Indução e Manutenção da Anestesia

A escolha adequada dos anestésicos para cirurgia e outros procedimentos potencialmente dolorosos deve ser determinada por um veterinário. Isso se baseia em inúmeros aspectos, incluindo a extensão e duração do procedimento, a espécie e a cepa, a idade e o estado fisiológico do animal.

Anestésicos estão disponíveis como inalantes ou injetáveis. A anestesia cirúrgica pode ser realizada usando uma combinação de anestésicos injetáveis e inaulantes. ²

1. Indução da anestesia ininhada

A anestesia ininhada inclui isoflurano, sevoflurano e desflurano, com isoflurano sendo usado mais comumente. Esses anestésicos são usados com mais frequência porque, com eles, é mais fácil controlar a profundidade da anestesia. A indução da anestesia usando anestésicos de inalação pode ser realizada com um frasco de sino ou uma câmara de indução que é instalada em um vaporizador de precisão.

1. Jarra de sino
   1. Equipamento: Um pote de sino ou frasco de profanação com uma plataforma perfurada de cerâmica ou plástico, uma bola de algodão, um anestésico líquido (isoflurane, sevoflurano ou desflurano), e um capuz de fumaça ventilado ao ar livre.
   2. Preparação
      1. Use o frasco de sino sob um capô, e não no banco, para evitar a exposição de pessoal a gases anestésicos.
      2. Monte o pote de sino com a plataforma na parte inferior, criando um espaço entre a parte inferior do frasco e a plataforma. Isso é necessário para evitar que o animal entre em contato com anestésico líquido.
      3. Usando luvas de nitrito ou outras luvas impermeáveis, saturar a bola de algodão com anestésico.
      4. Coloque a bola de algodão sob a plataforma no pote do sino.
      5. Fixar a tampa no pote do sino para evitar a fuga do vapor anestésico.
   3. Indução
      1. Coloque o animal no pote do sino deslizando a tampa para um lado.
      2. Uma vez que o animal esteja no frasco, será necessário observar sua atividade e respiração para determinar a profundidade da anestesia.
      3. O animal está exposto ao anestésico, para efeito.
      4. Uma vez que o animal esteja totalmente anestesiado, deslize a tampa para um lado, deixando um espaço suficiente para permitir a introdução de uma mão. Segure a cauda, o escroto ou o corpo do animal anestesiado, e remova-o suavemente do frasco do sino.
2. Vaporizadores de precisão
   Vaporizadores de precisão podem ser usados com uma câmara de indução ou uma máscara facial. A máquina anestésico deve ser inspecionada antes de cada procedimento. O anestésico adequado deve ser adicionado se os níveis estiverem baixos. O sistema de limpeza deve ser verificado para garantir que os gases de resíduo sejam totalmente removidos. Para sistemas passivos de anestesia de gás residuais, o recipiente de limpeza deve ser pesado para determinar se ainda é eficaz. Geralmente, um aumento de peso de 50 gramas acima do peso inicial é o ponto em que o recipiente é gasto.
   1. Equipamento
      1. Uma câmara de indução, um vaporizador de precisão, uma unidade de coleta de gás residuais (passiva ou ativa), e um anestésico líquido (isoflurane, sevoflurano ou desflurano, conforme determinado pelo tipo de vaporizador em uso).
   2. Preparação
      1. Monte a câmara de indução de tal forma que a entrada seja do vaporizador e a saída seja para o sistema de limpeza de gás residuais.
   3. Indução
      1. Coloque o animal na câmara de indução. Algumas câmaras têm uma tampa deslizante, e outras têm uma tampa articulada que trava.
      2. Uma vez que o animal está na câmara, o fluxo de oxigênio é iniciado e o vaporizador de precisão é ligado a um nível de indução de 3-4 para isoflurane. Níveis mais baixos de entrega de anestésicos resultarão em um tempo de indução mais longo.
      3. O animal está exposto ao anestésico, para efeito.
      4. Uma vez que o animal esteja totalmente anestesiado, lave a câmara com oxigênio antes de remover o animal para evitar a exposição do pessoal a gases anestésicos. Se a câmara de indução for colocada em um capô de fumaça, não é necessário lavar com oxigênio para limpar o anestésico da câmara antes da abertura.
      5. Segure a cauda, o escroto ou o corpo do animal anestesiado, e remova-o suavemente da câmara.
3. Máscara facial
   1. O equipamento inclui um cone ou máscara de nariz de roedor, um vaporizador de precisão, uma unidade de limpeza de gás residuais (passiva ou ativa), e um anestésico líquido (isoflurano, sevoflurano ou desflurano, conforme determinado pelo tipo de vaporizador em uso).
   2. Preparação
      1. Monte o cone do nariz ou máscara de tal forma que a entrada seja do vaporizador, e a saída é para o sistema de limpeza de gás de resíduo.
      2. As máquinas anestésicos de roedores geralmente têm um alternador para mudar a entrega de vapor anestésico da câmara de indução para o cone ou máscara do nariz do roedor. Certifique-se de que está devidamente configurado para a entrega anestésico do cone do nariz.
   3. Indução
      1. Como os gases anestésicos têm um cheiro desagradável, muitos animais se oporão a serem mascarados por indução. O método preferido é usar a caixa de indução seguida de manutenção com o cone do nariz. Uma vez que o nariz ou rosto do animal esteja firmemente na máscara, o fluxo de oxigênio é iniciado e o vaporizador de precisão é ligado a um nível de indução de 5 para isoflurane. Níveis mais baixos de entrega de anestésicos resultarão em um tempo de indução mais longo e um aumento na luta do animal.
      2. É imprescindível que o animal seja monitorado para respiração, pois uma compreensão muito firme durante a indução pode resultar em asfixia.
      3. Assim que o animal começa a relaxar, o nariz ou a face podem ser ajustados no cone ou máscara do nariz, e a entrega anestésico é reduzida a um nível de manutenção de 1,5-0,5 para isoflurano uma vez que o relaxamento completo é alcançado.

