Name: Medição Usina Extensão parede celular (Creep) induzida pelo pH ácido e por Alpha-Expansin (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-03-11T00:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 51 s
Description: Aprenda a medir a extensão da parede celular vegetal (creep) induzida por pH ácido e alpha-expansina usando extensômetro de força constante. Este método demonstra a atividade de expansinas em amostras de hipocótilo de pepino.

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As técnicas mostradas aqui foram desenvolvidos com o financiamento por doações do Departamento de Energia (Ciências da Bioenergia) e da National Science Foundation.

Parte 1: Crescendo e armazenamento de material vegetal adequado <ol><li> Em nossa experiência, hipocótilo jovens de mudas de pepino estiolados servir como uma fonte conveniente de material da parede celular para estas experiências. Sementes de pepino são semeadas em papel molhado em uma caixa à prova de luz, que é manter-se em um armário em uma sala escura temperatura constante fixada em 26 ° C. A temperatura exata não é crítica, como qualquer coisa entre 22 ° e 30 ° C deve ser fino, mas a temperatura vai determinar o quão rápido as mudas atingem um grau adequado de desenvolvimento. A temperatura mais quente, mais rápido as mudas irão se desenvolver. Normalmente usamos mudas quando eles têm crescido para cerca de 5 cm de comprimento, que é alcançado 3-4 dias após a semeadura. É importante que a muda ser cultivada no escuro, já que mesmo pequenas quantidades de luz afetam tanto a taxa de desenvolvimento de plântulas e as propriedades da parede celular que medimos com esta técnica. No dia 3, você pode espreitar na caixa, usando uma luz verde dim filtrada, para verificar o desenvolvimento das plântulas. </li><li> Mudas são rapidamente cortado e embalado em pequenas caixas de plástico, 100-150 mudas por caixa, e armazenadas a -80 ° C. A esta temperatura que permanecem úteis por semanas. </li></ol> Parte 2: As amostras de parede celular Preparando <ol><li> Pequenos grupos (8-10) de mudas de corte congelados são transferidos do freezer a um recipiente isolado contendo um bloco freezer -80. </li><li> A cutícula que cobre o hipocótilo é abrasiva com carborundum. Isso é feito por várias vezes o desenho hipocótilo entre o polegar eo indicador, que são revestidos com uma pasta espessa de pó de carborundum molhado. Leva um pouco de experiência para saber a quantidade correta de pressão para o uso: muita pressão e da camada epidérmica começa a ser desfiado e rasgado; muito pouca pressão ea cutícula não será permeabilizadas. A pessoa também tem que trabalhar rápido, pois como o degelo congelados hipocótilo, torna-se flácido e difícil de gerenciar. </li><li> O hipocótilo abraded é mergulhado em água gelada para remover a maior parte do carborundum aderir e depois armazenados em água com gelo, enquanto o hipocótilo restantes são preparadas de uma forma similar. </li><li> O hipocótilo são cortadas no comprimento desejado, geralmente 1,2 centímetros, com uma lâmina de barbear novo single gumes e, em seguida, alinhados em uma lâmina de vidro. </li><li> Agora precisamos de achatar as paredes para remover seiva celular e para facilitar a fixação. A segunda lâmina de vidro é colocado em cima do grupo de 8-10 amostras, formando um sanduíche. Um peso (400-500 g) é colocado em cima da lâmina de vidro por 5 min. Para o peso que usam rotineiramente um copo contendo uma quantidade adequada de água. </li><li> Etapa opcional: Dependendo do experimento, o hipocótilo pode ser inactivado com um tratamento térmico breve a este ponto. Para fazer isso, vincular a lâminas de vidro, juntamente com um par de faixas de borracha, coloque o conjunto em um recipiente com 100 mL de água desionizada à temperatura ambiente e colocá-lo em um forno de microondas na potência máxima. Com o nosso forno de microondas a água começa a ferver em cerca de 50 s e paramos no microondas 15 s após a ebulição começa. A água quente é derramada rapidamente fora e substituída por água fria para parar a desnaturação. Você pode ter de variar esses horários, como seu micro pode ser diferente da nossa. Com o aquecimento excessivo das amostras tornam-se fracos e quebram com facilidade. Com o aquecimento insuficiente expansin endógena não é inativada e as amostras de parede manter alguma capacidade de resposta ao pH ácido. </li></ol> Parte 3: setup Extensômetro <ol><li> As amostras de parede são agora fixada em um extensômetro força constante. Este é um dispositivo feito sob medida, que consiste de uma cuba de acrílico para a realização da final da amostra basal de parede e uma braçadeira móvel