Necropsia diagnóstica e coleta de tecidos

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Diagnostic Necropsy and Tissue Harvest

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18:52 min
April 30, 2023

Visão Geral

Fonte: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Universidade de Notre Dame, IN

Muitos experimentos em animais dependem de pontos de tempo finais de coleta de dados que são coletados a partir da colheita e teste de órgãos e tecidos. O uso de métodos adequados para a coleta de órgãos e tecidos pode impactar a qualidade das amostras e a análise dos dados coletados para o teste dos tecidos. O método de eutanásia do animal também pode impactar a qualidade das amostras. Este manuscrito vai delinear técnicas adequadas de necropsia para ratos.

Princípios

O método de eutanásia mais usado para camundongos e ratos é uma overdose de gás dióxido de carbono (CO2). De acordo com a American Veterinary Medical Association (AVMA), o uso de CO2 é aceitável com condições que minimizam a aversão e a angústia. 1 Os animais são deixados em sua gaiola de origem, que é colocada em uma câmara. O CO2 é introduzido gradualmente na câmara a uma taxa de deslocamento de 10% a 30% do volume da câmara/min, o que faz com que os animais percam a consciência antes da percepção da dor associada à ativação do nociceptor por ácido carbônico. O fluxo é então mantido na câmara uma vez que ocorreu parada respiratória para garantir que o animal esteja morto. Uma overdose de anestesia inalante também é aceitável, especialmente para projetos que requerem o uso de tecido pulmonar, pois o CO2 causa danos ao tecido pulmonar. A exsanguinação do animal também pode ser necessária para alguns experimentos para reduzir o volume de sangue nos tecidos.

O registro preciso de todos os achados é essencial durante uma necropsia. Deve-se iniciar um formulário que registra um histórico completo do animal, incluindo identificação animal, sexo, condições de moradia, data de nascimento, data de nascimento, número do estudo/número do protocolo e o nome do Pesquisador Principal. Um exame interno grosseiro é realizado à medida que as cavidades corporais são expostas para revelar os órgãos internos. Qualquer anormalidade óbvia deve ser notada. 2

A necropsia e a colheita de tecidos devem ser iniciadas imediatamente após a eutanásia do animal, pois o vazamento bacteriano do trato intestinal pode confundir alguns ensaios. Os órgãos internos devem ser observados a partir da cavidade abdominal e movendo-se para a cavidade torácica. Antes de remover qualquer amostra de tecido, é importante observar os órgãos in situ. 2 A colheita de órgãos e tecidos para exame histológico requer que os tecidos estejam devidamente preparados. As amostras de tecido para histologia devem ser de 0,5-1 cm de espessura para permitir a penetração suficiente da solução fixa. A fixação preserva tecidos biológicos que previnem a decomposição, a autolise e a putrefação. Também interrompe qualquer reação bioquímica em curso e pode aumentar a resistência mecânica ou estabilidade dos tecidos tratados. O objetivo amplo da fixação tecidual é preservar células e componentes teciduais para permitir a preparação de seções finas e manchadas. Salvo especificação em contrário, a fixação mais usada é a formalina com tamponador neutro de 10%. A formalina com 10% de buffer neutro está comercialmente disponível nos principais fornecedores. 3

Figure 1
Figura 1. Órgãos abdominais e torácciis de uma ratazana fêmea.

Figure 2
Figura 2. Órgãos abdominais e torácficos de um rato macho.

Procedimento

1. Exame externo

Um exame externo grosseiro do corpo, que inclui inspeção visual do corpo para lesões e massas, deve ser realizado como etapa inicial em uma necropsia. O casaco de cabelo deve ser examinado para áreas de queda de cabelo. Os dentes e unhas são avaliados para crescimento ou desgaste excessivos. Qualquer mancha da pele na boca, nares, olhos, aberturas anais e genitais deve ser notada. Testes de fita, raspagem de pele e exames de pele devem ser realizados para detectar parasitas externos (veja procedimentos abaixo).

  1. Teste de fita
    1. O equipamento necessário para um teste de fita inclui luvas, uma tira de fita celofane clara, um slide de microscópio de vidro e uma tesoura.
    2. Luvas são sempre usadas ao manusear a fita, pois o adesivo levantará óleos e células da pele dos dedos, obscurecendo achados ou causando confusão ao avaliar o slide.
    3. Corte um pedaço de fita ligeiramente mais estreito que a largura, e mais curto que o comprimento do slide do microscópio.
    4. Pressione cuidadosamente o lado pegajoso da fita para o ânus e área circundante, e remova-a rapidamente.
    5. Usando a extremidade oposta da fita, pressione-a entre as omoplatas e remova-a rapidamente.
    6. Aplique a fita no slide do microscópio.
    7. O teste de fita está pronto para exame microscópico. Os ovos parasitas são visíveis na ampliação 4X, mas devem ser examinados com ampliação de 10X para identificar adequadamente a espécie.
    8. É importante evitar tocar no lado adesivo da fita. A fita levantará detritos das mãos enluvadas e dificultará a leitura do slide.
  2. Raspagem de pele
    1. O teste de raspagem da pele é realizado em qualquer área de alopecia, lesões cutâneas ou excoração.
    2. O equipamento necessário para raspagem da pele é um escorregador de microscópio de vidro limpo, óleo mineral e uma espátula metálica ou lâmina de bisturi.
    3. Coloque algumas gotas de óleo mineral no deslizamento do microscópio.
    4. Belisque a pele em uma dobra na borda da lesão ou área de interesse.
    5. Coloque uma pequena quantidade de óleo mineral na pele.
    6. Coloque a borda da espátula ou lâmina de bisturi na pele e raspe contra a direção do crescimento capilar.
    7. Continue raspando até que uma pequena quantidade de vermelhidão seja visível na pele.
    8. Coloque o cabelo e o tecido raspados da superfície da pele no óleo na lâmina do microscópio. Se necessário, espalhe o material para que seja distribuído uniformemente no óleo.
    9. O slide está pronto para ser examinado sob o microscópio. Se desejar, uma mancha de cobertura pode ser aplicada à queda de óleo no slide. Examine o slide na ampliação 4X e 10X.
  3. Exame de pele
    1. O exame de pele é o último exame externo realizado; no entanto, é realmente feito após o exame interno ser concluído.
    2. O animal é colocado em uma placa de vidro ou plástico de Petri depois de todas as amostras internas de órgãos terem sido coletadas.
    3. O prato é colocado em uma geladeira por 15 minutos.
    4. Após 15 minutos, o prato é colocado sob um microscópio dissecando e a pele é examinada para parasitas externos. A maioria dos ácaros de pele se movem para as extremidades dos cabelos e são facilmente observados.

