29 de setembro de 2009
Prática de PAAF (PAAF) por estagiários é relativamente difícil, devido à falta de uma lesão facilmente disponível, apropriado. Preparação de uma lesão phantom AV para a prática do procedimento de PAAF e proficiência masterização é relativamente fácil.
Para preparar uma lesão simulada, corte um pedaço de papelão de seis por seis polegadas para servir como placa base. Cubra a placa base com uma camada de massa vedante com meio centímetro de espessura. Em seguida, corte um pedaço de banana com dois centímetros e meio de comprimento e pressione-o suavemente na massa vedante.
A banana serve como núcleo do lesão simulada. Incorpore o núcleo à massa corrida sem aprisionar bolhas de ar. Cubra o núcleo com um pedaço de filme plástico e modele-o em um montículo liso. Deixe a montagem com massa corrida curar em local aquecido após a massa estar firme e completamente curada.
Retire o filme plástico e pratique a competência em punção por agulha fina para recuperar o espécime do interior da banana e pratique a confecção de esfregaços. Sou o Dr. Vino, da Divisão de Citopatologia do Departamento de Patologia do Medical College of Wisconsin. E eu sou o Dr. George Varszegi, médico residente em Citopatologia no mesmo departamento.
Hoje demonstraremos um procedimento para preparar uma lesão simulada com o objetivo de praticar a proficiência na realização do procedimento de FNAV, utilizando ferramentas e materiais simples e facilmente disponíveis. Geralmente utilizamos essa técnica para introduzir residentes de patologia e médicos-felizes em citopatologia ao procedimento final de biópsia por aspiração. Posteriormente, durante seu treinamento, os médicos-felizes e residentes aperfeiçoarão suas habilidades realizando aspirações finas em lesões clinicamente palpáveis sob a supervisão de docentes.
Então vamos começar. Prepare a lesão simulada um ou dois dias antes da sua sessão planejada de prática de PAAF. Antes de iniciar, tenha prontos na bancada um pedaço de papelão, uma pistola de silicone, uma banana sem descascar e filme plástico.
O primeiro passo para preparar uma lesão simulada é cortar um pedaço de papelão de seis por seis polegadas para servir como placa de base. Em seguida, corte um segmento de banana com aproximadamente duas polegadas de comprimento, que servirá como o núcleo da lesão simulada. Depois que o núcleo da lesão simulada estiver pronto, pegue uma pistola de vedação e espalhe uma camada de vedante com cerca de meia polegada de espessura sobre a placa de base.
Pressione levemente o núcleo da lesão simulada na massa corrida úmida. Agora, adicione mais massa corrida sobre o núcleo da lesão simulada para embuti-lo completamente. Tenha cuidado para não aprisionar bolhas de ar na massa corrida enquanto usa luvas.
Espalhe a massa selante sobre o núcleo da lesão simulada manualmente para garantir que ele esteja completamente envolvido. Agora, cubra o montículo com um pedaço de filme plástico de 15 por 15 cm e modele-o em uma forma convexa lisa. Coloque o montículo de massa selante em um local aquecido para curar por seis a oito horas a mais do que o tempo de cura recomendado para a marca específica de massa selante que você está utilizando.
O vedante endurece quando exposto ao ar. Você pode deixar o montículo em temperatura ambiente acima de 60 graus Fahrenheit ou incubá-lo a 37 graus Celsius para acelerar a cura. Após a cura, o vedante fica firme e você pode facilmente remover o filme plástico.
A lesão simulada de FNA agora está pronta para ser utilizada no treinamento do procedimento de FNA. Agora que você preparou sua lesão simulada e ela já curou, pode utilizá-la para praticar o procedimento de punção aspirativa por agulha fina (FNAB). Aqui estamos utilizando o coletor de tecidos com válvula funcional, mas você pode usar qualquer sistema de FNA, resumidamente.
O THFB consiste em uma agulha para perfurar a amostra, um suporte da agulha para coletar o material aspirado, uma seringa para controlar a pressão dentro do dispositivo e uma válvula para conectar e desconectar o suporte da agulha da seringa. Comece preparando o conjunto de AAF com a válvula conectando o suporte da agulha à seringa fechada. Agora, puxe o êmbolo da seringa para criar um vácuo dentro da câmara da seringa.
Em seguida, insira a ponta da agulha na lesão. Abra a válvula para conectar o hub da agulha ao vácuo no interior do corpo da seringa. O vácuo atrai o material da lesão para dentro da agulha e para o hub da agulha.
