A transcrição por descoberta identifica um amplo programa de expressão associado à UDM
O conjunto GSE199939 serviu como a coorte de descoberta e incluiu 10 amostras de UDF e 11 amostras controle (Figura 1A). A análise de componentes principais da expressão normalizada por VST mostrou separação clara entre os grupos; os componentes principais 1 e 2 explicaram 34,8% e 15,1% da variância total, respectivamente (Figura 1B).
Utilizando |log2 da razão de expressão| > 1 e p ajustado por BH < 0,05, a análise de expressão diferencial identificou 3.691 genes diferencialmente expressos (GDEs), incluindo 1.247 genes superexpressos em DFU e 2.444 genes subexpressos em DFU (Figura 1C). Os 50 principais GDEs formaram um padrão de expressão fortemente estruturado por grupos (Figura 1D). Dentre os seis genes selecionados posteriormente, MMP1 apresentou a maior alteração na coorte de descoberta (log2 da razão de expressão = 9,854; p ajustado = 1,24 × 10-29).
Um módulo de coexpressão associado a UDF converge com DEGs e genes relacionados à NDP
A WGCNA foi realizada nos 5.000 genes mais variáveis transformados por VST. Uma potência de limiarização suave de 18 foi selecionada para a rede sinalizada, equilibrando o ajuste à topologia livre de escala e a conectividade (Figura 2A). A clusterização hierárquica e a detecção dinâmica de módulos identificaram múltiplos módulos de coexpressão (Figura 2B). O módulo azul apresentou a associação positiva mais forte com DFU (Pearson r = 0,97, p = 5 × 10-13; Figura 2C). Resumos correspondentes de controle de qualidade da clusterização de amostras e do tamanho do módulo estão fornecidos na Figura Suplementar 1A,B.
Dentro do módulo azul, 689 genes atenderam aos critérios de hub |MM| > 0,8 e |GS| > 0,5 (Figura 2D). A interseção entre os 3.691 genes diferencialmente expressos (DEGs), os 689 genes centrais do módulo azul e os 1.062 genes relacionados à DPN resultou em 77 genes candidatos compartilhados (Figura 2E). Uma visualização simplificada da rede de genes centrais do módulo azul e as estatísticas de hub de maior classificação são apresentadas na Figura Suplementar 2A,B.
A seleção de características por múltiplos métodos prioriza seis genes, mas mostra superajuste na coorte de descoberta
Os 77 genes interseccionais foram analisados por LASSO, floresta aleatória e SVM-RFE. O LASSO manteve sete genes na penalidade selecionada: MMP1, MMP13, TRPV2, CCL7, AURKA, MKI67 e CHEK1 (Figura 3A). A filtragem por floresta aleatória manteve 41 genes com importância igual ou acima da média, incluindo cinco membros do painel final entre as características mais altamente classificadas (Figura 3B). O SVM-RFE produziu uma AUC de 1,00 para cada subconjunto aninhado avaliado; segundo a regra de empate de tamanho mínimo, CHEK1 foi selecionado como o subconjunto de um gene (Figura 3C), levantando preocupações sobre sobreajuste e avaliação otimista na coorte de descoberta. As expressões correspondentes na coorte de descoberta, bem como os mapas de calor e as curvas ROC, são mostrados na Figura Suplementar 3A–C.
Nenhum gene foi selecionado pelos três métodos. A retenção de genes apoiados por pelo menos dois métodos resultou em CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 e TRPV2 (Figura 3D). A anotação GO desses seis genes destacou a desmontagem da matriz extracelular, processos catabólicos e metabólicos de colágeno, cromossomo condensado e funções relacionadas à metaloendopeptidase (todos com p ajustado por BH < 0,05; Figura 3E). A análise KEGG identificou sinalização da interleucina-17 (IL-17) (CCL7/MMP1/MMP13; p ajustado = 1,81 × 10-4) e sinalização da relaxina (MMP1/MMP13; p ajustado = 0,0175; Figura 3F). Esses resultados de enriquecimento foram utilizados para caracterizar as funções biológicas representadas pelo painel de seis genes.