2. Exame interno bruto da cavidade abdominal

  1. Extirparecendo a pele
    1. Um pequeno corte é feito apenas antes da pelve em fêmeas e acima do prepuce em machos.
    2. O corte da pele é estendido ao queixo.
    3. Dissecção cega é usada para soltar a pele da fáscia e músculo.
    4. Os cortes transversais são feitos anteriores aos membros traseiros e posteriores aos membros da primeira. Deve-se tomar cuidado para não cortar os vasos sanguíneos na área axilar.
    5. Use dissecção contundente para expor a área cervical e o tórax. Devem ser exercidos cuidados extras para evitar a ruptura dos vasos jugular e carótida no pescoço.
  2. Glândulas mamárias
    1. Nas fêmeas, examine o tecido mamário para procurar massas, descoloração ou anormalidades.
    2. Lactante ou fêmeas grávidas terão aumento do volume de tecido mamário, e o leite pode estar presente.
    3. O tecido mamário é encontrado desde o topo do esterno no manúbrio até a abertura genital na superfície ventral, e estende-se lateralmente para cima ambos os lados quase tocando na superfície dorsal nos quadris e ombros.
    4. A excisão das glândulas mamárias requer agarrar a borda da glândula com fórceps do polegar e usar dissecção contundente para afrouxar os apegos à pele. Uma vez que a glândula tenha sido separada da pele, a tesoura de íris pode ser usada para cortar quaisquer anexos restantes antes de colocar a glândula em uma solução fixa.
  3. Glândulas subcutâneas
    1. As glândulas pré-putial são emparelhadas e localizadas apenas anteriores ao prepuce no rato macho. Eles parecem grandes e são uma cor cinza a amarelada com uma aparência espuma.
    2. As glândulas salivares submandibulares são emparelhadas, localizadas na mandíbula, e estendem-se ao longo do pescoço até o esterno de manúbrio. Eles têm uma cobertura dura e são firmemente aderidos aos músculos.
    3. A remoção dessas glândulas requer dissecção contundente e cuidados extras ao trabalhar na região cervical para evitar a ruptura dos vasos sanguíneos. Dissecção contundente é uma técnica em dissecção anatômica na qual os tecidos são separados e estruturas subjacentes expostas sem corte.
    4. Para dissecção contundente, a tesoura é usada para espalhar tecidos separados, em vez de cortá-los. As pontas fechadas são empurradas para o tecido e depois abertas para dividir tecido ao longo de planos naturais. Esse processo requer paciência e um toque delicado, pois o alongamento do tecido pode resultar em danos a órgãos e vasos sanguíneos adjacentes.
    5. As glândulas, uma vez liberadas dos músculos subjacentes, são levantadas e quaisquer anexos residuais são cortados.
    6. As glândulas requerem pelo menos um corte para permitir a penetração do fixador.
    7. A gordura subcutânea é avaliada para quantidade e deposição. Um animal obeso pode ter uma grande quantidade de gordura com a pele se sentindo espessa. Os animais que estão desidratados terão elasticidade reduzida da pele, e ele se sentirá mais fino.
  4. Músculo
    1. Observe os músculos abdominais, intercostais e expostos do pescoço e dos membros. Note qualquer espessamento anormal, massas ou descoloração.
    2. Se for necessário músculo para análise, selecione e corte a amostra antes de tomar qualquer órgão abdominal para reduzir a contaminação sanguínea.
  5. Abrindo a cavidade corporal
    1. Um pequeno corte transverso é feito no ponto mais caudal do músculo abdominal exposto.
    2. Levantando o músculo para longe dos órgãos, corte ao longo da linha alba até o xifoide.
    3. Corte os músculos abdominais da linha média lateralmente, logo acima dos membros traseiros de ambos os lados.
    4. Corte o músculo abdominal ao longo da curva das costelas em ambos os lados.
  6. Gordura abdominal
    1. Avalie a quantidade e o acúmulo de gordura corporal. Um animal saudável terá almofadas de gordura abdominal e alguma gordura ao longo da superfície dorsal na cavidade abdominal. Um animal excessivamente magro, ou um animal muito jovem, não terá quantidades consideráveis de gordura ao redor dos rins.
    2. Observe a cor da gordura corporal e note quaisquer anormalidades.