2. Indução de anestesia usando anestésicos injetáveis

Anestésicos injetáveis são principalmente uma mistura de cetamina e sedativos ou relaxantes musculares.

As combinações comuns são: 1) Coquetel de roedores, que consiste em cetamina (100 mg/ml), xilazina (20 mg/ml), acepromazina (10 mg/ml) e soro fisiológico estéril (0,9% NaCl); 2) cetamina/xilazina 2:1, que consiste em cetamina (100 mg/ml), xilazina (20 mg/ml) e soro fisiológico estéril (0,9% NaCl); e 3) ketamina/xilazina Mouse Mix, que consiste em cetamina (100 mg/ml), xilazina (20 mg/ml) e soro fisiológico estéril (0,9% NaCl). Ao usar o combo cetamina/xilazina, o reforço só deve ser feito com cetamina, não xilazina, devido à meia-vida dessas drogas.

A combinação de cetamina com sedativos e/ou relaxantes musculares precisa ser preparada como uma solução de estoque a partir da qual doses individuais podem ser extraídas. Os agentes devem ser precisamente medidos e diluídos com soro fisiológico estéril para garantir que as doses adequadas sejam administradas aos animais. Como a cetamina é uma substância controlada, a quantidade usada das garrafas deve ser notada em um "Registro controlado de drogas", e as misturas devem ter "Troncos de Substâncias Controladas" individuais. Ao preparar misturas, adicione a cetamina lentamente à garrafa, pois tende a espumar se injetada com força. Uma garrafa estéril de 20 ml é usada para a mistura. As garrafas devem ser devidamente rotuladas com o nome dos compostos, a data mista, a data de validade, o número do lote de cetamina (por ser uma substância controlada) e a dosagem sugerida. A data de validade pode ser determinada até a data do que o ingrediente expira (depende das regras/diretrizes da instalação/estado). Para um registro preciso de cetamina, tanto a garrafa vazia quanto a garrafa cheia devem ser pesadas. Em seguida, os pesos devem ser registrados no rótulo da mistura e na folha de registro de substâncias controladas individual que é preparada para cada garrafa. Armazene misturas de cetamina em uma área escura e controlada pela temperatura para manter a potência.