Avaliação entre conjuntos de dados mostra apoio heterogêneo para MMP1
Na matriz combinada GSE68183/GSE80178 (9 UDC e 6 controles), CCL7, MMP1, e MMP13 diferiram entre os grupos após a correção de BH ao longo dos seis genes (ajustado p = 0,0168, 0,0159 e 0,0431, respectivamente; Figura 4A). CHEK1, MKI67, e TRPV2 não atingiu o limiar de significância ajustado (ajustado p = 0,259, 0,680 e 0,259). A análise ROC de um único gene produziu AUCs de 0,944 para CCL7 (95% IC, 0,825–1,000), 0,704 para CHEK1 (0,403–1,000), 0,574 para MKI67 (0,243–0,905), 0,981 para MMP1 (0,930–1,000), 0,870 para MMP13 (0,686–1,000) e 0,722 para TRPV2 (0.447–0.997; Figura 4B). Esses valores de ROC foram considerados exploratórios porque o procedimento de mesclagem e correção de lote não foi totalmente documentado.
Em GSE134431 (13 amostras de UDF e 8 amostras de SDF não ulceradas), a expressão de MMP1 foi maior em UDF do que em SDF no teste de Wilcoxon ao nível de significância nominal (p = 0,0225), embora essa associação não tenha permanecido significativa após correção BH (p ajustado = 0,135; Figura 4C). Os outros cinco genes não mostraram diferenças significativas entre os grupos. MMP1 também apresentou a maior AUC descritiva, com um valor de AUC de 0,808 (IC 95%, 0,589–1,000), enquanto as AUCs dos outros candidatos variaram de 0,529 a 0,635 (Figura 4D). No geral, MMP1 exibiu o padrão descritivo mais consistente entre os seis candidatos, mas a replicação estatística foi incompleta.
A análise de célula única localiza MMP1 predominantemente nos fibroblastos
O conjunto de dados de célula única continha 69.944 células provenientes de 24 amostras (14 úlceras do pé diabético e 10 controles) e compreendia 10 tipos celulares anotados (Figura 5A). A visualização de características por UMAP localizou a expressão de MMP1 em regiões celulares restritas, ao invés de mostrar uma expressão uniforme ao longo do atlas (Figura 5B). No geral, 3.799 células (5,43%) apresentaram expressão normalizada de MMP1 maior que zero. Os fibroblastos exibiram a maior expressão média normalizada (0,181) e a maior fração geral de células positivas para MMP1 (7,88%; Figura 5C).
No nível da amostra, a expressão média de MMP1 foi maior nas amostras de UDF do que nas amostras de controle em queratinócitos, fibroblastos e células endoteliais. Após a correção de BH em todos os tipos celulares testados, cada uma dessas comparações apresentou um valor p ajustado de 0,0214 (queratinócitos: 9 amostras de controle e 14 de UDF; fibroblastos: 10 e 14; células endoteliais: 10 e 14; Figura 5D). A fração positiva para MMP1 aumentou de 5,86% para 9,29% em fibroblastos, de 0,026% para 6,68% em queratinócitos e de 0,29% para 2,67% em células endoteliais (Figura 5E).
As correlações entre pontuações de módulos por célula foram modestas. A maior correlação positiva foi observada para a pontuação do módulo de senescência/fenótipo secretório associado à senescência (SASP) (rho de Spearman = 0,274), seguida pela remodelação da matriz extracelular (rho = 0,240), ferroptose (rho = 0,197) e ativação de fibroblastos (rho = 0,170; Figura 5F). A comparação entre fibroblastos MMP1-altos e MMP1-baixos mostrou enriquecimento em termos relacionados à organização da matriz extracelular, organização da estrutura extracelular, organização de fibrilas de colágeno, processamento de glicoproteínas e dobramento de proteínas (Figura 5G). Esses achados descritivos associaram o estado de fibroblastos MMP1-altos a processos relacionados à remodelação da matriz. São fornecidos, em Figura Suplementar 4A–C, UMAP em nível de grupo, resumos de amostras de todos os tipos celulares e contexto de pontuações funcionais. As associações em nível individual não foram consideradas evidência independente do doador.