3. Órgãos abdominais

  1. Fígado
    1. Normalmente, a cor do fígado deve ser um vermelho escuro. As margens devem ser lisas e ter uma borda nítida. Um fígado anormal terá uma borda espessa e pode ter entalhes ou bordas escalopadas.
    2. Deve-se tomar cuidado ao manusear o fígado, pois é um tecido friável. Qualquer interrupção na integridade do órgão resultará em vazamento de sangue na cavidade corporal e ocultação dos órgãos.
    3. Reflita suavemente o fígado para longe do diafragma, e faça um corte nos vasos sanguíneos anteriores ao fígado.
    4. Reflita o fígado de volta em direção ao diafragma e segure o nódulo fibroso que conecta todos os lóbulos do fígado centralmente. Levante o fígado enquanto corta todos os acessórios ao trato intestinal e estômago.
    5. Remova o fígado em uma peça e borre o excesso de sangue da superfície do órgão. Pode ser colocado em um banho salino, ou enxaguado em soro fisiológico estéril, antes de cortar em seções mais finas para permitir a penetração de soluções fixas.
  2. Vesícula biliar
    1. A vesícula biliar é um pequeno saco transparente que muitas vezes aparece amarelo devido ao acúmulo de bile. Está presente em ratos, mas não em ratos.
    2. A vesícula biliar está localizada entre os lóbulos superiores do fígado ao longo da linha média. É geralmente conectado ao diafragma por um frênulo fino que pode ser acidentalmente rasgado, causando a ruptura da vesícula biliar.
    3. A vesícula biliar pode ser removida com o fígado e separada posteriormente para exame.
  3. Baço
    1. O baço é vermelho escuro e localizado ao longo da curvatura inferior do estômago. Deve ser regular em forma, com uma superfície ligeiramente fosca.
    2. É geralmente maior em machos do que em fêmeas. Animais com infecções parasitárias internas, infecções bacterianas ou doenças do sangue podem ter aumentado o baço.
    3. Como os filtros de baço danificaram os glóbulos vermelhos da circulação, ele é preenchido com sangue. Ao remover o baço, evite perfurar o órgão.
    4. Para removê-lo, o baço é levantado e os acessórios cortados entre o estômago e o baço.
  4. Trato intestinal
    1. As alterações pós-morte ocorrem rapidamente e incluem a poça de sangue nos tecidos, resultando no aparecimento de hematomas e no balonismo dos intestinos com gás frequentemente produzido pelo crescimento excessivo bacteriano. O trato intestinal é cuidadosamente examinado depois de ter sido removido do corpo.
  5. Estômago
    1. O estômago está localizado na extremidade distal do esôfago. Parece ser de dois tons, diferenciando as porções musculares e glandulares.
    2. O estômago deve ser avaliado para a presença de alimentos por sentir. Roedores geralmente comem constantemente devido a uma alta taxa metabólica. Deve-se notar um estômago vazio, pois pode ser indicativo de doença.
    3. Não corte o estômago, pois o conteúdo contaminará os órgãos da cavidade abdominal.
    4. Para remover o estômago do trato intestinal, o esôfago é cortado apenas antes do estômago. Se o estômago for colocado em um recipiente comum de fixação, um pedaço de sutura pode ser amarrado ao redor do esôfago para evitar derramamento de conteúdo estomacal antes do corte.
  6. Intestino delgado
    1. O intestino delgado é composto por três seções: o duodeno, o jejunum e o íleo. Não conterá pelotas fecais.
    2. O duodeno é uma seção mais curta do esfíncter estomacal posterior até o início do jejunum. O ducto biliar entra no intestino delgado no duodeno, e o tecido pancreático é mais firmemente ligado a esta porção do intestino delgado.
    3. O jejunum é a porção central do intestino delgado.
    4. As manchas de Peyer compostas de tecido linfoide em pequenas manchas ovais estão presentes na superfície não mesentérica do jejunum e do íleo no rato. 3 Estes fazem parte do sistema imunológico e podem ser úteis no diagnóstico de doenças imunológicas.
    5. O íleo é a porção distal do intestino delgado e é a parte mais longa, terminando no ceco.
  7. Ceco
    1. O ceco é uma cor esverdeada e muito macia.
    2. Está localizado na junção dos intestinos pequeno e grosso.
    3. A fermentação ocorre no ceco, então a punção do órgão resultará em um mau cheiro e contaminação dos órgãos com bactérias.
  8. Intestino grosso
    1. O intestino grosso começa no ceco e continua até o ânus. É facilmente identificável, pois pelotas fecais podem ser visualizadas dentro do lúmen do intestino.
    2. Não deve haver áreas de hemorragia ou descoloração imediatamente após a eutanásia.
  9. Mesenteria
    1. Os intestinos pequenos e grandes são ancorados ao corpo pela mesenteria, uma membrana contendo vasos sanguíneos, gordura e linfonodos.
    2. Deve ser examinado para nódulos linfáticos aumentados e quaisquer massas antes da remoção do trato intestinal.
  10. Pâncreas
    1. O pâncreas é um órgão difuso localizado abaixo do estômago e entre as primeiras dobras do duodeno. É um bronzeado claro para a cor cinza e composto de vários pequenos lóbulos com bordas irregulares.
    2. Pode não ser possível remover o pâncreas inteiro.
    3. Se o tecido pancreático for colhido, deve ser feito antes da remoção do trato intestinal.
    4. O tecido identificado como pancreático deve ser cuidadosamente provocado longe do tecido mesenérico ao seu redor.
  11. Removendo o trato intestinal
    1. O trato intestinal é removido como uma peça, começando pelo estômago e estendendo-se ao ânus.
    2. Um corte é feito através do intestino grosso, apenas anterior ao ânus. Todo o trato intestinal pode ser levantado e quaisquer ligações membranous cortadas. O trato intestinal pode então ser removido da mesenteria, cortado em seções e fixado.
    3. Ao colocar seções do intestino em frascos contendo outros órgãos, é imprescindível que as extremidades sejam amarradas para evitar a contaminação de tecidos com bactérias intestinais.
    4. O lúmen do trato intestinal pode ser exposto cortando seu comprimento usando uma tesoura pequena e fina. O interior pode ser enxaguado depois de expor o lúmen.
    5. Alguns estudos podem exigir que uma porção do intestino seja removida e lavada em vez de cortada. Ao fixar uma agulha cega em uma extremidade do tecido excisado, a solução salina ou fixativa pode ser forçada a entrar no intestino para lavar o conteúdo.
  12. Rim
    1. Os rins são órgãos emparelhados localizados contra os músculos das costas. O rim direito é maior que o esquerdo. Os rins em animais mais velhos podem estar cercados por depósitos de gordura, tornando-os difíceis de visualizar.
    2. É aproximadamente o tamanho e a cor de um feijão de rim escuro, e suas superfícies devem ser lisas.
    3. Imediatamente anterior ao rim está a glândula suprarrenal, aparecendo como um pequeno nódulo rosa-claro.
    4. Para remover o rim, isolá-lo usando um fórceps, e cortar entre o rim e o ureter.
    5. Os rins têm uma cápsula externa dura que pode ser descascada para melhor visualizar as superfícies. Corte um rim ao meio ao longo do eixo longo e o outro rim transversalmente. Note que qualquer grão dentro do rim pode indicar a presença de cristais ou depósitos minerais.
  13. Sistema reprodutivo feminino
    1. O útero é uma estrutura em forma de Y. O corpo do útero é curto com os chifres emparelhados à esquerda e à direita. Os chifres terminam nos tubos de falópio e nos ovários. Em uma fêmea não grávida, os chifres serão rosa pálido e fino. Em um animal grávida, os chifres aparecerão mais escuros e terão vasos sanguíneos pronunciados correndo ao lado dos chifres uterinos. À medida que a gestação prossegue, os chifres uterinos terão uma aparência de “corda de pérolas”. Os embriões em desenvolvimento criarão uma área pálida dentro do chifre, e à medida que se desenvolvem, o útero se alongará e o tecido ficará mais fino, permitindo a visualização.
    2. Os ovários estarão localizados logo abaixo dos rins. Eles terão uma superfície áspera devido a diferentes estágios de maturação dos folículos. Ovários císticos terão vesículas cheias de fluidos. Este fluido pode variar de cor de palha a sanguineous.
    3. Para remover os ovários, corte os acessórios arteriais anteriormente e o tubo falópio posteriormente. Se desejar, os ovários podem ser retirados ligados ao útero.
    4. Para remover o útero, ele tem que ser suavemente agarrado e a tração aplicada para ser capaz de cortar abaixo do colo do útero. Após o corte, levante o corpo e os chifres do útero, quebrando qualquer apego na cavidade corporal.
  14. Sistema reprodutivo masculino
    1. As vesículas seminais são brancas, em forma de chifre, estruturas emparelhadas localizadas anteriormente à bexiga urinária e anexadas na linha média na próstata. O tamanho varia, mas eles podem ser tão grandes quanto o ceco.
    2. A próstata está localizada ao redor da bexiga urinária na base. Este tecido é geralmente um bronzeado leve. Em animais mais velhos, pode apresentar hiperplasia. Animais mais velhos geralmente terão mais gordura corporal que pode dificultar a visualização da próstata.
    3. Os testículos são emparelhados e localizados nos sacos escrotais. A superfície deve ser lisa com vascularização fina evidente na superfície. Camundongos e ratos não têm um anel inguinal ou esfíncter, o que permite que o animal retire os testículos na cavidade abdominal. Para visualizá-las, segure as almofadas de gordura abdominal localizadas no abdômen inferior e puxe-as anteriormente. Isso vai tirar os testículos do escroto para permitir o exame. O epidídicos está ao longo da margem inferior dos testis e tapers em direção ao topo. O vas deferens é anexado ao final do epidídis e leva de volta à próstata.
    4. A remoção dos testículos pode ser realizada cortando o acessório no escroto e cortando os vasos deferdes.
    5. Remover a próstata e vesículas seminais requer apreensão da base da bexiga urinária e do levantamento, enquanto corta os acessórios abaixo da próstata.