1. Preparação do Coquetel de Roedores
   1. O equipamento para preparação da solução anestésico inclui seringas de 3 cc, uma seringa de 12 cc, Agulhas de 22 g x 1", 1,8 cc de cetamina injetável 100 mg/ml, 1,8 cc de xylazina injetável 20 mg/ml, 0,6 cc de acepromazina injetável 10 mg/ml, 15,8 cc de soro fisiológico estéril para injeção e um rótulo anestésico.
   2. Elas desenhe 15,8 cc de soro fisiológico e injete na garrafa. Use a seringa de 12 cc e uma seringa de 3 cc e elimine bolhas de ar para medições precisas.
   3. Adicione a cetamina, xilazina e acepromazina à garrafa.
2. Indução do Coquetel de Roedores
   1. Em geral, o Coquetel de Roedores é usado para anestesia de rato. Devido à variação em resposta ao Coquetel de Roedores em ratos adultos, é melhor usado em ratos com menos de 5 semanas de idade. O Coquetel de Roedores pode ser usado em conjunto com anestesia de inalação, especialmente em ratos.
   2. O Coquetel de Roedores é geralmente dado aos camundongos de acordo com o peso, usando o seguinte cálculo: (BW x 10) - 50 = microliters Rodent Cocktail a ser dado. Isso vai variar de acordo com a tensão, idade e estado de saúde.
   3. Esta solução só é dada intraperitonealmente. Se injetado intramuscularmente, pode haver uma reação severa no tecido.
3. Preparação de cetamina/xilazina 2:1
   1. O equipamento para a preparação da solução anestésico inclui seringas de 3 cc, agulhas de 22 g x 1", 10 cc de ketamina injetável 100 mg/ml, 5 cc de xylazina injetável 20 mg/ml, uma garrafa de 20 ml estéril e um rótulo anestésico.
   2. Adicione a cetamina e xilazina à garrafa.
4. Indução
   1. A cetamina/xilazina 2:1 é usada para anestesia para ratos, podendo ser usada em conjunto com anestesia por inalação.
   2. A cetamina/xilazina 2:1 é geralmente dada a partir de uma dose de 0,3 cc e aumentada em 0,02 cc com eventos anestésicos subsequentes. Isso vai variar de acordo com a tensão, idade e estado de saúde.
   3. A cetamina/xilazina 2:1 só é dada intramuscularmente.
5. Preparação de ketamina/mistura de rato de xilazina
   1. O equipamento Ketamine/xilazine Mouse Mix necessário para a preparação da solução anestéstica inclui seringas de 3 cc, Agulhas de 22 g x 1", 3,6 cc de cetamina injetável 100 mg/ml, 0,4 cc de xylazina injetável 20 mg/ml, salina estéril de 16 cc (0,9% NaCl), uma garrafa estéril de 20 ml e um rótulo anestésico.
   2. Adicione a cetamina e xilazina à garrafa, fazendo uma solução 9:1 de cetamina à xilazina.
   3. Adicione o soro fisiológico à garrafa, resultando em uma mistura de 1:4 de cetamina/xilazina 9:1 à solução salina.
6. Indução de cetamina/mistura de rato de xilazina
   1. O ketamina/xilazina mouse Mix também pode ser usado em conjunto com anestesia de inalação.
   2. A mistura de rato de cetamina/xilazina é geralmente dada aos camundongos de acordo com o peso, usando o seguinte cálculo: (BW x 10) - 50 = microliters ketamina/xilazine Mouse Mix a ser dado. Isso vai variar de acordo com a tensão, idade e estado de saúde.
   3. A mistura de rato de cetamina/xilazina pode ser dada intraperitoneally.

3. Avaliação da anestesia

A profundidade anestésico pode ser avaliada testando a resposta a vários estímulos. O movimento voluntário resultará de estímulos físicos do corpo. Consulte a Tabela 1 para obter uma lista de métodos físicos utilizados para avaliação de profundidade anestésica.