Mova a agulha para frente e para trás na lesão para aspirar uma amostra representativa dos componentes celulares. Mantenha o vácuo e colete de diferentes áreas da lesão inserindo a agulha na lesão em diferentes direções. Quando terminar a coleta, gire a válvula para desconectar o vácuo no corpo da seringa e equalizar a pressão com as condições externas abrindo a válvula.
Em seguida, gire a válvula para desconectar do exterior e do corpo da seringa. Remova a agulha da lesão com a válvula fechada. Manter a válvula fechada preserva uma leve pressão negativa na extremidade do hub e impede que a amostra retorne para a lesão por ação capilar.
Comparável ao fenômeno de pipetagem, sua amostra de tecido agora está segura no hub da agulha. Após retirar a agulha do desprendimento, aspire o conteúdo para a lâmina de vidro para preparar um esfregaço direto. Uma vez que você tenha desprendido uma gota do aspirado sobre sua lâmina, pode espalhá-la usando uma variedade de métodos, dependendo da natureza do aspirado; normalmente espalhamos a amostra entre duas lâminas usando o método mostrado aqui.
Se uma amostra real for diluída com sangue, remova o excesso de sangue inclinando a lâmina antes de colocar a segunda lâmina de vidro por cima. Se o aspirado for predominantemente uma suspensão sem microfragmentos, como nas lesões linfoproliferativas, ele poderá ser espalhado pelo método de sulcamento, no qual a borda de uma lâmina é usada para criar uma série de esfregaços semelhantes a sulcos sobre outra lâmina, ou poderá ser usado o método de espalhamento, no qual uma lâmina é utilizada para criar um filme sobre uma segunda lâmina. Após preparar os esfregaços, você poderá processá-los e fixá-los de diversas maneiras.
Para diferentes métodos de coloração, a melhor abordagem é secar ao ar todas as extensões rapidamente, dentro de um a dois minutos. A secagem das extensões mais espessas e úmidas pode ser acelerada movendo as lâminas lateralmente no ar ou, preferencialmente, com um secador de cabelo ou um pequeno ventilador portátil movido a bateria. Ao usar um ventilador, tenha cuidado para evitar a aerosolização, especialmente em lesões que se suspeita serem infecciosas; uma vez que as extensões estiverem secas, cora-as conforme apropriado para seus experimentos.
Aqui estamos demonstrando a coloração de esfregaços secos ao ar com o corante D quick, que é uma das colorações de Romanowski quanto aos tempos. Siga as instruções do fabricante. Verificamos que a secagem ao ar melhora significativamente a nitidez da coloração, como mostrado neste exemplo de esfregaços colorados com Papanicolaou.
A análise dessas colorações iniciais determinará testes adicionais que você poderá desejar realizar, como microscopia eletrônica de bloco de células eletivo, culturas de microbiologia ou outros. A conclusão bem-sucedida do procedimento com lesão simulada permitirá a aspiração adequada do material da lesão, neste caso, material vegetal pastoso de banana. Esse material pode ser espalhado em lâminas de vidro para praticar espalhamento e coloração.
Acabamos de mostrar como preparar uma lesão simulada para praticar a competência em PAAF. Ao realizar este experimento, é importante lembrar que você deve preparar a lesão simulada pelo menos 36 horas antes da sessão de avaliação de competência, pois o gel vedante precisa de algum tempo para solidificação. Outro ponto importante é a aplicação e liberação do vácuo em uma sequência adequada para obter material aspirado ideal durante a realização do procedimento de PAAF.
Então é isso. Obrigado por assistir e boa sorte nos seus treinos. E muito obrigado.
Este artigo discute a preparação de uma lesão simulada para o treinamento em biópsias por aspiração com agulha fina (BAAF), o que é essencial para os estagiários. O método descrito é simples e utiliza materiais facilmente disponíveis.
Este método fornece um modelo de fantasma de baixo custo e reprodutível para o treinamento em biópsia por aspiração com agulha fina (BAAF), preenchendo uma lacuna crítica no desenvolvimento de habilidades pré-clínicas para médicos residentes em patologia. Ao permitir a prática repetida da aspiração tecidual, preparação de esfregaços e fluxos de trabalho de coloração, ele apoia a aquisição precoce de competências em citopatologia diagnóstica. O modelo aumenta a preparação para o treinamento antes da exposição a lesões clínicas, reduzindo a variabilidade no desempenho dos residentes e apoiando a avaliação padronizada de habilidades entre instituições.
O método integra-se ao fluxo de trabalho inicial de descoberta ao treinar pessoal nas técnicas de coleta de lesões antes da interação com modelos pré-clínicos de doenças, garantindo a aquisição confiável de espécimes para análises posteriores.