4. Cavidade torácica

  1. Pulmões
    1. Os pulmões são normalmente uma cor rosa brilhante, e esponjoso em textura com uma superfície lisa. No entanto, a eutanásia com CO2 pode causar hemorragias pulmonares, resultando em manchas vermelhas escuras que podem cobrir toda a superfície pulmonar.
  2. Coração
    1. O coração é vermelho escuro com quatro câmaras. Os ventrículos são musculosos e se sentem firmes ao toque. Os atrias são mais escuros de cor vermelha e sentam-se no topo dos ventrículos. Eles são muito menos musculosos e parecem flácidos.
    2. O saco pericárdico é uma membrana fina e translúcida ao redor do coração.
  3. Timo
    1. O timo está localizado anteriormente ao coração e se senta sobre a traqueia. Deve ser suave na textura.
    2. Em animais jovens, aparece bronzeado com uma textura gordurosa.
    3. Animais mais velhos terão infiltração de tecido adiposo no timo, ampliando-o e dando ao timo uma cor branca.
  4. Traqueia
    1. A traqueia se estende desde a epiglote até a bifurcação dos brônquios. É um tubo cartilaginoso e cristais que é flexível.
    2. Deve ser claro e não ter nenhum líquido fluido ou espumado no lúmen. A eutanásia com CO2 pode causar acúmulo de fluidos (soroanguinos e/ou espuma) nos pulmões e traqueia devido à hemorragia.
  5. Esôfago
    1. O esôfago se estende da cavidade oral até o estômago. É um tubo muito fino que fica diretamente atrás da traqueia e atrás do coração, e passa através do diafragma para o estômago.
    2. O esôfago é difícil de remover, pois é facilmente rasgado mesmo que o tecido seja elástico. A remoção do esôfago é mais facilmente feita dissecando-o longe da traqueia após a remoção do coração e pulmões.
  6. Remoção dos órgãos torácciis
    1. O coração e os pulmões são mais facilmente removidos juntos.
    2. Coloque os fórceps perpendiculares à traqueia e segure a traqueia firmemente, logo acima do timo.
    3. Usando a tesoura, faça um corte perpendicular à traqueia antes das fórceps. Este corte deve cortar a traqueia e o esôfago.
    4. Sem afrouxar o aperto na traqueia, levante a traqueia caudally, e corte qualquer apego dos pulmões à superfície espinhal na caixa torácica.
    5. O esôfago pode precisar ser cortado para ser capaz de levantar o coração e os pulmões livres da cavidade torácica.
    6. Depois que o coração é removido do corpo, ele pode ser lavado com soro fisiológico para remover sangue residual e coágulos, ou pode ser preenchido com fixação através da aorta.
    7. Uma vez que os pulmões são excisados, eles são inflados com fixação. Uma ligadura é colocada vagamente ao redor da traqueia. Uma agulha que é presa a uma seringa contendo o fixador de escolha é enfiada no lúmen da traqueia. A ligadura é apertada ao redor da agulha, e o fixador é injetado até que os pulmões sejam inflados. Após a remoção da agulha, a ligadura é apertada para evitar vazamentos.
  7. Cavidade oral
    1. Língua
      1. A língua dos roedores é lisa.
      2. Examine a superfície em busca de lesões, incluindo a parte inferior.
      3. A língua raramente é colhida, exceto para investigações especializadas, como estudos de câncer bucal.
      4. Para remover a língua, corte as superfícies buccal de cada lado da cavidade oral até a articulação temporal-mandibular.
      5. Desloque a mandíbula e reflita a maxila para revelar a epiglote e a base da língua.
      6. Usando fórceps para estender a língua, corte os acessórios abaixo caudalmente até a base da língua.
      7. Mantendo a tração, corte horizontalmente na base da língua para libertá-la da cavidade oral.
    2. Dente
      1. A dentração de ratos consiste em três molares e um incisivo em cada quadrante que é separado por um diástema desdentado. Eles são cobertos por esmalte apenas no lado labial; na superfície interior do dente é dentina.
      2. Os dentes de rato são normalmente uma cor amarelo/laranja. Esta cor é mais pronunciada no esmalte incisivo e é devido à presença de um pigmento contendo ferro. A cor começa em cerca de 21 dias após o nascimento e se aprofunda com a idade.
      3. Examine os dentes para crescimento excessivo ou má oclusão.

5. Cabeça

  1. Olho
    1. Os olhos devem ser iguais em tamanho e claros de exudate. A conjuntiva deve ser suave.
    2. Para remover os olhos, aplique pressão sobre a pele ao redor do olho para trás e para baixo para projetar o olho da órbita. Usando um fórceps de ponta curva, isole o globo e corte os acessórios que o seguram na tomada.
  2. Ouvidos
    1. Observe as orelhas para identificação. Alguns investigadores pedem que as etiquetas de ouvido sejam incluídas com amostras de órgãos para confirmação da identidade animal.
    2. Os canais auditivos são examinados para qualquer lesão, massas ou exsudatos.
  3. Nariz
    1. O nariz é observado para fluido ou exsudato.
    2. As nares devem ser simétricas e claras.

O exame pós-morte de órgãos e tecidos são componentes integrais de muitos experimentos de laboratório, que se baseiam nos pontos finais de coleta de dados coletados a partir das análises dos órgãos colhidos. Por isso, é importante aprender a técnica correta de necropsia diagnóstica e colheita de tecidos, pois o procedimento pode impactar significativamente a qualidade das amostras coletadas. Esta apresentação revisará o método de dissecção e extração de órgãos abdominais, reprodutivos e toráclicas de animais de laboratório.

Antes de iniciar o procedimento, deve ser iniciado um formulário que inclua um histórico completo do animal: número de identificação animal, sexo, condições de moradia, data de nascimento, data de óbito, número de estudo/protocolo e o nome do Pesquisador Principal.