A cobertura da rede prioriza ingredientes vinculados à MMP1 e ervas candidatas
A tabela filtrada de relações ingrediente-herbal-alvo continha 561 registros únicos associando 99 ervas, 14 ingredientes e cinco dos seis alvos candidatos. MMP1 foi o alvo mais frequente, com 156 registros, seguido por CHEK1 (120), MMP13 (102), MKI67 (100) e TRPV2 (83; Figura 6A). Entre os ingredientes, a quercetina e a luteolina apresentaram a maior cobertura de ervas, estando ligadas a 83 e 62 ervas, respectivamente. A berberina foi associada a 10 ervas; esses três ingredientes foram utilizados como ingredientes principais na regra de priorização (Figura 6B).
O escore de cobertura classificou Guanhuangbo, Mahuang e Niuxi conjuntamente nas posições mais altas (escore = 38 cada; Figura 6C). Cada um cobriu todos os cinco alvos disponíveis e continha dois ingredientes associados ao MMP1. A matriz ingrediente-alvo mostrou que a quercetina proporcionou a cobertura mais ampla entre os alvos analisados, enquanto a luteolina e a berberina forneceram conectividade adicional centrada no MMP1 (Figura 6D). Uma rede focada conectou as principais plantas medicinais aos ingredientes representativos e aos cinco alvos disponíveis (Figura 6E). Esses resultados identificaram combinações erva-ingrediente-alvo com alta cobertura no banco de dados para avaliação adicional. Matrizes complementares de cobertura erva-alvo e ingrediente principal são apresentadas na Figura Suplementar 5A,B.
Ensaios preliminares com tecidos pareados mostram maior abundância de mRNA e proteína da MMP1
A avaliação por Western blot mostrou maior abundância de MMP1 em espécimes de UDF do que em seus espécimes correspondentes de pele perilesional não ulcerada (Figura 7A,B). As três pares correspondentes apresentaram uma diferença média de 0,3553 no índice MMP1/cofilina (DFU menos perilesional) (IC 95%, 0,1959–0,5147; teste t pareado bicaudal, t(2) = 9,592, p = 0,0107). As medições pareadas de cada paciente estão apresentadas na Figura 7B. Após a média de cinco poços técnicos por gene por espécime, a qPCR mostrou maior abundância normalizada de mRNA de MMP1 em cada um dos quatro espécimes de UDF em comparação com seus espécimes perilesionais correspondentes (Figura 7C). A diferença média dentro do paciente no ΔCq (DFU menos perilesional) foi de −2,6035 (IC 95%, −2,8024 a −2,4046; teste t pareado bicaudal, t(3) = −41,663, p = 3,04 × 10−5), correspondendo a um aumento médio geométrico de 6,08 vezes (IC 95%, 5,30–6,98). Essas observações baseadas em pequenas amostras são preliminares e não estabelecem um efeito funcional.
Nas descobertas e nos conjuntos de dados externos em lote, MMP1 apresentou o padrão descritivo mais consistente entre os seis genes priorizados, embora a replicação estatística tenha sido incompleta. Os resumos de célula única mostraram a expressão média mais elevada em fibroblastos, e as medições pareadas de WB de três pacientes e medições pareadas de qPCR de quatro pacientes mostraram maior abundância de MMP1. Essas observações sustentam MMP1 como um candidato associado à UDF para investigação adicional. O fluxo de trabalho geral de avaliação computacional a tecidual é resumido na Figura Suplementar 6.