unida à extremidade apical da amostra. O grampo móvel é montado na extremidade de uma haste que passa através das bobinas aberto de um sensor de posição, um LVDT ou &quot;Linear Variable Differential Transformer &#39;, que eletronicamente detecta a posição de um pequeno cilindro de metal, ou&#39; core &#39;, que é anexado à haste. A extremidade superior da haste é ligada a uma alavanca com um contrapeso ajustável. Esta alavanca exerce um valor ajustável de força para cima sobre a amostra parede. A força é ajustado pela adição ou remoção de pesos de metal calibrada até o final da alavanca. </li><li> Voltar para a amostra de parede - o fim basal da amostra hipocótilo é pego com uma pinça fina e ~ 2-3 mm da extremidade apical é colocado entre as mandíbulas abertas do grampo móvel. Este grampo é um grampo jacaré de mola de metal cujas mandíbulas são revestidas com plástico para evitar o contato direto entre a superfície do metal ea solução-tampão ou a amostra parede. Em nossa experiência de íons metálicos pode lixiviar do grampo e inibir a capacidade da parede para estender, e assim mantemos o metal coberto. </li><li> Segurando o conjunto de grampo móvel em uma mão, o fim basal da amostra parede agora é manobrado entre as duas peças articuladas na célula, Plexiglas e cuvetepeças são reunidas e aparafusadas, garantindo com isso a extremidade inferior da amostra parede na tina. </li><li> O conjunto de grampo móvel é agora lançado suavemente, permitindo que a força total do contrapesos para ser transferido para a amostra parede. Rotineiramente usamos um contrapeso total de 20 g para as amostras de parede preparados a partir de hipocótilos de pepino. Materiais da parede ou outros experimentos podem requerer diferentes pesos. </li><li> A cuvete é preenchido com tampão (200 uL) ea posição da cubeta movido para cima ou para baixo com um parafuso de ajuste, de modo que o grampo móvel é levada ao extremo inferior da faixa de medição LVDT. Nosso LVDT é conectado a uma unidade de aquisição de dados de um microcomputador, e por isso monitorar a posição LVDT através do computador. Temos oito assembléias LVDT ligado em paralelo com um computador, o que nos permite executar oito amostras de parede simultaneamente. O computador registra a posição de cada um dos conjuntos LVDT uma vez a cada 30 s. </li></ol> Parte 4: Medição de extensão resposta ao pH ácido ou expansin - Resultados Representante <ol><li> [Primeira experiência] Para a medição de ácido induzida por extensão, nós começamos com amostras de parede nativa (isto é, não inativado pelo calor) e tampão neutro é adicionado à cubeta. As amostras de parede se estendem por alguns minutos, em resposta à tensão adicionado, mas o decai extensão para uma baixa taxa depois de alguns minutos. Nosso computador nos permite monitorar a variação no comprimento da amostra (isto é, a mudança de posição do grampo móvel, após o início do experimento) ou podemos monitorar a derivada temporal da posição, em outras palavras, a taxa de extensão . A taxa de extensão estabiliza a um baixo valor com o tempo. </li><li> Depois de ~ 20 minutos, o tampão neutro é removido. Nós usamos um tubo de metal fino, feito de uma agulha hipodérmica calibre grande, conectado a uma bomba de vácuo para remover o tampão rapidamente, com o mínimo de perturbação da parede ou a montagem mecânica. Tampão ácida é então adicionada, às vezes com 1-2 trocas rápidas para garantir a troca completa de tampão ácido. Então sentar e ver a resposta da parede. Tipicamente, podemos detectar a taxa mais rápida de extensão em poucos minutos. Após 60 min geralmente temos informações suficientes para avaliar a resposta de extensão, embora em alguns casos, as medições pode se estender para períodos mais longos. </li><li> [Segundo experimento] Para a medição de expansin induzida extensão da parede celular, começamos com amostras inativado pelo calor parede e tampão ácido é adicionado à cubeta. Como no primeiro experimento, a taxa de extensão da parede celular estabiliza gradualmente para um valor baixo por causa da falta de expansin funcional. </li><li> Depois de ~ 20 minutos, proteína expansin é adicionado à cubeta por &#39;spiking&#39; com o buffer na cuvete com 10-20 uL de uma solução expansin. O expansin penetra rapidamente a amostra da parede celular e em poucos minutos, vemos que a taxa de extensão aumentou. Esta resposta de extensão pode ser seguido por uma hora ou mais. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1263/fig1.png" alt="" width="600" height="469" /> Figura 1: Esquema de procedimentos para a preparação de paredes celulares para avaliar induzida por ácido ou expansin induzida extensão da parede.