Em seguida, prepare a área de dissecção. Coloque uma cobertura de banco, bandeja de dissecção, instrumentos designados para necropsia, que inclui tesoura, fórceps, lâmina de bisturi estéril, cortadores de ossos, sonda sem corte, espátula pequena e material de sutura não absorvível. A colheita de órgãos e tecidos para exame histológico exige que os tecidos sejam preservados em uma solução fixa. Salvo especificação em contrário, a fixação mais usada é a formalina tamponada 10% neutra. Observe que as amostras de tecido devem ter 0,5-1 cm de espessura para permitir a penetração suficiente da solução fixativa. A fixação previne a decadência, a autolise e a putrefação; impede qualquer reação bioquímica em curso; e pode aumentar a resistência mecânica e estabilidade dos tecidos tratados.

O método de eutanásia do animal também pode impactar a qualidade das amostras. O método de eutanásia mais usado para camundongos e ratos é uma overdose de gás carbônico. Os animais são deixados em sua gaiola doméstica, que é colocado, em uma câmara, e o CO2 é gradualmente introduzido na câmara a uma taxa de deslocamento de 10-30% do volume da câmara/min. Isso faz com que os animais percam a consciência antes da percepção da dor que está associada à ativação do nociceptor por ácido carbônico. O fluxo é então mantido na câmara até que a parada respiratória tenha ocorrido e o animal esteja morto.

Após a eutanásia, primeiro realizar um exame externo inicial inspecionando visualmente a carcaça para lesões e massas, crescimento excessivo de dentes, ou qualquer mancha da pele na boca, nares, orelhas, olhos e aberturas anais e genitais. Se necessário, realize um teste de fita, raspagem de pele e exames de pele para detectar parasitas externos. Uma vez concluído o exame externo, é hora de iniciar a necropsia, começando pela cavidade abdominal. Observe que antes de remover qualquer amostra de tecido é importante observar o órgão in situ.

Para começar a excisar a pele, coloque um pequeno corte apenas anterior à pelve em fêmeas e acima do prepuce em machos. Em seguida, usando a técnica de dissecção sem cortes, solte a pele da fáscia e do músculo. Dissecção contundente é uma técnica em dissecção anatômica na qual os tecidos são separados e estruturas subjacentes expostas sem corte. Nesta técnica, a tesoura é usada para espalhar tecidos em vez de cortá-los. As pontas fechadas são empurradas para o tecido e depois abertas para dividir tecido ao longo de planos naturais. Esse processo requer paciência e um toque delicado, pois o alongamento do tecido pode resultar em danos a órgãos e vasos sanguíneos adjacentes. Em seguida, estenda o corte até o queixo. Em seguida, cortes transversais anteriores aos membros traseiros e posteriores aos membros dianteiros, e usam dissecção contundente para expor a área cervical e o tórax. Deve-se exercitar um cuidado extra para evitar a ruptura dos vasos jugular e carótida no pescoço.

No feminino, com a pele extirpada, observe o tecido mamário do topo do esterno no manúbrio até a abertura genital na superfície ventral; estendendo-se lateralmente em ambos os lados. Lactante ou fêmeas grávidas terão aumento do volume de tecido mamário e o leite pode estar presente. Para extirparar as glândulas mamárias, segure a borda do tecido com fórceps e use dissecção contundente para afrouxar os apegos à pele. Uma vez separada a glândula, ela pode ser colocada em uma solução fixativa para análise histológica subsequente.

Nesta fase, você pode observar glândulas salivares submandibulares, que são emparelhadas e localizadas na mandíbula – estendendo-se ao longo do pescoço ao esterno de manúbrio. A remoção dessas glândulas requer dissecção contundente e cuidados extras ao trabalhar na região cervical para evitar a ruptura dos vasos sanguíneos. Uma vez libertado dos músculos subjacentes, levante as glândulas e corte quaisquer acessórios residuais. As glândulas requerem pelo menos um corte para permitir a penetração do fixador.

Além disso, você pode ver a traqueia, que se estende desde a epiglote até a bifurcação dos brônquios. É um tubo cartilaginoso e cristais que é flexível. Embora normalmente clara, a eutanásia com CO2 pode causar acúmulo de fluidos nos pulmões e traqueia que parece um fluido claro espumoso. A gordura subcutânea também estará presente nesta área. Avalie-o para quantidade e deposição. Um animal obeso pode ter uma grande quantidade de gordura com a pele se sentindo espessa.

Antes de abrir a cavidade corporal, observe os músculos abdominais, intercostais e expostos do pescoço, e membros para qualquer espessamento, massas ou descoloração. Para abrir a cavidade corporal, primeiro faça um pequeno corte transversal no ponto mais caudal do músculo abdominal exposto. Em seguida, levante o músculo para longe dos órgãos, e corte ao longo da linha alba para o xiphoide. Em seguida, dissecar os músculos lateralmente da linha média para um pouco acima dos membros traseiros em ambos os lados. Por último, corte ao longo da curva das costelas em ambos os lados. Uma vez aberta a cavidade corporal, avalie a quantidade e o acúmulo de gordura abdominal. Um animal saudável terá almofadas de gordura abdominal e um pouco de gordura ao longo da superfície dorsal na cavidade. Observe a cor deste tecido e note quaisquer anormalidades.

Agora estamos prontos para começar a colheita de órgãos abdominais. Comece localizando o baço, que é vermelho escuro e localizado ao longo da curvatura inferior do estômago. Deve ser regular em forma e com uma superfície ligeiramente fosca. Para remover o baço, levante o órgão e corte os acessórios no estômago.

O estômago está localizado na extremidade distal do esôfago. Parece ser de dois tons, diferenciando as porções musculares e glandulares. Sinta pela presença de comida. Deve-se notar um estômago vazio, pois pode ser indicativo de doença. Não corte o estômago, pois o conteúdo contaminará os órgãos da cavidade abdominal.

Os intestinos delgados estão ligados de forma distral e inferior ao estômago. Há três seções distintas do intestino delgado. O primeiro é o duodeno – uma seção mais curta do esfíncter estomacal posterior até o início do jejunum. O ducto biliar entra aqui e o tecido pancreático está mais firmemente ligado a esta porção do intestino delgado. O jejunum é a parte central. As Manchas de Peyer, que são pequenas áreas ovais compostas de tecido linfoide, podem ser observadas na superfície do jejunum e do íleo. O íleo é a porção mais longa do intestino delgado que termina no ceco – localizado na junção dos intestinos pequeno e grande. O ceco parece esverdeado na cor e é muito macio.

O intestino grosso continua do ceco ao ânus. É facilmente identificável, pois pelotas fecais podem ser visualizadas dentro do lúmen desta estrutura. Os intestinos pequenos e grandes são ancorados ao corpo pela mesenteria, uma membrana contendo vasos sanguíneos, gordura e linfonodos. Este deve ser examinado para nódulos linfáticos aumentados e quaisquer massas antes da remoção do trato intestinal. O pâncreas é um órgão difuso localizado posteriormente ao estômago. É um bronzeado claro para a cor cinza e composto de vários pequenos lóbulos com bordas irregulares. Para colher pâncreas, segure o órgão e provoque-o suavemente do tecido mesentérico circundante. Isso deve ser feito antes da remoção do trato intestinal.