DISPONIBILIDADE DE DADOS:
Os conjuntos de dados transcriptômicos públicos estão disponíveis no NCBI Gene Expression Omnibus mediante os números de acesso GSE199939, GSE68183, GSE80178, GSE134431 e GSE165816. Os scripts disponíveis para análise e geração de figuras, tabelas de expressão e resultados processados, tabelas-fonte quantitativas para figuras, tabelas de saída estatística, a pasta original de qPCR e o projeto do instrumento, bem como as imagens fornecidas de western blot sem recorte estão incluídos no Arquivo Suplementar 1. O arquivo também contém metadados celulares extraídos e histórico de comandos do objeto de célula única recuperado, relatórios de verificação de tipo matricial e um manifesto de arquivos. O Arquivo Suplementar 1 mantém arquivos-fonte históricos e inclui uma pasta R2_Updates contendo as tabelas-fonte revisadas de ensaios pareados, saídas estatísticas, código para geração de figuras e inventário de parâmetros corrigido. O RDS completo analisado do Seurat é identificado na documentação do arquivo, mas não está incorporado neste ZIP suplementar. O histórico completo de mesclagem em lote, as configurações originais de filtragem e anotação de células únicas e os detalhes completos da subtração de fundo original nos blots e da quantificação por faixa não estão totalmente disponíveis; essas limitações são descritas no protocolo e na discussão. O RDS recuperado localmente não foi depositado em um repositório público.

Figura 1: A transcriptômica de descoberta identifica um programa de expressão associado à UPD. (A) Visão geral do fluxo de trabalho computacional, compreendendo a construção do conjunto gênico DPN e a análise de descoberta em GSE199939, integração de rede e aprendizado de máquina, avaliação em massa e de célula única, e predição de ingredientes-alvo-ervas na MTC. (B) Análise de componentes principais de perfis de expressão com transformação estabilizadora da variância (GSE199939) provenientes de 10 amostras de UPD e 11 controles. As elipses indicam regiões de grupo com 90%; os percentuais denotam a variância explicada por cada componente. (C) Gráfico de vulcão com os resultados da análise de expressão diferencial pelo DESeq2 para UPD versus controle. Pontos vermelhos e ciano indicam genes superexpressos em UPD e controle, respectivamente, utilizando |log2 razão de variação| > 1 e p ajustado por BH < 0,05; pontos cinza não atenderam a ambos os limiares. (D) Mapa térmico de escores z por linha dos 50 genes com menores valores ajustados de p. As colunas são amostras biológicas e a barra de anotação indica o grupo. DEGs, genes diferencialmente expressos; UPD, úlcera do pé diabético; DPN, neuropatia periférica diabética; VST, transformação estabilizadora da variância. A avaliação experimental final é descrita no protocolo e na Figura 7. qPCR, reação em cadeia da polimerase quantitativa; MTC, medicina tradicional chinesa; RF, floresta aleatória; LASSO, operador de seleção e redução absoluta mínima; SVM-RFE, eliminação recursiva de características por máquina de vetores de suporte. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 2: A WGCNA e o conhecimento prévio sobre DPN convergem em 77 genes candidatos. (A) Avaliação do limiar suave da rede com sinal para os 5.000 genes mais variáveis transformados por VST. A potência selecionada foi beta = 18; a linha tracejada marca o ajuste alvo de topologia livre de escala de 0,85. (B) Dendrograma gênico por ligação média com atribuições dinâmicas de cores por módulo. (C) Correlações de Pearson entre eigengenes dos módulos e a característica binária de DFU. Cada célula mostra o coeficiente de correlação e o valor p bicaudal correspondente; a cor indica direção e magnitude. (D) Significância gênica para DFU versus pertencimento ao módulo no módulo azul. Pontos azuis satisfazem |pertencimento ao módulo| > 0,8 e |significância gênica| > 0,5; n = 689 genes centrais. (E) Interseção entre três conjuntos: 3.691 DEGs, 689 genes centrais do módulo azul e 1.062 genes relacionados à DPN, resultando em 77 candidatos comuns. DFU, úlcera do pé diabético; DPN, neuropatia periférica diabética; GS, significância gênica; MM, pertencimento ao módulo; WGCNA, análise de rede de coexpressão gênica ponderada. A coorte de descoberta continha 21 amostras (10 DFU e 11 controles). A anotação da Figura 2D utiliza |MM| > 0,8 e |GS| > 0,5, compatível com o critério de valor absoluto verificado no código original de seleção. Clique aqui para visualizar uma versão ampliada desta figura.

