. (A) Viabilidade celular. (B, C) Expressão de RNA mensageiro de IL-6 e IL-1β. As réplicas técnicas triplas foram médias de seis réplicas biológicas independentes por grupo; as barras de erro indicam o desvio padrão. LPS: lipopolissacarídeo.Clique aqui para baixar este arquivo.
Tabela Suplementar 1: Conjuntos de dados GEO utilizados para descoberta e validação. Números de acesso dos conjuntos de dados, plataformas, composição das amostras e atribuições das coortes para os conjuntos de dados GEO incluídos nas análises de descoberta e validação. GEO: Gene Expression Omnibus.Clique aqui para baixar este arquivo.
Tabela Suplementar 2: Sequências dos iniciadores para PCR quantitativa de transcrição reversa. Sequências de iniciadores utilizadas na análise por PCR quantitativa de transcrição reversa dos genes avaliados neste estudo.Clique aqui para baixar este arquivo.
Tabela Suplementar 3: Detalhes estatísticos para as Figuras 13, 14 e a Figura Suplementar 1. Números de réplicas biológicas, verificações de pressupostos, métodos de análise estatística e valores P exatos para as comparações experimentais indicadas.Clique aqui para baixar este arquivo.
Tabela Suplementar 4: Genes diferencialmente expressos coexpressos em cuproptose e ferroptose. Lista de GD-EDC identificados pela interseção entre genes correlacionados à ferroptose e cuproptose e genes diferencialmente expressos.Clique aqui para baixar este arquivo.
Tabela Suplementar 5: Genes nos módulos WGCNA selecionados para triagem de biomarcadores. Lista de genes contidos nos módulos WGCNA selecionados para a triagem subsequente de biomarcadores. WGCNA: análise de rede de coexpressão gênica ponderada.Clique aqui para baixar este arquivo.