<ol><li>Cosgrove, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+long-term+extension+of+isolated+cell+walls+from+growing+cucumber+hypocotyls%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Characterization of long-term extension of isolated cell walls from growing cucumber hypocotyls.</a> Planta. 177, 121-130 (1989).</li>
<li>Rayle, D. L., Cleland, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Acid+Growth+Theory+of+auxin-induced+cell+elongation+is+alive+and+well%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">The Acid Growth Theory of auxin-induced cell elongation is alive and well.</a> Plant Physiol. 99, 1271-1274 (1992).</li>
<li>Cleland, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auxin-induced+growth+of+Avena+coleoptiles+involves+two+mechanisms+with+different+pH+optima%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Auxin-induced growth of Avena coleoptiles involves two mechanisms with different pH optima.</a> Plant Physiol. 99, 1556-1561 (1992).</li>
<li>Cosgrove, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loosening+of+plant+cell+walls+by+expansins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Loosening of plant cell walls by expansins.</a> Nature. 407, 321-326 (2000).</li>
<li>McQueen-Mason, S., Durachko, D. M., Cosgrove, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+endogenous+proteins+that+induce+cell+wall+expansion+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Two endogenous proteins that induce cell wall expansion in plants.</a> Plant Cell. 4, 1425-1433 (1992).</li>
</ol>

Para esta demonstração foram utilizados paredes celulares de hipocótilo do pepino porque eles provaram ser uma fonte confiável de amostras de parede que são fáceis de manusear e que respondem com boa sensibilidade. Nós também tivemos um bom sucesso com paredes de mudas de outras, bem como alguns materiais do supermercado, tais como folhas de espinafre jovens e talos de aipo. Basicamente, o jovem, macio, tecidos vegetais de rápido crescimento tendem a ser facilmente medido com esta técnica, mas resistente, velho, tecidos...

medição usina extensão parede celular (creep) induzida pelo ph ácido e por alpha-expansin

Measuring Plant Cell Wall Extension (Creep) Induced by Acidic pH and by Alpha-Expansin