Figura 3: A priorização de características por múltiplos métodos resulta em um painel de seis genes. (A) Curva de validação cruzada cinco vezes para regressão LASSO binomial. Linhas tracejadas verticais indicam lambda.min e lambda.1se; as características não nulas selecionadas foram tomadas em lambda.1se, exceto quando essa penalidade não resultou em nenhuma característica. (B) Diminuição média no índice de Gini na floresta aleatória para os 20 genes mais bem classificados a partir de um modelo com 1.000 árvores. Barras vermelhas identificam membros do painel final de seis genes; a linha tracejada marca a importância média usada como limiar de retenção em todo o conjunto candidato. (C) AUC da validação cruzada leave-one-out (LOOCV) com SVM linear com eliminação recursiva de características (SVM-RFE) ao longo de subconjuntos aninhados de características. Todos os tamanhos de subconjunto produziram AUC = 1,00; CHEK1 foi selecionado pela regra do menor tamanho em caso de empate, indicando superajuste na coorte de descoberta. (D) Matriz de suporte dos métodos para CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 e TRPV2. Pontos indicam seleção por LASSO, floresta aleatória ou SVM-RFE; a última coluna indica o número de métodos que os apoiaram. (E) Termos selecionados da Ontologia de Genes enriquecidos entre os seis genes. A posição do ponto mostra a razão gênica, as etiquetas dos pontos indicam o número de genes mapeados, a cor mostra -log10 do valor p ajustado por Benjamini-Hochberg (BH) e a faixa lateral denota a ontologia. (F) Vias KEGG enriquecidas entre os genes mapeados. A posição do ponto mostra o enriquecimento relativo, os rótulos do tamanho dos pontos indicam a contagem de genes mapeados e a cor distingue as vias. O enriquecimento exigiu valor p nominal < 0,05 e valor p ajustado por BH < 0,05. AUC, área sob a curva ROC; BH, Benjamini-Hochberg; BP, processo biológico; CC, componente celular; KEGG, Enciclopédia de Kyoto de Genes e Genomas; LOOCV, validação cruzada leave-one-out; SVM-RFE, eliminação recursiva de características por máquina de vetores de suporte. LASSO, operador de contração absoluta mínima e seleção. Os painéis A–D utilizam as 21 amostras de descoberta (10 úlceras de pé diabético e 11 controles). No painel A, as barras de erro indicam o erro padrão do erro de validação cruzada. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 4: Avaliação transcriptômica em larga escala entre conjuntos de dados do painel de seis genes. (A) Expressão dos seis genes na matriz mesclada GSE68183/GSE80178 (6 controles e 9 amostras de DFU). (B) Curvas ROC correspondentes por gene individual com valores de AUC; os intervalos de confiança de 95% estão fornecidos na tabela de dados brutos. Como a mesclagem inicial e a correção de lote não foram totalmente documentadas, esses resultados foram interpretados como exploratórios. (C) Expressão log2(RPKM + 1) em GSE134431 (8 amostras de DFS diabético sem úlcera e 13 amostras de DFU). (D) Curvas ROC e valores de AUC correspondentes por gene individual. Em (A) e (C), as caixas indicam a mediana e o intervalo interquartílico, os traços (whiskers) se estendem até 1,5 vez o intervalo interquartílico e os pontos representam as amostras biológicas. Asteriscos indicam significância nominal pelos testes de soma de postos de Wilcoxon bicaudais (*p < 0,05, **p < 0,01); os valores de p ajustados por BH para os seis genes estão relatados no texto e na tabela de dados brutos. A direção ROC foi selecionada automaticamente pelo pROC. AUC, área sob a curva característica de operação do receptor; DFS, pele diabética do pé sem úlcera; DFU, úlcera do pé diabético; RPKM, leituras por quilobase por milhão de leituras mapeadas; ROC, característica de operação do receptor. