Name: Executar e Processamento de FNA Pad Fat Anterior para amilóide (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-10-30T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Aprenda a realizar biópsia por aspiração de gordura anterior para diagnóstico de amiloidose sistêmica. Este método minimamente invasivo inclui anestesia local e processamento adequado das amostras para microscopia, garantindo resultados diagnósticos precisos.

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Agradecemos a Sra. Bonnie Phetteplace, RN para a assistência durante o vídeo da demonstração gráfica procedimento PAAF.

Introdução Amiloidose sistêmica é uma doença altamente variável que se refere à deposição extracelular de várias proteínas que são referidos coletivamente como amilóide. Deposição destas fibras de amilóide beta pregueada com configuração leva a várias apresentações clínicas dependendo dos órgãos envolvidos. As manifestações de maior relevância clínica de amiloidose sistêmica são observadas quando há envolvimento de órgãos importantes como coração, fígado e / ou renal. Historicamente, esses órgãos envolvidos seria biópsia para demonstrar a presença de amilóide. Estes procedimentos invasivos realizados moderadamente um risco significativo incluindo hemorragia. Aspiração almofada de gordura já foi mostrado para fornecer um método confiável e não-invasivos para a detecção de amilóide na amiloidose sistêmica 1. Este procedimento é essencialmente comparável à lipoaspiração da gordura subcutânea na parede abdominal anterior, sob anestesia local para recuperar o tecido fibro para avaliar depósitos de amilóide escassa nas paredes de pequenos vasos sanguíneos 2. O método mais utilizado para a identificação de amilóide no tecido continua a ser o padrão de birrefringência característica verde-maçã visto quando seções Congo manchada de vermelho são visualizadas em um microscópio de luz polarizada 3. Quando a aspiração almofada de gordura é realizada, manchas vermelho Congo pode ser feito em qualquer direta slides manchada ou preparação de um bloco de células do tecido adiposo aspirado. No entanto, pacientes em estágios iniciais de amiloidose têm depósitos de amilóide escassa, o que reduz a sensibilidade do vermelho Congo seções célula corada bloco 4,5. Avaliação ultra-estrutural dos aspirados almofada de gordura por microscopia eletrônica tem melhor reprodutibilidade e sensibilidade melhorada 4. Portanto, recomenda-se a submeter todas as aspira gordura abdominal para ambos preparação de um bloco de celas e para a realização de microscopia eletrônica de 2. Aspiração gordura abdominal é um custo relativamente baixo e método não invasivo para a obtenção de tecido para diagnosticar amiloidose sistêmica. Este artigo descreve procedimento de aspiração de gordura pad, juntamente com detalhes sobre o processamento da amostra para enviar amostra para ambos os coloração vermelho Congo e avaliação ultra-estrutural por microscopia eletrônica. Neste vídeo, demonstramos este procedimento reprodutível e simples para recuperar material de diagnóstico ideal. 1. Realizar a FNA de Pad Fat Anterior A. anestesiados da área local (Figura 1 e 2) <ol><li> Usando compressas de álcool ou o agente de limpeza de pele preferido por uma instituição particular, limpar a pele na área quadrante inferior do abdômen lateral à linha média e abaixo do umbigo (Figura 1). </li><li> Marca uma área em forma rombóide cerca de 2 x 2 polegadas, como mostrado na Figura 1 com uma caneta de marcação. </li><li> Aspirar cerca de 10 mL de lidocaína a 1% com agulha 18G. Anexar a 1 25G ½ polegadas de agulha para a seringa. Remover o ar tocando a seringa na posição vertical, enquanto pressiona o êmbolo até que o líquido é dispensado e não há bolhas de ar estão presentes. </li><li> Anestesiar ao longo das fronteiras da área rombóide já está marcado como mostrado na Figura 2. Comece por inserir a agulha 25G logo abaixo da pele no ponto A e empurre cuidadosamente a agulha por via subcutânea a ponto X. Puxe o êmbolo da seringa para garantir que você não está dentro de um vaso. Em seguida, empurre lentamente o êmbolo para se infiltrar até 2,5 mL de lidocaína (cerca de ¼ da lidocaína em seringa de 10 mL) ao retirar a agulha para o ponto A, sem deixar que a agulha sair da pele no ponto A (Figura 2A3). Com a agulha ainda sob a pele mudar a direção para o ponto Y (Figura 2A4) e empurre a agulha por via subcutânea a ponto Y (Figura 2b1). Como antes, confirmar que a agulha não está em um navio e dispensar cerca de 2,5 mL de lidocaína, enquanto lentamente retirar a agulha através do ponto A. (Figura 2b3 através 2B4) Repita os passos similares a partir do ponto B e lidocaína distribuição subcutânea a partir de pontos para B X e B para Y (Figura 2c1 através 2d4). Prevenir o sangramento do pica A e B pela aplicação firme da parte calibre estéril. </li><li> Você pode agora verificar que a área é anestesiada pelo tocando levemente a pele dentro do rombóide anestesiados por uma dica / canto de pedaço de gaze de algodão, comparando