Método	Procedimento	Resposta
Beliscão do dedo do dedo do	Estenda a perna e isole a teia entre os dedos dos pés. Esta área é firmemente beliscada usando as unhas ou fórceps atraumáticas.	Um reflexo positivo é indicado pela retração da perna ou pela retirada do pé. O animal não está em um plano cirúrgico de anestesia se houver movimento de perna ou corpo, vocalização ou aumento acentuado de respirações.
Pinça de cauda	A ponta da cauda é beliscada usando os dedos ou fórceps atraumáticas.	Uma reação positiva é indicada por contração ou movimento da cauda. O animal não está em um plano cirúrgico de anestesia se houver movimento da cauda, vocalização ou aumento acentuado das respirações.
Beliscão de ouvido	Usando os dedos ou fórceps atrauáticos, aperte a ponta do pinna.	Uma reação positiva é balançar a cabeça ou o movimento dos bigodes para a frente. Se houver movimento da cabeça, bigodes, vocalização ou aumento acentuado das respirações, o animal não está em um plano cirúrgico de anestesia.
Reflexo palpebral	Usando uma ponta de dedo, toque no canthus medial (canto interno) do olho.	Um reflexo positivo é indicado por um piscar de olhos em resposta ao toque nas pálpebras. Se houver movimento das pálpebras, bigodes ou aumento acentuado das respirações, o animal não está em um plano cirúrgico de anestesia.
Reflexo corneal	Usando um aplicador de ponta de algodão, toque suavemente na córnea (globo ocular).	Uma resposta positiva é indicada por um piscar de olhos. Se houver movimento das pálpebras, bigodes ou aumento acentuado das respirações, o animal não está em um plano suficientemente profundo de anestesia cirúrgica.

Mesa 1. Métodos de estímulo físico para avaliar a profundidade anestésico. ²

Também devem ser utilizados indicadores fisiológicos como frequência cardíaca, frequência respiratória, pressão arterial, cor da membrana mucosa e tempo de recarga capilar. Embora observações gerais possam ser úteis para detectar alterações na taxa respiratória dos animais, para utilizar a frequência cardíaca ou pressão arterial para avaliação de profundidade, é necessário equipamento especializado. Se um eletrocardiograma estiver disponível, a taxa e a força dos batimentos cardíacos podem ser medidas. Para medir a pressão arterial, há uma variedade de dispositivos que são instalados sobre a cauda ou mesmo sobre todo o corpo. Os estímulos físicos descritos na Tabela 1 causarão um aumento em todos esses três parâmetros.

A cor das membranas mucosas, olhos, orelhas, boca, nariz, ânus e, em menor grau, as patas e cauda são observadas para mudanças. As áreas devem ser rosadas, indicando respiração adequada e função cardíaca. Quando o animal se move para a anestesia estágio IV, as respirações cessam, resultando em cianose indicada por uma cor azul ou cinza para as membranas mucosas e pele circundante.

O tempo de recarga capilar é definido como a quantidade de tempo necessário para a cor retornar a uma cama capilar externa depois de ter sido branqueada pela aplicação da pressão sobre a área. Um pau aplicador ou um dedo é pressionado sobre as gengivas, pinna ou camas de unha dos animais anestesiados. O número de segundos que leva para a área branca voltar a uma cor rosa não deve ser superior a 1-2 segundos. Um tempo de recarga prolongado sugere uma redução na frequência cardíaca ou força das contrações cardíacas, indicando que o animal pode ser muito profundamente anestesiado e perto da morte.

É importante utilizar vários parâmetros diferentes para avaliar a profundidade anestésica. Usar o mesmo dedo do dedo ou ouvido para pitadas repetidas irá dessensibilizar a área, e a resposta será reprimida e não dará uma avaliação precisa da profundidade anestésico. Use locais alternativos para avaliações de pinça dos dedos e ouvidos. A profundidade anestésico deve ser reavaliada a cada 10-30 minutos durante a cirurgia. ²

Estudos têm demonstrado que há alterações cardiorrespiratórias em um animal anestesiado. Enquanto anestesiados com drogas injetáveis, os animais experimentam uma taxa respiratória estável; no entanto, demonstram variabilidade na produção cardíaca. A resposta aos anestésicos injetáveis tem sido relatada variando muito entre diferentes cepas, portanto é difícil padronizar a dosagem. ⁷ Agentes ininhalantes tendem a diminuir a taxa respiratória, mas têm um impacto menor no sistema cardiovascular. Como a dosagem da anestesia ininhada é facilmente ajustada ao longo da duração do procedimento, muitas vezes é o método preferido.