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 5: A localização em nível de célula única associa MMP1 a sinais de remodelamento por fibroblastos e da matriz. (A) UMAP de 69.944 células provenientes de 24 amostras (10 controles e 14 amostras de DFU), colorido conforme as 10 anotações de tipos celulares derivadas do SingleR. (B) Gráficos de características UMAP mostrando a expressão normalizada de MMP1 em células controle e DFU. (C) Resumo por tipo celular da expressão média normalizada de MMP1; o tamanho dos pontos e as legendas indicam a fração total de células positivas para MMP1, definida como expressão normalizada > 0. (D) Expressão média de MMP1 em nível de amostra em células endoteliais, fibroblastos e queratinócitos. As caixas indicam a mediana e o intervalo interquartil; os pontos representam as amostras biológicas. Testes de soma de postos de Wilcoxon bicaudais foram seguidos por correção BH em todos os tipos celulares testados. Os números disponíveis de amostras foram 10 controles e 14 DFU para células endoteliais e fibroblastos, e 9 controles e 14 DFU para queratinócitos. (E) Frações de células positivas para MMP1 por grupo e tipo celular. (F) Correlações de Spearman por célula entre a expressão de MMP1 e os escores de módulos funcionais. (G) Enriquecimento em processos biológicos GO entre genes superexpressos em fibroblastos com alta expressão de MMP1 versus fibroblastos com baixa expressão de MMP1. BH, Benjamini-Hochberg; DFU, úlcera do pé diabético; ECM, matriz extracelular; GO, Ontologia Genética; HSC, células-tronco hematopoiéticas; UMAP, projeção uniforme de variedade e aproximação de múltiplas dimensões. As correlações por célula e o enriquecimento condicionado à expressão nos painéis F e G são descrições exploratórias, sem inferência confirmatória ajustada para identificação de doadores. A independência em nível de amostra exige verificação dos identificadores de doadores. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 6: Previsão baseada em cobertura de ingrediente-alvo-erva da medicina tradicional chinesa centrada na MMP1. (A) Número de registros filtrados da base de dados de ervas-ingrediente-alvo para cada alvo candidato disponível. (B) Número de ervas ligadas aos ingredientes mais frequentes; o tom verde-azulado indica ingredientes ligados à MMP1. (C) Principais ervas classificadas pelo escore de cobertura; as barras douradas indicam os três maiores escores empatados. (D) Matriz ingrediente-alvo para ingredientes representativos de alta cobertura. Os valores nas células mostram o número de ervas ligadas; células vazias indicam ausência de registro na tabela de relações filtradas. (E) Rede detalhada conectando ervas, ingredientes e alvos candidatos representativos de alta classificação. A cor dos nós indica o tipo de entidade; as arestas cinzas entre erva e ingrediente indicam contenção e as arestas verde-azuladas entre ingrediente e alvo indicam ligações na base de dados. A tabela de relações filtradas continha 561 registros únicos, 99 ervas, 14 ingredientes e cinco alvos com ligações qualificadas; CCL7 é exibido como um sexto nó candidato isolado. TCM, medicina tradicional chinesa. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