Paredes celulares de plantas crescendo caracteristicamente apresentam uma propriedade conhecida como &quot;crescimento ácido&quot;, pelo qual significa que elas são mais extensíveis em pH baixo (&lt;5) 1. O hormônio vegetal auxina rapidamente estimula o alongamento celular em caules jovens e tecidos semelhantes ao menos em parte por um mecanismo de crescimento ácido-2, 3. Auxina ativa uma bomba H + na membrana plasmática, causando a acidificação da solução da parede celular. Acidificação da parede ativa expansins, que são endógenas afrouxamento da parede celular-4 proteínas, fazendo com que a parede celular para produzir as tensões de parede criado por pressão de turgor celular. Como resultado, a célula começa a aumentar rapidamente. Esse fenômeno de crescimento ácido &quot;é facilmente medido em isolada (não vivas) espécimes da parede celular. A capacidade das paredes das células se submeter induzida por ácido extensão não é simplesmente o resultado do arranjo estrutural dos polissacarídeos da parede celular (pectinas, por exemplo), mas depende da atividade de expansins 5. Expansins não têm qualquer atividade enzimática e conhecida a única forma de ensaio para a atividade expansin é medir sua indução da extensão da parede celular. Este relatório detalha o video fontes e técnicas de preparação para a obtenção de materiais de parede adequado para ensaios expansin e passa a mostrar induzida por ácido extensão e expansin induzida extensão da parede amostras preparadas a partir de hipocótilos de pepino crescimento. Para obter amostras de células da parede adequados, mudas de pepino são cultivados no escuro, o hipocótilo são cortadas e congeladas a -80 ° C. Hipocótilo congelados são desgastados, achatados, e depois preso na tensão constante em uma tina especial para medições extensômetro. Para medir induzida por ácido de extensão, as paredes são inicialmente tamponada em pH neutro, resultando em baixa atividade de expansins que são componentes das paredes das células nativas. Após a troca de buffer para pH ácido, expansins são ativados e as paredes celulares estender rapidamente. Nós também demonstram atividade expansin em um ensaio de reconstituição. Para esta parte, nós usamos um tratamento térmico breve a desnaturar a expansins nativas nas amostras de parede celular. Estas paredes das células inativadas não se estendem até mesmo em tampão ácido, mas além de expansins para as paredes das células rapidamente restaura a sua capacidade de estender.

Nós demonstramos o uso de um extensômetro de força constante para medir a extensão de longo prazo (creep) de espécimes de plantas parede celular induzida por buffers ácidas e proteína expansin.

Medição Usina Extensão parede celular (Creep) induzida pelo pH ácido e por Alpha-Expansin

As paredes celulares de plantas em crescimento exibem caracteristicamente uma propriedade conhecida como "crescimento ácido", pela qual queremos dizer que são mais extensíveis em pH baixo (< 5) 1. O ...