com a pele não anestesiados adjacentes. </li></ol> B. Realizar aspiração almofada de gordura (Figura 3) (Aplicação de anestesia local antes da realização de aspiração almofada de gordura pode ser ignorada, dependendo das preferências regionais e individuais. Corretamente realizada PAAF procedimento de aspiração de gordura pad anterior pode ser completado em uma picada. No entanto, dependendo do limiar de dor de cada paciente , manobras de agulha 18G e voltando para o tecido adiposo subcutâneo é relativamente distrescantar. O método descrito aqui anestesiados alcança o efeito em apenas duas picadas com agulha 25G e evita a dor com maior tolerância ao procedimento.) <ol><li> Montar 18G 1 ½ polegadas de agulha em uma seringa de 10 mL. Monte o conjunto da seringa de agulha nas garras seringa ("grip PAAF / pistola") para a aplicação adequada e liberação de vácuo. </li><li> Insira a ponta da agulha para a gordura subcutânea dentro da área limpa e anestesiados rombóide (Figura 3a). </li><li> Retrair completamente o êmbolo da seringa com a agulha inserida no tecido subcutâneo para gerar vácuo (Figura 3b). </li><li> Manter o vácuo e manobrar a agulha e para trás em várias direções para a gordura subcutânea (Figura 3c através 3i). Cada curso deve ser tão longo quanto possível, com o comprimento da agulha selecionadas, sem deixar que a agulha sair da pele. Máxima de amostragem é conseguido através da mudança de direção com cada curso (Figura 3i). É importante manter a direção da agulha tangente ao serosa e paralelo à superfície da pele para evitar a perfuração da cavidade peritoneal. </li><li> O tecido fibro-adiposo se acumula na seringa. Fragmentos de tecido fibro uma vez o suficiente (até 1 mL de amostra de sangue rico fragmentos mistos) são recuperados, a liberação do vácuo completamente e retire a agulha (Figura 3k). </li><li> Que o paciente ou o assistente aplicar pressão firme sobre a área de processo com uma almofada de gaze para evitar o extravasamento de sangue. </li></ol> 2. Processamento de amostras <ol><li> Coloque pelo menos 5-6 fragmentos de tecido fibro-adiposo na solução de glutaraldeído para microscopia eletrônica (Figura 4B). </li><li> Dependendo do protocolo institucional, um esfregaço alguns dos fragmentos de tecido fibro-adiposo podem ser preparadas por espalhá-las entre dois slides (Figura 4A). </li><li> O restante do material é permitida a coagular na seringa (isso pode demorar 5-7 minutos, dependendo do tempo de coagulação) (Figura 4C). </li><li> Aspirar formalina a 10% dentro da seringa para que o material de tecido coagulado fibroadiposo é desalojado da parede da seringa e flutuantes livres (Figura 4C2). Retire o êmbolo da seringa (Figura 4C3) e transferir o tecido fibro-adiposo coagulado no recipiente formalina a 10% da extremidade aberta da seringa em frente à extremidade do bico (Figura 4C4). </li><li> Rotular os recipientes de forma adequada e submeter o glutaraldeído para microscopia eletrônica e do formol para a H &amp; E seção e coloração vermelho Congo para avaliação sob microscopia de polarização. Se esfregaços são preparados, eles podem ser processados ​​de acordo com o protocolo do laboratório individual. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1747/1747fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Área a ser anestesiada para a PAAF de gordura abdominal anterior. <img src="/files/ftp_upload/1747/1747fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Anestesiados da área local. <img src="/files/ftp_upload/1747/1747fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Realizar PAAF de gordura abdominal anterior. <img src="/files/ftp_upload/1747/1747fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Processamento de gordura abdominal anterior aspirar a ser submetida ao laboratório para detectar depósitos de amilóide. 3. Resultados representante <img src="/files/ftp_upload/1747/1747fig5.jpg" alt="Figura 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 5"> Figura 5. Amilóide na parede dos pequenos vasos sanguíneos em fragmentos de tecido fibro-adiposo. Tecido fibro-adiposo foi formalina processados ​​parafina, incorporado, corados com vermelho Congo, e examinadas por microscopia de luz polarizante. Amilóide na parede dos pequenos vasos sanguíneos mostra birrefringência verde-maçã (seta branca). <img src="/files/ftp_upload/1747/1747fig6.jpg" alt="Figura 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 6"> Figura 6. Tecido falta amiloidose. A maçã birrefringência verde é ausente em tecidos de um paciente diferente sem amiloidose. Birrefringência azul (seta branca) de fibras colágenas, geralmente estão presentes em quase todos os espécimes. <img src="/files/ftp_upload/1747/1747fig7.jpg" alt="Figura 7" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 7"> Figura 7. Fibrilas amilóides consistente com na parede dos vasos sanguíneos. Micrografia eletrônica da reta, não-ramificadas, aleatoriamente espalhadas 80-10 nm de diâmetro fibrilas amilóides formado por na parede dos vasos sanguíneos.