Para remover todo o trato como uma peça começando com o estômago e estendendo-se ao ânus, primeiro coloque uma ligadura no reto e, em seguida, faça um corte através do intestino grosso apenas anterior ao ânus. Em seguida, coloque uma ligadura na junção do esôfago e do estômago, seguindo a qual todo o trato intestinal pode ser levantado e quaisquer ligações membranous cortadas. A coisa toda pode então ser separada da mesenteria, cortada em seções e fixada.

Os rins são órgãos emparelhados localizados contra os músculos das costas. Eles devem ser do tamanho e cor de um feijão de rim escuro e ter uma superfície lisa. Imediatamente anterior ao rim é a glândula suprarrenal aparecendo como um pequeno nódulo rosa claro.

Para remover um rim, isole-o usando um fórceps e corte entre o órgão e o ureter. A camada externa dura pode então ser descascada para examinar a superfície. Corte um rim ao meio ao longo do eixo longo e o outro transversalmente. Qualquer grão dentro pode indicar a presença de cristais ou depósitos minerais. Por fim, remova o fígado, que é um vermelho escuro na cor e suas margens devem ser lisas com uma borda nítida. Deve-se tomar cuidado ao manusear o fígado, pois é um tecido friável. Qualquer interrupção na integridade do órgão resultará em vazamento de sangue na cavidade corporal e obscurecerá outros órgãos.

Para remover o fígado, primeiro reflita suavemente os lóbulos para longe do diafragma e faça um corte nos vasos sanguíneos anteriores à estrutura. Em seguida, reflita o fígado de volta em direção ao diafragma e segure o nódulo fibroso que conecta todos os lóbulos centralmente. Por fim, levante o órgão enquanto corta todos os acessórios ao trato intestinal e estômago.

O sistema reprodutivo feminino consiste no útero e nos ovários. O útero é uma estrutura curta em forma de Y com chifres que se estendem em ambas as direções. Os chifres terminam nos tubos de falópio e nos ovários, localizados logo abaixo dos rins. Os ovários terão uma superfície áspera devido a diferentes estágios de maturação dos folículos.

Para remover os ovários, corte os acessórios arteriais anteriormente e o tubo falópio posteriormente. Para remover o útero, segure delicadamente e corte abaixo do colo do útero. Após o corte, levante o corpo e os chifres do útero quebrando qualquer acessório na cavidade corporal.

No sexo masculino, você também pode observar as glândulas pré-putial localizadas apenas antes do prepuce. Eles parecem grandes e são uma cor cinza a amarelada com uma aparência espuma. A remoção e fixação dessas glândulas é semelhante às glândulas submandibulares. Além disso, o sistema reprodutivo masculino consiste em vesículas seminal, glândula próstata e testículos. As vesículas seminais são brancas, estruturas em forma de chifre de carneiro localizadas anteriores à bexiga urinária e anexadas na linha média na próstata.

A próstata , geralmente bronzeada leve em cores – está localizada ao redor da bexiga urinária na base. Para visualizar os testículos, segure as almofadas de gordura abdominal localizadas no abdômen inferior e puxe-as anteriormente. Isso vai tirar os testículos do escroto para permitir o exame. A superfície deve ser lisa com vascularização fina evidente na superfície.

O epidídicos está ao longo da margem inferior dos testis e tapers em direção ao topo. O vas deferens é anexado ao final do epidídis e leva de volta à próstata. Para remover os testículos, corte o acessório no escroto e corte os vasos deferimento. Para remover a próstata e as vesículas seminais, segure a base da bexiga urinária e levante enquanto corta os acessórios abaixo da próstata.

Passando para os órgãos dentro da cavidade torácica. Para expor as estruturas vitais, remova o diafragma do acessório às costelas. Em seguida, corte a caixa torácica lateralmente em ambos os lados até o topo do esterno de manúbrio, e depois reflita os ossos cranialmente para visualizar os órgãos torácicos.

Os pulmões são normalmente uma cor rosa brilhante, esponjoso em textura com uma superfície lisa. No entanto, a eutanásia com CO2 pode causar hemorragias pulmonares resultando em manchas vermelhas escuras que podem cobrir toda a superfície pulmonar.

O coração é vermelho escuro e os ventrículos são musculosos, que se sentem firmes ao toque. Os atrias são mais escuros de cor vermelha e sentam-se no topo dos ventrículos. Eles são muito menos musculosos e parecem flácidos. Uma fina membrana translúcida chamada saco pericárdico circunda o coração.

O timo está localizado anterior ao coração e se senta sobre a traqueia. Deve ser suave na textura. Você pode ver a traqueia como descrito antes, e o esôfago é um tubo muito fino que fica diretamente atrás da traqueia e atrás do coração e passa através do diafragma para o estômago.

Para remover os órgãos na cavidade torácica, comece segurando a traqueia logo acima do timo e faça um corte perpendicular apenas antes dos fórceps. Enquanto mantém o alcance, levante a traqueia caudalmente e corte qualquer apego dos pulmões à superfície espinhal na caixa torácica. O esôfago pode precisar ser cortado para ser capaz de levantar o coração e os pulmões livres da cavidade torácica

Depois que o coração for removido para o corpo, lave-o com soro fisiológico para remover sangue residual e coágulos, ou preenchê-lo com o fixador através da aorta. Uma vez que os pulmões são extirpados, colocou uma ligadura solta ao redor da traqueia. Em seguida, enfie uma agulha presa a uma seringa contendo o fixador no lúmen da traqueia, e aperte a ligadura. Em seguida, injete o fixador até que os pulmões sejam inflados. Por último, retire a agulha e aperte ainda mais a ligadura para evitar vazamentos.

Com esse sopro de conhecimento sobre a necropsia dos roedores e a colheita de tecidos, vamos olhar para alguns dos experimentos de laboratório atuais envolvendo esses procedimentos.

Necropsia diagnóstica é um ponto final comum em experimentos de metástase de câncer. Neste exemplo, os investigadores injetaram células cancerígenas no baço do roedor Então, trinta a sessenta dias depois, realizaram necropsia, que revelou metástases hepáticas significativas.

A extração tecidual é frequentemente seguida pela análise histológica, que ajuda no estudo da anatomia microscópica da amostra. Seguindo o protocolo de fixação, incorporação, secção e coloração de tecidos, os pesquisadores são capazes de estudar as estruturas microscópicas nesses órgãos, e descobrir o efeito de intervenções genéticas ou farmacológicas a nível atômico.