Aqui demonstramos métodos para medir a extensão e a atividade por meio da geometria de extensão da parede celular. Espécimes adequados de parede podem ser preparados a partir dos hipocótilos de sementes de pepino E TATadas para medir a extensão induzida por ácido, que é catalisada por expansinas endógenas ligadas às paredes celulares nativas. Prendemos as paredes com tampão neutro e um extensômetro; ao mudar para pH ácido, as expansinas são ativadas e as paredes celulares se estendem rapidamente.Também demonstramos um ensaio de reconstrução de expansão. Para esta parte, utilizamos um tratamento térmico breve para desnaturar expansões endógenas. As paredes celulares inativadas pelo calor não se estendem mesmo em tampão ácido, mas a adição rápida de expansão restaura a extensibilidade da parede.Olá, sou Dan De Roko do laboratório do Dr. Daniel Cosgrove, do departamento de biologia da Universidade Estadual da Pensilvânia. Hoje vamos mostrar um procedimento para medir a extensão irreversível ou fluência lenta de paredes celulares vegetais isoladas. Então, vamos começar.Em nossa experiência, abacates jovens hypo provenientes de plântulas de pepino etioladas servem como uma fonte conveniente de material de parede celular. Para esses experimentos, sementes de pepino são semeadas sobre papel úmido em uma caixa à prova de luz, que é mantida em um armário escurecido e em uma sala com temperatura constante ajustada em 26 graus Celsius. Temperaturas entre 22 e 30 graus Celsius também funcionam, mas é importante observar que a temperatura determinará a taxa de crescimento.Quanto mais alta a temperatura, mais rápido os plântulas se desenvolverão. Manter um ambiente de crescimento escuro é essencial, pois até pequenas quantidades de luz afetam tanto a taxa de desenvolvimento das plântulas quanto as propriedades da parede celular que medimos com esta técnica. No terceiro dia, você pode espiar dentro da caixa usando uma luz verde filtrada e fraca para verificar o desenvolvimento das plântulas.Normalmente, ao espiar dentro da caixa no terceiro ou quarto dia, você encontrará plântulas desenvolvidas com cerca de cinco centímetros de comprimento, que é geralmente o que utilizamos em nossos experimentos. Essas plântulas podem ser congeladas a menos 80 graus Celsius antes do uso. Para começar a preparar as amostras de parede celular, pequenos grupos de oito a 10 plântulas cortadas e congeladas são transferidos do congelador para um recipiente isolado contendo um bloco de congelador a menos 80 graus Celsius. Usando uma pasta espessa de pó de carborundum para cobrir o polegar e o indicador, a cobertura de cutícula do hipocótilo é removida secando-se repetidamente o hipocótilo entre o polegar e o indicador.Ao realizar esta técnica, é fundamental usar a quantidade correta de pressão para garantir a permeação da cutícula sem danificar a camada epidérmica. Deve-se também trabalhar rapidamente, pois, à medida que o hipocótilo congelado descongela, ele fica mole e difícil de manipular para remover a maior parte do cárie aderido. O hipocótilo abrasado é mergulhado e então armazenado em água com gelo enquanto os demais hipocótilos estão sendo preparados.Após a remoção da cutícula em todas as plântulas, elas são cortadas ao comprimento desejado, geralmente 1,2 centímetros, com uma lâmina de barbear nova e única, e então alinhadas sobre uma lâmina de vidro após o alinhamento. Uma segunda lâmina de vidro é colocada sobre o grupo de oito a 10 amostras, e um peso de 400 a 500 gramas é colocado sobre a lâmina de vidro por cinco minutos. Normalmente, utilizamos um béquer preenchido com uma quantidade adequada de água.O peso do béquer aplainará as paredes celulares para remover a seiva celular e facilitar a preensão. Dependendo do experimento, os hipocótilos podem ser inativados com um breve tratamento térmico neste momento. Para isso, prendemos as lâminas de vidro juntas com um par de elásticos, colocamos o conjunto em um recipiente com cem mililitros de água desionizada à temperatura ambiente e o colocamos em um forno de micro-ondas em potência máxima com nosso forno de micro-ondas.A água começa a ferver por volta dos 50 segundos, e interrompemos o micro-ondas 15 segundos após o início da fervura; a água quente é rapidamente drenada e substituída por água fria para interromper a desnaturação. O aquecimento ideal fará com que as amostras não apresentem qualquer resposta ao pH baixo, ao mesmo tempo em que não ficam fracas e se rompem facilmente. As amostras da parede são agora fixadas em um extensômetro de força constante X.Este é um dispositivo construído sob medida que consiste em um cubo de plexiglás para segurar a extremidade basal da amostra da parede e um grampo móvel fixado à extremidade APIC da amostra. O grampo móvel é montado na extremidade