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Diagnóstico de amiloidose é geralmente obtida com uma biópsia do tecido dos órgãos afetados, como o rim, fígado e / ou coração. Esta abordagem tem rendimento diagnóstico de alta, no entanto, é invasivo e pode estar associada a complicações, incluindo hemorragia 2. Retal, gengival e biópsias de medula óssea foram preferidas para o diagnóstico como abordagem relativamente menos invasivo em 1960 6,7,8. Pad aspiração de gordura abdominal foi relatada em 1973 como um cofre, procedimento minimamente invasivo, simples e menos dispendiosa para o diagnóstico do tecido de amiloidose sistêmica 1. No entanto, os detalhes do procedimento e abordagem ao processamento da amostra recuperada não é coerente relatados. Este vídeo eo artigo descrever o procedimento passo a passo. A abordagem para a detecção de amilóide na aspiração almofada de gordura, da mesma forma, também não é bem padronizado, com poucos estudos comparando e avaliando várias abordagens 1,5,6,7,8. Avaliação do anterior aspira gordura abdominal com coloração vermelho congo é menos sensível com reprodutibilidade menor interobservador especialmente nos casos iniciais de amiloidose com depósitos de amilóide escassos 5. Imuno-histoquímica realizada em formol fixa parafina bloco de celas seções e Congo fluorescência vermelha realizado em esfregaços citológicos têm sido relatadas para melhorar a sensibilidade diagnóstica 9,10. Microscopia eletrônica melhora a detecção e identificação de fibrilas amilóides escassa nas paredes de pequenos vasos sanguíneos no tecido fibro-adiposo em gordura pad aspirados 4, 5. Com base nessas informações, este artigo descreve o processamento da amostra para preparar blocos de células (para avaliação de vermelho Congo seções célula corada bloco sob microscópio de luz polarizada para o diagnóstico birrefringência verde maçã e também para imuno-histoquímica como indicado) e para microscopia eletrônica. No entanto, dependendo da abordagem escolhida para a avaliação da amostra para amilóide, que pode ser submetido a citologia preparação de esfregaço, a preparação de blocos de células, e processamento para microscopia eletrônica. Alguns laboratórios realizam os testes nos esfregaços preparados a partir dos fragmentos de tecido fibro aspirado e corados com vermelho Congo para estudar a 10 de fluorescência. Geralmente em uma amiloidose tarde, a microscopia óptica com vermelho Congo microscopia de polarização pode ser suficiente, no entanto, nos estágios iniciais da doença coloração vermelho Congo com microscopia de polarização em seções bloco de células é menos sensível e confiável para a gordura pad aspirados 4,5,11 . Outras colorações especiais incluindo Thioflavin T pode ser usado com limitações semelhantes. Outras abordagens para detectar amilóide incluir a avaliação do esfregaço de aspirado de amilóide com vermelho Congo microscopia de polarização e fluorescência 10. Em nossa experiência este método é menos reprodutíveis. Avaliação dos vasos sanguíneos na almofada de gordura para amilóide por microscopia eletrônica supera estas limitações 4,11. Caracterização mais de amilóide foi relatado pela imunomicroscopia 12, no entanto, estes métodos podem não ser amplamente disponível em um ambiente de cuidados não-superior. Agulhas usadas para a realização de procedimentos de aspiração podem ser classificados de acordo com seus tamanhos de bitola em multa (21-25G), intermediária (18-20G) e grandes (por exemplo-14G) 11. Anterior aspirações gordura abdominal foram relatados para ser executada usando calibres variáveis ​​que vão desde intermediária (18 a 20G) de multa (21 a 22G) 2,10. A maioria das lesões de massa são aspirados com agulhas mais finas calibre (como 25G) para obter boa esfregaços citológicos, juntamente com passagens adicionais com agulha maior calibre (como 18G) para recuperar amostra adicional para os blocos de células. Durante a aspiração almofada anterior de gordura, o tecido fibro coesa não aspirar bem com agulhas mais finas. Preparação celular bloco e microscopia eletrônica são importantes para a avaliação de paredes de pequenos vasos sanguíneos em fragmentos de tecido fibro no aspirado de gordura. Agulhas bitola mais larga (como 18G) são recomendados para produzir material adequado de diagnóstico 2,10. Como o procedimento é comparável com a PAAF convencional, a aspiração de gordura abdominal é referida como PAAF, embora agulhas bitola mais larga pode ser usado para executá-lo 5.