Às vezes, os pesquisadores removem tecidos para estudar processos fisiológicos, como a angiogênese. Aqui, os experimentadores exteriorizaram o tecido mesentérico de um rato para estimular o crescimento vascular. Em seguida, eles colheram algumas seções, e as trataram com os marcadores que mancham as células de qualquer vaso sanguíneo, para estudar a dinâmica celular envolvida no crescimento da rede vascular.

Você acabou de ver o vídeo do JoVE detalhando os passos da necropsia diagnóstica e colheita de tecidos em animais de laboratório. É importante utilizar técnicas adequadas para remoção e preservação de órgãos, para que o procedimento de extração não tenha efeito na interpretação dos dados coletados. Como sempre, obrigado por assistir!

Applications and Summary

O passo final em muitos projetos de pesquisa é a necropsia dos animais experimentais. Uma observação detalhada das estruturas externas e internas seguidas da coleta de tecidos para análise suplementar fornece uma grande quantidade de dados de pesquisa. Técnicas adequadas para remoção e preservação de tecidos com as soluções fixativas adequadas são essenciais para a correta interpretação dos achados.

Referências

  1. Leary, S., Underwood, W., Anthony, R., Cartner, S., Corey, D., Grandin, T., et al. 2013. AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2013 edition.
  2. Parkinson, C.M., O'Brien, A., Albers, T.M., Simon, M.A., Clifford, C.B. and Pritchett-Corning, K.R. 2011. Diagnostic Necropsy and Selected Tissue and Sample Collection in Rats and Mice. 54. e2966. 1-7.
  3. Fiette, L. and Slaoui, M. 2011. Necropsy and Sampling Procedures in Rodents. Drug Safety Evaluation: Methods and Protocols, 39-67.
  4. Youngson, R.M. 2005. Collins dictionary of Medicine fourth edition.

Transcrição

Necropsy-meaning postmortem examination of organs-and tissue harvest are integral components of many lab experiments, which rely on the final data collection time points gathered from the analyses of the harvested organs. Therefore, it is important to learn the correct diagnostic necropsy and tissue harvesting technique, as the procedure can significantly impact the quality of the samples collected. This presentation will review the method of dissection and extraction of abdominal, reproductive, and thoracic organs from lab animals.

Before starting with the procedure, a form should be initiated that includes a complete history of the animal: animal identification number, gender, housing conditions, date of birth, date of death, study/protocol number, and the name of the Principle Investigator.

Next, prepare the dissection area. Lay down a bench covering, dissection tray, instruments designated for necropsy, which includes scissors, forceps, sterile scalpel blade, bone cutters, blunt probe, small spatula and non-absorbable suture material. Organ and tissue harvest for histological examination require that the tissues be preserved in a fixative solution. Unless otherwise specified, the fixative most commonly used is 10% neutral buffered formalin. Note that the tissue samples should be 0.5-1 cm in thickness to allow sufficient penetration of the fixative solution. Fixation prevents decay, autolysis, and putrefaction; stops any ongoing biochemical reactions; and may increase the mechanical strength and stability of the treated tissues.

The method of euthanasia of the animal can also impact the quality of the samples. The most commonly used euthanasia method for mice and rats is an overdose of carbon dioxide gas. The animals are left in their home cage, which is placed, into a chamber, and CO2 is gradually introduced into the chamber at a displacement rate of 10-30% of the chamber volume/min. This causes the animals to lose consciousness prior to the perception of pain that is associated with nociceptor activation by carbonic acid. The flow is then maintained in the chamber till respiratory arrest has occurred and the animal is dead.

Following euthanasia, first perform an initial external examination by visually inspecting the carcass for lesions and masses, excessive tooth growth, or any staining of the fur at the mouth, nares, ears, eyes and the anal and genital openings. If warranted, perform a tape test, skin scraping, and pelt exams to detect external parasites. Once the external exam has been completed, it is time to start the necropsy, beginning with the abdominal cavity. Note that before removing any tissue samples it is important to observe the organ in situ.

To begin excising the skin, place a small cut just anterior to the pelvis in females and above the prepuce in males. Then, using the blunt dissection technique, loosen the skin from the fascia and muscle. Blunt dissection is a technique in anatomical dissection in which tissues are separated and underlying structures exposed without cutting. In this technique, the scissors are used to spread tissues apart rather than to cut them apart. The closed tips are pushed into tissue and then opened to split tissue along natural planes. This process requires patience and a delicate touch, as the stretching of the tissue can result in damage to adjacent organs and blood vessels. Then extend the cut to the chin. Next make, transverse cuts anterior to the hind limbs and posterior to the forelimbs, and use blunt dissection to expose the cervical area and chest. Extra care should be exercised to avoid rupturing the jugular and carotid vessels in the neck.

In females, with the skin excised, observe the mammary tissue from the top of the sternum at the manubrium to the genital opening on the ventral surface; extending laterally on both sides. Lactating or pregnant females will have increased mammary tissue volume and milk may be present. To excise the mammary glands, grasp the tissue edge with forceps and use blunt dissection to loosen attachments to the skin. Once the gland has been separated, it can be placed in a fixative solution for subsequent histological analysis.

At this stage, you can observe submandibular salivary glands, which are paired and located at the mandible — extending along the neck to the manubrium sternum. Removal of these glands requires blunt dissection and extra care when working in the cervical region to prevent rupture of blood vessels. Once freed from the underlying muscles, lift up the glands and sever any residual attachments. The glands require at least one cut to allow penetration of the fixative.

In addition, you can see the trachea, which extends from the epiglottis to the bifurcation of the bronchi. It is a ridged, cartilaginous tube that is flexible. While normally clear, euthanasia with CO2 can cause fluid accumulation in the lungs and trachea that looks like a frothy clear fluid. Subcutaneous fat will also be present in this area. Evaluate it for quantity and deposition. An obese animal may have a large amount of fat with the skin feeling thickened.

Prior to opening the body cavity, observe the abdominal, intercostal, and exposed neck muscles, and limbs for any thickening, masses or discoloration. To open the body cavity, first make a small transverse cut at the most caudal point of the exposed abdominal muscle. Then lift the muscle away from the organs, and cut along the linea alba to the xiphoid. Next, dissect the muscles laterally from the midline to just above the hind limbs on both sides. Lastly, cut along the curve of the ribs on both sides. Once the body cavity has been opened, evaluate the quantity and accumulation of abdominal fat. A healthy animal will have abdominal fat pads and some fat along the dorsal surface in the cavity. Observe the color of this tissue and note any abnormalities.

Now we are ready to begin the harvest of abdominal organs. Begin by locating the spleen, which is dark red and located along the lower curvature of the stomach. It should be regular in shape and with a slightly matte surface. To remove the spleen, lift the organ and snip the attachments to the stomach.

The stomach is located at the distal end of the esophagus. It appears to be two-toned, differentiating the muscular and glandular portions. Feel it for presence of food. An empty stomach should be noted, as it can be indicative of illness. Do not cut the stomach, as the contents will contaminate the organs in the abdominal cavity.