de uma haste que atravessa as bobinas abertas de um sensor de posição, um LVDT (transformador diferencial variável linear) ou similar. Esse dispositivo detecta eletronicamente a posição de um pequeno cilindro metálico ou núcleo que está preso à haste.A extremidade superior da haste é ligada a uma alavanca com um contrapeso ajustável. Essa alavanca exerce uma quantidade ajustável de força para cima na amostra da parede celular. A força é ajustada adicionando-se ou removendo-se pesos metálicos calibrados na extremidade distal da alavanca para preparar amostras para a medição da expansão da parede celular.A extremidade basal da amostra de hipocótilo é apanhada com pinça fina, de modo que aproximadamente dois a três milímetros da extremidade APIC são colocados entre as mandíbulas abertas do grampo móvel. Este grampo é um grampo tipo jacaré com mola. As mandíbulas metálicas são revestidas com plástico para evitar o contato direto entre a superfície metálica e a solução tampão ou a amostra da parede.Em nossa experiência, íons metálicos podem lixiviar do grampo e inibir a capacidade da parede de se estender, e por isso mantemos o metal coberto. Segurando o conjunto do grampo móvel com uma das mãos, a extremidade basal da amostra da parede é agora posicionada entre as duas peças articuladas da vete de plexiglass, e as peças da vete são unidas e aparafusadas firmemente, prendendo assim a extremidade inferior da amostra da parede na vete. O conjunto do grampo móvel é então liberado suavemente, permitindo que toda a força dos contrapesos seja transferida para a amostra da parede. Usamos rotineiramente um contrapeso total de 20 gramas para amostras de parede preparadas a partir de pepino, hipocótilos.Outros materiais de parede ou experimentos podem exigir pesos diferentes. O qve é preenchido com tampão e a posição do QVE é movida para cima ou para baixo com um parafuso de ajuste, de modo que o grampo móvel seja levado até a extremidade inferior da faixa de medição do LVDT. Nosso LVDT está conectado a uma unidade de aquisição de dados do computador.Temos oito conjuntos de LVDT conectados em paralelo a um computador, o que nos permite analisar oito amostras de parede simultaneamente. O computador registra a posição de cada conjunto de LVDT uma vez a cada 30 segundos para medição da extensão induzida por ácido. Começamos com amostras nativas de parede que não foram inativadas pelo calor, e tampão neutro é adicionado ao recipiente.As amostras de parede se estendem por alguns minutos em resposta à tensão aplicada, mas a extensão decai para uma taxa baixa. Após alguns minutos, nosso computador nos permite monitorar a alteração no comprimento da amostra, ou seja, a mudança na posição do grampo móvel após o início do experimento, ou podemos monitorar a derivada temporal da posição. Em outras palavras, a taxa de extensão.A taxa de alongamento estabiliza em um valor baixo ao longo do tempo. Após aproximadamente 20 minutos, o tampão neutro é removido utilizando um tubo metálico fino feito a partir de uma agulha hipodérmica de grande calibre, que é conectada a uma bomba de vácuo. Para remover o tampão rapidamente.A montagem permite que o tampão seja removido com mínima perturbação da parede ou da montagem mecânica. Em seguida, adiciona-se o tampão ácido, às vezes com uma a duas trocas rápidas para garantir a troca completa para o tampão ácido. Então, aguardamos e observamos a resposta da parede.Normalmente, conseguimos detectar a taxa mais rápida de alongamento em poucos minutos. Após 60 minutos, geralmente temos informações suficientes para avaliar a resposta de alongamento, embora em alguns casos as medições possam se estender por períodos mais longos. Para a medição do alongamento da parede celular induzido por expansão, iniciamos com amostras de parede inativadas pelo calor e adicionamos tampão ácido ao qve.Como no primeiro experimento, a taxa de extensão da parede celular estabiliza-se gradualmente em um valor baixo devido à falta de expansão funcional. Após aproximadamente 20 minutos de expansão, a proteína é adicionada ao Q vet por meio da adição de 10 a 20 microlitros de uma solução de expansão ao tampão no Q vet. Considerando que a cutícula foi removida, a expansão penetra rapidamente na amostra da parede celular, e em poucos minutos observa-se que a taxa de extensão aumentou.Essa resposta de alongamento pode ser acompanhada por uma hora ou mais. Acabamos de mostrar como medir o alongamento da parede celular devido a expansinas endógenas e à adição de expansinas. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de manter as vibrações mecânicas e as flutuações de temperatura no mínimo, pois elas gerarão ruído nas curvas de alongamento.É isso aí. Obrigado por assistir e boa sorte com seus ensaios de alongamento.