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Safwan S. Jaradeh
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Safwan S. Jardeh

Erratum: Performing and Processing FNA of Anterior Fat Pad for Amyloid

O algodão, as compressas de gaze, caneta de marcação, 10 mL seringas x2, lidocaína a 1% (anestésico local lidocaína-Se é usado sozinho, faz com que uma sensação de queimação inicial após a instilação. Isto pode ser evitado usando uma mistura 1:1 de 1% lidocaína e 1% de sódio bi-carbonato), calibre 18 (G) 1 ½ polegadas x2 agulhas (para a realização de PAAF), 25G 1 ½ polegadas de agulha (para injetar anestésico local), FNA titular seringa (&quot;arma&quot;), curativo, frasco de glutaraldeído (para microscopia eletrônica), e biópsia recipiente de formol a 10%.

executar e processamento de fna pad fat anterior para amilóide

Performing and Processing FNA of Anterior Fat Pad for Amyloid

Historicamente, as biópsias coração, fígado e rim foram realizados para demonstrar os depósitos de amilóide na amiloidose. Como a apresentação clínica da doença é muito variável e não-específicos, os riscos associados dessas biópsias são grandes demais para o rendimento diagnóstico. Outros sites que têm um menor risco de biópsia, como a pele ou gengival, também são relativamente invasivo e caro. Além disso, estas biópsias não pode ter sempre os depósitos de amilóide suficiente para estabelecer um diagnóstico. Aspiração almofada de gordura tem demonstrado boa correlação clínica com baixo custo e mínima morbidade. No entanto, não existem protocolos padronizados para realizar este procedimento ou o processamento do espécime aspirado, o que leva a resultados variáveis ​​e nonreproducible. A modalidade mais utilizada para a detecção de amilóide no tecido é uma birrefringência verde-maçã em seções Congo manchada de vermelho usando um microscópio de luz polarizada. Esta técnica requer a preparação de células bloco de material aspirado. Infelizmente, pacientes em fase inicial de amiloidose têm quantidades mínimas de amilóide que reduz a sensibilidade do vermelho Congo seções célula corada bloco de aspirados gordura abdominal. Portanto, a avaliação ultra-estrutural dos aspirados almofada de gordura por microscopia eletrônica deve ser utilizado, dada a sua maior sensibilidade para a detecção de amilóide. Este artigo demonstra um procedimento simples e reprodutível para a realização de aspiração de gordura pad anterior para a detecção de amilóide utilizando tanto Congo coloração vermelha das seções bloco de células e microscopia eletrônica para identificação ultra-estrutural.

Aspiração gordura abdominal é um preferido, abordagem de custo minimamente invasivo e de baixo, em comparação com outros métodos para detectar amilóide para o diagnóstico de amiloidose sistêmica. Este artigo vídeo demonstra um esquema processual para a realização de aspiração de gordura pad com o processamento adequado da amostra para o resultado ideal de diagnóstico.