The small intestines are connected distally and inferior to the stomach. There are three distinct sections of the small intestine. First is the duodenum – a shorter section from the posterior stomach sphincter to the start of the jejunum. The bile duct enters here and the pancreatic tissue is more firmly attached to this portion of the small intestine. The jejunum is the center portion. Peyer’s Patches, which are small oval areas composed of lymphoid tissue, can be observed on the surface of the jejunum and ileum. The ileum is the longest portion of the small intestine that terminates at the cecum – located at the junction of the small and large intestines. The cecum appears greenish in color and is very soft.

The large intestine continues from the cecum to the anus. It is readily identifiable as fecal pellets can be visualized within the lumen of this structure. The small and large intestines are anchored to the body by the mesentery, a membrane containing blood vessels, fat and lymph nodes. This should be examined for enlarged lymph nodes and any masses prior to removal of the intestinal tract. The pancreas is a diffuse organ located posterior to the stomach. It is a light tan to gray color and composed of multiple small lobes with irregular edges. To harvest pancreas, grasp the organ and gently tease it from the surrounding mesenteric tissue. This must be done prior to the removal of the intestinal tract.

To remove the entire tract as one piece beginning with the stomach and extending to the anus, first place a ligature at the rectum and then make a cut through the large intestine just anterior to the anus. Next, place a ligature at the junction of the esophagus and stomach, following which the entire intestinal tract can be lifted and any membranous attachments severed. The whole thing can then be separated from the mesentery, cut into sections and fixed.

The kidneys are paired organs located against the muscles of the back. They should be the size and color of a dark kidney bean and have a smooth surface. Immediately anterior to the kidney is the adrenal gland appearing as a small light pink nodule.

To remove a kidney, isolate it using a forceps and cut between the organ and the ureter. The tough outer layer can then be peeled off to examine the surface. Cut one kidney in half along the long axis and the other transversely. Any grit within may indicate the presence of crystals or mineral deposits. Lastly, remove the liver, which is a dark red in color and its margins should be smooth with a crisp edge. Care should be taken when handling the liver, as it is a friable tissue. Any disruption to the integrity of the organ will result in blood leaking into the body cavity and obscure other organs.

To remove the liver, first gently reflect the lobes away from the diaphragm and make a cut through the blood vessels anterior to the structure. Next, reflect the liver back toward the diaphragm and grasp the fibrous node that connects all the lobes centrally. Lastly, lift the organ while severing all attachments to the intestinal tract and stomach.

The female reproductive system consists on the uterus and the ovaries. The uterus is a short Y-shaped structure with horns extending in both directions. The horns terminate at the fallopian tubes and the ovaries — located just below the kidneys. The ovaries will have a rough surface due to different maturation stages of the follicles.

To remove the ovaries, cut the arterial attachments anteriorly and the fallopian tube posteriorly. To remove the uterus, gently grasp and cut below the cervix. After the cut, lift the body and horns of the uterus breaking any attachments in the body cavity.

In males, you can also observe the preputial glands located just anterior to the prepuce. They appear large and are a gray to yellowish color with a foamy appearance. Removal and fixing of these glands is similar to submandibular glands. In addition, the male reproductive system consists of seminal vesicles, the prostate gland and testes. The seminal vesicles are white, “ram’s horn shaped” structures located anterior to the urinary bladder and attached on the midline at the prostate gland.

The prostate gland — generally light tan in color — is located surrounding the urinary bladder at the base. To visualize the testes, grasp the abdominal fat pads located in the lower abdomen and pull them anteriorly. This will pull the testes from the scrotum to allow examination. The surface should be smooth with fine vascularization evident on the surface.

The epididymis is along the lower margin of the testis and tapers toward the top. The vas deferens is attached to the end of the epididymis and leads back to the prostate. To remove the testes, cut the attachment at the scrotum and cut the vas deferens. To remove the prostate and seminal vesicles, grasp the base of the urinary bladder and lift while severing the attachments beneath the prostate.

Moving on to the organs within the thoracic cavity. To expose the vital structures, remove the diaphragm from the attachment to the ribs. Next, cut through the rib cage laterally on both sides up to the top of the manubrium sternum, and then reflect the bones cranially to visualize the thoracic organs.

The lungs are normally a bright pink color, spongy in texture with a smooth surface. However euthanasia with CO2 can cause pulmonary hemorrhages resulting in dark red splotches that can cover the entire lung surfaces.

The heart is dark red and the ventricles are muscular, which feel firm to the touch. The atria are darker red in color and sit at the top of the ventricles. They are much less muscular and appear flaccid. A thin translucent membrane called the pericardial sac surrounds the heart.

The thymus is located anterior to the heart and sits over the trachea. It should be smooth in texture. You can see the trachea as described before, and the esophagus is a very thin tube that lies directly behind the trachea and behind the heart and passes through the diaphragm to the stomach.

To remove the organs in the thoracic cavity, begin by grasping the trachea just above the thymus and make a perpendicular cut just anterior to the forceps. While maintaining the grasp, lift the trachea up caudally and snip any attachments of the lungs to the spinal surface in the rib cage. The esophagus may need to be cut to be able to lift the heart and lungs free of the chest cavity

After the heart is removed for the body, flush it with saline to remove residual blood and clots, or fill it with the fixative through the aorta. Once the lungs are excised, placed a loose ligature around the trachea. Next, thread a needle attached to a syringe containing the fixative into the lumen of the trachea, and tighten the ligature. Then inject the fixative until the lungs are inflated. Lastly, remove the needle and tighten the ligature further to prevent leakage.

With this breath of knowledge regarding the rodent necropsy and tissue harvest, let’s look at some of the current lab experiments involving these procedures.

Diagnostic necropsy is a common endpoint in cancer metastasis experiments. In this example, the investigators injected cancer cells into the rodent’s spleen Then, thirty to sixty days later, they conducted necropsy, which revealed significant liver metastases.

Tissue extraction is often followed by histological analysis, which helps in the study of microscopic anatomy of the sample. By following the protocol of fixation, embedding, sectioning and staining of tissues, researchers are able to study the microscopic structures in these organs, and uncover the effect of genetic or pharmacological interventions at atomic level.

At times researchers remove tissues to study physiological processes, like angiogenesis. Here, the experimenters exteriorized a rat’s mesenteric tissue to stimulate vascular growth. Then, they harvested a few sections, and treated them with the markers that stain the cells of any blood vessel, to study the cellular dynamics involved in vascular network growth.

You’ve just watched JoVE’s video detailing the steps of diagnostic necropsy and tissue harvest in lab animals. It is important to use proper techniques for organ removal and preservation, so that the extraction procedure has no effect on the interpretation of the data collected. As always, thanks for watching!