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Descrevemos um método para mapear propriedades mecânicas de tecidos vegetais usando um microscópio de força atômica (AFM). Nós nos concentramos em como registrar as mudanças mecânicas que ocorrem nas paredes celulares durante o desenvolvimento da planta em mesoescala de campo amplo, permitindo que essas mudanças sejam correlacionadas com o crescimento e a morfogênese.

Mapeamento baseado em AFM das propriedades elásticas de paredes celulares: em tecido, os celulares, e as Resoluções Subcelulares

Sinalização de Ca2 + regula diversos processos biológicos em plantas. Aqui apresentamos abordagens para monitorar o estresse abiótico induzida Ca espacial e temporal 2 + sinais em células e tecidos, utilizando os codificados geneticamente Ca2 indicadores aequorin ou case12 Arabidopsis.

Medindo espacial e temporal Ca 2 + Sinais em Arabidopsis Plantas

Um novo protocolo de imagem foi desenvolvido usando um atuador mecânico acionado por motor personalizado para permitir a medição de respostas em tempo real à tensão mecânica em células vivas. Relevante para a mecanobiologia, o sistema pode aplicar deformações de até 20%, permitindo imagens quase em tempo real com microscopia de força confocal ou atômica.

Imagens de células vivas durante Mecânica estiramento

A celulose cristalina é um constituinte importante da parede celular da planta. No entanto, sua quantificação em uma resolução celular é tecnicamente desafiadora.  Aqui, relatamos o uso de tecnologia de luz polarizada e seções de choque radicular para obter informações da composição da parede celular em uma resolução espaço-temporal.

Quantificação de alta resolução Celulose cristalina Acumulação em<em&gt; Arabidopsis</em&gt; Raízes para monitorar celular específico do tecido da parede Modificações

Os protocolos descritos aqui facilitam a investigação conveniente das respostas bacterianas do etileno utilizando ácido 2-cloroetilfosfônico (CEPA).  O etileno é produzido in situ através da decomposição do CEPA em um meio de crescimento bacteriano aquoso, contornando a necessidade de gás etileno puro.

Utilizando o composto libertador de etileno, ácido 2-cloroetilfosfônico, como uma ferramenta para estudar a resposta do etileno em bactérias

Aqui, nós apresentamos a microscopia de força atômica (AFM), operada como uma ferramenta do nano-e do micro-Indentation em pilhas e em tecidos. O instrumento permite a aquisição simultânea de topografia de superfície 3D da amostra e suas propriedades mecânicas, incluindo a parede celular módulo de Young, bem como a pressão de turgor.

Uso da microscopia de força atômica para medir propriedades mecânicas e pressão de turgor de células vegetais e tecidos vegetais

Aqui descrevemos um protocolo para imagens de células vivas do citoesqueleto de microtúbulos cortical no meristem apical de tiro e monitorando sua resposta às mudanças nas forças físicas.

Imagem celular ao vivo do citoesqueleto microtubulo e manipulação micromecânica da Arabidopsis Shoot Apical Meristem

O protocolo de indentação por microscopia de força atômica oferece a possibilidade de dissecar o papel das propriedades físicas da parede celular de uma determinada célula de um tecido ou órgão durante o crescimento normal ou restrito (ou seja, sob déficit hídrico).

Microscopia de Força Atômica para Estudo das Propriedades Físicas de Células Epidérmicas de Raízes Vivas de Arabidopsis

Estudos da biomecânica da parede celular são essenciais para a compreensão do crescimento e morfogênese das plantas. O protocolo a seguir é proposto para investigar paredes celulares primárias finas nos tecidos internos de órgãos de plantas jovens usando microscopia de força atômica.

Caracterizando as Propriedades Mecânicas da Parede Celular Primária em Órgãos de Plantas Vivas Usando Microscopia de Força Atômica

Este manuscrito apresenta um protocolo detalhado para a imagem da dinâmica da parede celular 3D do tecido de musgo vivo, permitindo a visualização do descolamento das paredes celulares em mutantes ggb e do espessamento dos padrões da parede celular no tipo selvagem durante o desenvolvimento durante um longo período.

Imagem de lapso de tempo 3D da dinâmica da parede celular usando Calcofluor no musgo Physcomitrium patens

Este relatório descreve os métodos fundamentais usados para cultivar e manipular experimentalmente a alga estreptófita unicelular, Penium margaritaceum. Ele também fornece protocolos fundamentais de imagens baseadas em microscopia, incluindo marcação de células vivas com anticorpos monoclonais e outras sondas fluorescentes e microscopia eletrônica de varredura.

Protocolos de Triagem Experimental, Imunocitoquímica e Técnicas de Imagem Baseadas em Microscopia para Penium margaritaceum

Aprenda a medir a extensão da parede celular vegetal (creep) induzida por pH ácido e alpha-expansina usando extensômetro de força constante. Este método demonstra a atividade de expansinas em amostras de hipocótilo de pepino.

Medição Usina Extensão parede celular (Creep) induzida pelo pH ácido e por Alpha-Expansin

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