Name: Microinjeção de embriões Medaka para uso como um organismo modelo genético (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-22T17:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 25 s
Description: Aprenda a técnica de microinjeção em embriões de medaka para análise genética em modelos de vertebrados. Este método permite estudar a função de genes in vivo em nível de célula única.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabalho foi financiado por uma doação do MRC.

1. Acasalamento e coleta de ovos <ol><li> Medaka feminino e masculino podem ser facilmente distinguidas pelo tamanho e forma das barbatanas dorsal e anal. As barbatanas anal dos machos são maiores e em forma de paralelogramo comparada com a das fêmeas. A barbatana anal do sexo feminino é menor e em forma triangular. A barbatana dorsal do sexo masculino tem um entalhe claramente visível profunda entre os dois últimos raios. </li><li> Medaka colocar até 40 ovos todos os dias e as fêmeas carregam os ovos medaka agrupado em sua barriga por filamentos de ligação para várias horas antes de serem arrancados de plantas no tanque. </li><li> Fêmeas pode ser pego em uma rede mantido dentro suavemente de ambos os lados por um lado. Os ovos podem ser suavemente arreliado da barriga com o dedo indicador da outra mão. A fêmea pode então ser devolvido ao tanque. Os ovos devem ser transferidos para uma placa de Petri 6 centímetros cheia de mídia embrião por fórceps sem corte ou um dedo. </li><li> Pares Medaka raramente luta quando eles são mantidos em uma caixa pequena de acasalamento. Portanto, eles podem ser mantidos em um pequeno tanque com fluxo de água para que possam ser alimentados e os ovos podem ser coletados a partir do mesmo par todos os dias por um par de meses. </li><li> É importante que os peixes fêmeas não devem ser mantidos sem machos, uma vez que a ovulação ocorre todos os dias em medaka fêmeas. Caso contrário, as fêmeas não podem entregar os ovos e tornar-se indisposto. </li></ol> 2. Embriões de limpeza <ol><li> Transferência unclustered ovos com uma pipeta de vidro a lixa (P2000 tamanho do grão, à prova d'água) colocado na tampa de uma placa de Petri nove centímetros. Remova o meio de excesso, mas garantir um volume suficiente permanece como para evitar a secagem de embriões. </li><li> Rolo delicadamente sobre embriões lixa usando o dedo indicador, aplicando o mínimo de pressão e manter paralelo dedo para a superfície do papel de areia por cerca de 45-60 segundos para remover alguns dos cabelos superfície externa do córion. Não enrole mais de embriões 07/05 de uma vez esta precaução irá minimizar o risco de esmagamento embriões um embaixo do outro. </li><li> Transferência de embriões limpo para um prato fresco de meio de embrião. </li></ol> 3. Fazer placas de agarose para a realização de embriões durante a microinjeção Embriões são mantidos em bebedouros durante a injeção feita com um molde de acrílico em agarose 1,5% (Figura 1). A concentração de agarose é importante para manter os embriões corretamente. <ol><li> Primeiro, faça um quadro de agarose para segurar o molde de acrílico. Despeje de agarose 1,5% em água a uma profundidade 0,5 cm em uma placa de Petri nove centímetros e espere até que ele se solidifica completamente. Cortar uma área da agarose apenas maior que o tamanho do molde. </li><li> Despeje de agarose 1,5% para preencher a área de corte e coloque o molde para que não haja bolhas e espere até que agarose solidifica. Esta placa de agarose podem ser armazenados na geladeira para acelerar solidifaction. </li><li> Remover o molde para criar calhas para segurar os ovos. Adicionar médio embrião o suficiente para mergulhar o molde, cubra e armazenar a 4 ° C até ser necessário. <img src="/files/ftp_upload/1937/1937fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Esquemática do molde feito sob medida usada para preparar as calhas em placas de agarose para microinjeção. </li></ol> 4. Microinjeção de embriões medaka Em medaka, DNA, RNA, oligonucleotides morfolino e corantes traçador são microinjeção através do córion para o citoplasma da 1-64 de células de embriões, em vez de estágio a gema como em zebrafish. Uma vez que o citoplasma é menor e menos visível na medaka, a prática pela injeção de corantes como rodamina-dextran é recomendado para desenvolver esta habilidade. Além do vermelho de fenol como traçador também é estimulada para permitir a confirmação