Executar e Processamento de FNA Pad Fat Anterior para amilóide

Historicamente, biópsias de coração, fígado e rim eram realizadas para demonstrar depósitos de amiloide na amiloidose. Visto que a apresentação clínica desta...

Este vídeo demonstra a punção com agulha fina, a biópsia do coxim adiposo anterior e um procedimento para processamento das amostras de biópsia para microscopia. A pele na região do quadrante inferior do abdômen, lateral à linha média e abaixo do umbigo, é limpa e uma área com formato romboidal é demarcada com uma caneta marcadora. A área local é anestesiada e realiza-se uma biópsia do coxim adiposo anterior por punção com agulha fina.Cinco a seis fragmentos do tecido fibroadiposo são transferidos da seringa de biópsia para solução de glutaraldeído, e o material remanescente é deixado coagular na seringa. Formalina a 10% é aspirada para dentro da seringa e o êmbolo é removido para transferir o tecido fibroadiposo coagulado para formalina a 10%. Olá, sou o Dr. Ham, do Departamento de Patologia da Faculdade de Medicina de Wisconsin em Milwaukee.Sou o Dr. Parri. Sou da divisão de Transtornos Neoplásicos e Doenças Relacionadas do Medical College of Wisconsin. Hoje vamos demonstrar um procedimento sobre como realizar uma biópsia por punção aspirativa com agulha fina do tecido adiposo, com aspiração para estudo da amiloidose AMY.Este é um protocolo que utilizamos para coletar tecido fibroadiposo da gordura abdominal anterior para demonstração e exclusão de amiloidose. Vamos começar. Quando realizada corretamente, a biópsia por punção aspirativa com agulha fina, ou FNAB, para aspiração do coxim adiposo anterior pode ser concluída com uma única punção.No entanto, movimentar uma agulha de calibre 18 para frente e para trás no tecido adiposo subcutâneo é relativamente desconfortável. O método de anestesia descrito aqui alcança o efeito com apenas duas picadas usando uma agulha de calibre 25 e desvia a dor, resultando em uma tolerância melhorada ao procedimento. Prepare-se para o procedimento reunindo todos os materiais necessários, incluindo uma mistura 1:1 de lidocaína 1% e bicarbonato de sódio 1%, álcool em swab, compressas de gaze, uma caneta marcadora, duas seringas de 10 mililitros, duas agulhas de calibre 18 com uma polegada e meia de comprimento, uma agulha de calibre 25 com uma polegada e meia de comprimento, um suporte ou pistola para seringa de AGF, um curativo, um frasco de glutaraldeído para microscopia eletrônica e um recipiente para biópsia com 10% de formalina.Usando cotonetes com álcool, limpe a pele na região do quadrante inferior do abdômen, lateral à linha média e abaixo do marcador do umbigo. Marque uma área com formato de losango de aproximadamente cinco por cinco centímetros com uma caneta de marcação. Com uma agulha de calibre 18 e uma seringa de 10 mililitros, aspire cerca de 10 mililitros da solução de lidocaína 1% e bicarbonato de sódio 1% para uso como anestésico local.Embora a lidocaína a 1% possa ser usada isoladamente, o bicarbonato de sódio adicional evitará a sensação breve de queimação inicial. Após a administração, retire a seringa cheia de lidocaína da agulha de calibre 18 ainda inserida no frasco de lidocaína. Acople a seringa a uma agulha de calibre 25 e um e meio polegadas, segurando a seringa na posição vertical.Pressione o êmbolo e bata levemente no corpo da seringa para remover qualquer ar aprisionado da seringa. Anestesie ao longo das bordas da área roid. Comece inserindo a agulha de 25 graus logo abaixo da pele no ponto A. Em seguida, empurre cuidadosamente a agulha subcutaneamente e tangencialmente, paralelamente à superfície da pele, em direção ao ponto X. No ponto X, puxe levemente o êmbolo da seringa para garantir que a agulha não esteja dentro de um vaso.Em seguida, ao retirar a agulha em direção ao ponto X, pressione lentamente o êmbolo para infundir até 2,5 mililitros de lidocaína. Não permita que a agulha saia da pele. Agora mude a direção e avance a agulha subcutaneamente até o ponto Y. Como antes, confirme que a agulha não está dentro de um vaso puxando levemente o êmbolo da seringa e administre até 2,5 mililitros de lidocaína enquanto retira lentamente a agulha passando