Figura 7: Avaliação preliminar por qPCR e western blot de tecidos de pacientes quanto à expressão de MMP1 em UFDC. (A) Western blot representativo previamente fornecido mostrando a abundância proteica de MMP1 em tecidos perilesionais não ulcerados e em UFDC, com cofilina como controle de carga. (B) Proporções de MMP1 em relação à cofilina recuperadas do projeto original de plotagem. Os símbolos indicam medições biológicas individuais de três pares de pacientes; linhas conectam espécimes perilesionais e de UFDC correspondentes. O teste t pareado bicaudal resultou em t(2) = 9,592 e p = 0,0107. (C) Abundância relativa de mRNA de MMP1 em quatro pares de pacientes confirmados pelos autores: NC–UFDC, NC1–UFDC1, NC2–UFDC2 e NC3–UFDC3. Cinco poços técnicos de ACTB e cinco poços técnicos de MMP1 foram médias separadamente dentro de cada espécime antes do cálculo de ΔCq. A expressão relativa foi calculada pelo método 2−ΔΔCq, utilizando a média de ΔCq perilesional como calibrador comum. Cada símbolo representa um espécime biológico; linhas conectam tecidos emparelhados. O teste t pareado bicaudal utilizou valores de ΔCq em nível de espécime (t(3) = −41,663; p = 3,04 × 10−5), não as mudanças de dobra em poços técnicos. Nenhum asterisco de significância foi utilizado. Poços técnicos não são réplicas biológicas. Controle denota tecido perilesional não ulcerado. Cq, ciclo de quantificação. Os valores de p para o tecido e ensaio são nominais e exploratórios. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.
| Gene | Acesso RefSeq | Primer direto de 5 linha a 3 linha | Primer reverso de 5 linha a 3 linha |
| MMP1 | NM_002421 | ATGAAGCAGCCCAGATGTGGAG | TGGTCCACATCTGCTCTTGGCA |
| ACTB | NM_001101.5 | CACCATTGGCAATGAGCGGTTC | AGGTCTTTGCGGATGTCCACGT |
Tabela 1: Sequências dos primers para validação da PCR quantitativa de MMP1. São apresentadas as sequências oligonucleotídicas direta e reversa (5′–3′) e os acessos aos transcritos RefSeq do NCBI para MMP1 humano (NM_002421) e ACTB (NM_001101.5). ACTB (β-actina) foi utilizada como gene de referência para a expressão relativa de MMP1.
Figura Suplementar 1: Resumos de controle de qualidade da WGCNA. (A) Agrupamento hierárquico por ligação média das amostras do GSE199939 com base nos 5.000 genes com maior variabilidade transformados para estabilização da variância. Os rótulos das amostras são coloridos por grupo; a linha horizontal tracejada representa o guia da altura do dendrograma no percentil 95, usado para avaliação visual de valores atípicos. (B) Número de genes atribuídos a cada módulo da WGCNA. As barras em verde-azulado indicam os oito módulos não cinzentos que atendem ao critério de associação com UFD; as barras cinzentas indicam os demais módulos. UFD, úlcera do pé diabético; VST, transformação para estabilização da variância; WGCNA, análise de rede de coexpressão gênica ponderada. Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 2: Suporte à coexpressão do módulo azul. (A) Rede de coexpressão simplificada dos 25 genes centrais do módulo azul com as classificações mais altas. Entre as correlações aos pares com |r| > 0,70, a rede exibida contém a união dos dois vínculos mais fortes de cada gene. O tamanho do nó indica o grau dentro dessa rede exibida e esparsificada, e o preenchimento do nó indica a significância do gene para úlcera do pé diabético (DFU). (B) Significância do gene e pertencimento ao módulo azul para os 15 principais genes centrais. O subconjunto de arestas foi selecionado para melhorar a legibilidade e não representa todas as correlações qualificadas. DFU, úlcera do pé diabético; GS, significância do gene; MM, pertencimento ao módulo. Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 3: Gráficos de aprendizado de máquina da coorte de descoberta interna. (A) Expressão padronizada de CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 e TRPV2 na coorte de descoberta GSE199939. As caixas mostram a mediana e o intervalo interquartil, e os pontos representam as amostras biológicas. (B) Mapa de calor por amostra com escores z em linha para os mesmos seis genes. As etiquetas curtas das amostras estão associadas aos identificadores GEO na chave de dados de origem. (C) Curva ROC do modelo ajustado da coorte de descoberta multigênica. A AUC de 1,00 foi obtida ajustando e avaliando o modelo nas mesmas 21 amostras, indicando superajuste na coorte de descoberta. AUC, área sob a curva característica de operação do receptor; ROC, característica de operação do receptor. A coorte de descoberta continha 21 amostras (10 DFU e 11 controles). Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 4: Contexto de expressão em nível de célula única. (A) UMAP de 69.944 células coloridas por grupo controle e DFU. (B) Expressão média de MMP1 no nível de amostra biológica em todas as 10 anotações de tipo celular; os pontos representam amostras, e o eixo x utiliza uma transformação de raiz quadrada para exibição. (C) Mapa de calor com escores de módulos funcionais resumidos ao longo das células dentro de cada tipo celular anotado e padronizados dentro de cada módulo. DFU, úlcera do pé diabético; UMAP, aproximação uniforme de variedade e projeção. Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 5: Matrizes de cobertura de apoio da MTC. (A) Contagem de registros de herbáceas-alvo na base de dados para as 18 herbáceas com maior classificação com cobertura associada ao MMP1 e os cinco alvos candidatos representados na tabela de relações filtrada. (B) Contagem de registros na base de dados que associam as mesmas herbáceas aos ingredientes principais quercetina, luteolina e berberina. Os valores nas células indicam registros únicos na base de dados após a deduplicação. MTC, medicina tradicional chinesa. Clique aqui para baixar este arquivo.
Figura Suplementar 6: Fluxo de trabalho computacional e avaliação tecidual. O esquema resume a entrada para a descoberta, a interseção DEG/WGCNA, a seleção exploratória de características, a avaliação externa em bulk, o contexto em célula única, a extensão TCM e a avaliação da expressão tecidual pareada. A qPCR utilizou quatro pares de pacientes pareados e o western blotting utilizou três pares de pacientes pareados. As contagens de candidatos e os resultados computacionais relatados foram mantidos da análise original. A entrada em TPM no fluxo de trabalho de descoberta baseado em contagem, os registros incompletos de pré-processamento originais em célula única e os pequenos grupos de ensaios teciduais permanecem como limitações. O esquema não implica que as análises de descoberta tenham sido revalidadas. Clique aqui para baixar este arquivo.
Tabela Suplementar 1: Inventário de softwares, bancos de dados, parâmetros e limitações de análise. Esta pasta de trabalho documenta 26 etapas de análise, incluindo a etapa de análise, ferramenta ou banco de dados, versão informada, entrada, principais parâmetros, saída e informações ausentes ou limitações. Abrange transcriptômica de descoberta, WGCNA, triagem gênica e seleção de características, enriquecimento, análises externas de bulk e de célula única, análise de rede de MTC e relatórios de tecido-assay. A tabela registra as informações metodológicas disponíveis e não estabelece por si só reprodutibilidade independente. Clique aqui para baixar este arquivo.
Arquivo Suplementar 1: Dados, código de análise, fonte das figuras e arquivo de fonte do ensaio. Este arquivo contém os scripts disponíveis para análise e geração de figuras, tabelas de expressão e resultados processados, figuras quantitativas e dados brutos estatísticos, a pasta de trabalho original de qPCR e o projeto do instrumento, imagens brutas não recortadas de western blot fornecidas, metadados e histórico de comandos de célula única extraídos, relatórios de verificação em formato matricial e um manifesto de arquivos. Arquivos históricos são preservados; a pasta R2_Updates fornece a análise corrigida de ensaios pareados, fontes atualizadas das figuras e inventário revisado de parâmetros. Clique aqui para baixar este arquivo.