das injeções. Como o córion torno embriões medaka é dura, um short, agulha de injeção forte e ampla é necessária (Figura 2). Prepare esta agulha de injeção forte de largura a partir de um filamento de vidro contendo-capilar. <ol><li> Preparar a solução de injeção com vermelho de fenol como traçador e carregá-lo para dentro da agulha na parte de trás com um microloader Eppendorf. Conecte a agulha para a bomba de ar do injetor. </li><li> Os ovos devem ser recolhidos e unclustered o mais rapidamente possível após a fertilização para injetar na fase de uma célula. Mais embriões podem ser injetadas, armazenando-os em gelo (não mais de 30 minutos) para interromper a divisão celular. <img src="/files/ftp_upload/1937/1937fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Comparação de agulhas e medaka zebrafish. Observe a ponta da agulha MF (em cima) é mais curto e mais largo, portanto, mais forte para a perfuração do córion dura em torno de embriões medaka. </li><li> Transferência de ovos na placa de agarose e alinhá-las nos bebedouros com uma pinça. Imediatamente antes da injecção, cinco ovos, devem ser mudados para que a membrana da célula do citoplasma de uma célula pode ser atingido por diaagulha e perpendicularmente. O citoplasma da célula de um pode ser encontrado por olhar para uma área desprovida de pequenas gotículas de óleo que fica em frente ao lado do ovo com gotas de óleo mais denso. A área identificada pode ser confirmado para ser o citoplasma através da visualização de lado. </li><li> Coloque a agulha para fechar os ovos. Abra a ponta da agulha suavemente tocar a ponta da agulha para o córion ou usando micropinças (Figura 3). Uma pequena quantidade de substância injecção deve ser visto a fluir para fora. </li><li> Punção através do córion para colocar a ponta da agulha no interior do córion. Ajuste a pressão de realização do injector a ser relativamente alto, para garantir que nenhum refluxo ocorre devido à alta pressão sobre punção através do córion resistente (configurações de 80-100hPA para exploração e pressão de 500 700hPa para a pressão de injeção). </li><li> Insira a ponta da agulha para o citoplasma acentuadamente por cutucando sua membrana. Evite inserir a ponta da agulha na gema. Ao contrário de peixe-zebra, material injetado na gema não será transferido para o citoplasma. Líquidos injetados tem um limite diferente quando injetado na gema enquanto que o limite é turva quando no citoplasma (Figura 4). Ocasionalmente, a agulha pode ficar bloqueado por agarose / detritos. Fórceps pode ser usado para tocar / quebrar novamente a ponta da agulha e remova o bloqueio. Se a agulha quebra em qualquer ponto durante a injeção, borbulhando será visto no meio de embrião e que a substância está a injectar será perdido. As injeções devem ser realizadas sistematicamente de cima para baixo ao longo dos canais agarose e da esquerda para a direita através do molde. </li><li> Embriões injetados devem ser transferidos para um prato limpo contendo meio de embrião e desenvolvido na temperatura adequada. <img src="/files/ftp_upload/1937/1937fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Quebrar a ponta da agulha antes da injeção. 1: Mova a ponta da agulha perto do córion do embrião; 2: Toque no córion e mover a agulha para trás e para frente com cuidado para quebrar ponta; 3: Quando uma pequena quantidade de substância de injeção flui para fora da extremidade da agulha isto confirma a quebra da ponta. </li></ol> 5. Resultados representativos <img src="/files/ftp_upload/1937/1937fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Imagens representativas de embriões injetados medaka. Um painel mostra uma imagem representativa da injeção correta de rodamina-dextran no citoplasma de uma célula embrionária de um estágio medaka. Painel B mostra uma imagem representativa de injeção incorreta de rodamina-dextran no saco vitelino de uma célula do embrião estágio medaka. Painéis C e D mostram os embriões a partir de painéis A e B, respectivamente, cerca de 30 horas após a injecção. EM: embrião, anterior é para cima em painéis C e D e vista é dorsal. Observe o corpo do embrião no painel D não é vermelho como o corante foi incorretamente injetado no saco vitelino. Setas em B e D indicam rodamina-dextran injetado incorretamente no saco vitelino observe o limite distintos circular. Linhas pontilhadas em A e B indicam esboço do citoplasma de uma célula, visão é lateral.