pelo ponto A. Após a retirada da agulha, evite sangramento aplicando firmemente gaze estéril.A seguir, partindo do ponto B, repita esse processo aplicando lidocaína subcutaneamente do ponto X ao ponto B. Em seguida, do ponto B ao ponto Y. Novamente, aplique gaze para evitar sangramento. Agora, verifique se a área está anestesiada tocando levemente a pele dentro do losango com a ponta de um pedaço de algodão e comparando com a pele adjacente não anestesiada. Fixe uma agulha de 18 gauge e uma polegada e meia a uma seringa de 10 mililitros.Monte o conjunto de agulha da seringa na empunhadura da seringa, utilizando a pistola com empunhadura FNAB, para auxiliar na aplicação e liberação adequadas do vácuo. Insira a ponta da agulha na gordura subcutânea dentro da região rombóidea limpa e anestesiada e puxe completamente o êmbolo da seringa para gerar vácuo. Mantendo o vácuo, movimente a agulha para frente e para trás dentro da gordura subcutânea.Cada passada deve ser a mais longa possível sem permitir que a agulha saia da pele. A amostragem máxima é alcançada ao mudar a direção em cada passada. É importante manter a direção da agulha tangencial à serosa e paralela à superfície da pele para evitar a punção da cavidade peritoneal.Uma vez que aproximadamente um mililitro de fragmentos de tecido fibroadiposo tenha se acumulado na seringa, libere o vácuo e remova a agulha. Peça ao paciente que aplique pressão firme na área do procedimento com uma gaze para minimizar a escavação subcutânea de sangue. O espécime pode agora ser processado para envio ao laboratório.Para testes adicionais, remova a agulha da seringa e transfira cinco a seis fragmentos de tecido adiposo fibroso para uma solução de glutaraldeído 2% através do bico da seringa. Dispense fragmentos adicionais de tecido pequenos através do bico da seringa sobre uma lâmina de vidro espalhada entre duas lâminas. Para preparar esfregaços, permita que o material restante coagule dentro da seringa.Isso pode levar de cinco a sete minutos. Em seguida, aspire 10% formalina na seringa para que o material tecidual fibroadiposo coagulado seja desalojado da parede da seringa e fique livre na solução. Agora, remova o êmbolo da seringa e transfira o tecido fibroadiposo coagulado para o recipiente rotulado com 10% formalina a partir da extremidade aberta da seringa, oposta à extremidade do bico.As amostras coletadas podem agora ser submetidas à microscopia eletrônica, preparação de bloco celular e inclusão em parafina ou microscopia fluorescente; o tecido fibroadiposo obtido foi fixado e processado utilizando o método mostrado neste vídeo, incluído em parafina, corado com vermelho Congo e examinado por microscopia de luz polarizada. O amiloide nas paredes dos pequenos vasos sanguíneos do tecido fibroadiposo apresenta coloração verde-maçã por birrefringência, conforme indicado pela seta amarela.A cor verde-maçã pela ence está ausente em tecidos de um paciente diferente sem amiloidose. O azul pela ence, indicado pela cabeça de seta amarela em fibras de colágeno, geralmente está presente em quase todos os espécimes. Em nossa experiência, essa birrefringência azul relacionada ao colágeno pode ser difícil de diferenciar da birrefringência verde-maçã da amiloide.Esta é uma armadilha significativa durante a interpretação de espécimes corados com vermelho Congo ao microscópio polarizador. Esta micrografia eletrônica mostra fibrilas retas, não ramificadas, dispersas aleatoriamente, com diâmetro de oito a dez nanômetros, compatíveis com amiloide na parede de um vaso sanguíneo.Acabamos de demonstrar como realizar a punção aspirativa por agulha fina, biópsia do coxim adiposo anterior para amiloide. Ao realizar este e outros procedimentos semelhantes de PAAF, é muito importante aplicar e liberar o vácuo na sequência correta. Além disso, por motivos óbvios de risco de penetração na cavidade peritoneal, a agulha nunca deve ser direcionada obliquamente.Portanto, é importante manter a direção dos movimentos de vai e vem paralela à pele no plano subcutâneo do tecido fibroso. Esses são pontos muito importantes. Assim sendo, é isso.Obrigado por assistir. Agradecemos.

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