<ol><li>Furutani-Seiki, M., Sasado, T., Morinaga, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+systematic+genome-wide+screen+for+mutations+affecting+organogenesis+in+Medaka%2C+Oryzias+latipes%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Dev%22%5BJournal%5D)">A systematic genome-wide screen for mutations affecting organogenesis in Medaka, Oryzias latipes.</a> Mech Dev. 121, 647-658 (2004).</li>
<li>Furutani-Seiki, M., Wittbrodt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Medaka+and+zebrafish%2C+an+evolutionary+twin+study%5BTitle%5D)+AND+%22Mech.+Dev%22%5BJournal%5D)">Medaka and zebrafish, an evolutionary twin study.</a> Mech. Dev. 121, 629-6237 (2004).</li>
</ol>

Neste vídeo, demonstramos um método para rastreamento de células, mRNA, ou DNA anti-senso de injeção de oligonucleotídeos em uma célula de embriões estágio medaka. Esta técnica permitiu-nos para estudar vários processos de desenvolvimento in vivo, em tempo real. Este processo e posterior análise detalhada que proporciona tem o potencial de aumentar significativamente a nossa compreensão da organogênese vertebrados e da biologia da célula subjacente. Tal conhecimento pode ser importante para, e rendimento de aplicações terapêuticas na medicina regenerativa.

<table><tbody><tr><td>Rede fina de 4&quot;</td><td>Ferramentas</td><td>J K Aquatics Ltd.</td><td>MD001</td><td>Utilizada para capturar peixes durante a coleta de ovos.</td></tr><tr><td>Meio para embriões</td><td>Reagente</td><td>Preparado no laboratório</td><td></td><td>Solução estoque 50X de 200 ml, 1 ml de azul de metileno a 1% em H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O/10 litros de água RO (solução estoque 50X: NaCl 14,7 g, KCl 0,6 g, CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; 2H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O 2,4 g, MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; 7H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O 4,0 g/1 litro de água RO).</td></tr><tr><td>Papel de lixa impermeável fino - granulometria p2000</td><td>Ferramentas</td><td>Hermes Abrasives Ltd.</td><td></td><td>Granulometria muito fina para rolar/limpar embriões com coriões.</td></tr><tr><td>Capilares de vidro borossilicato</td><td>Ferramenta</td><td>Harvard Apparatus</td><td>GC100-10F</td><td>Para fabricação de agulhas de microinjeção.</td></tr><tr><td>Puxador de micropipetas</td><td>Equipamento</td><td>Narishige International</td><td>Modelo PP-830</td><td>Para fabricação de agulhas de microinjeção.</td></tr><tr><td>Microloader Eppendorf</td><td>Ferramenta</td><td>Eppendorf</td><td>5242956.003</td><td>Para carregar agulhas de microinjeção.</td></tr><tr><td>Aparelho de microinjeção</td><td>Equipamento</td><td>Eppendorf</td><td></td><td>Modelo 5242.</td></tr><tr><td>Micromanipulador</td><td>Equipamento</td><td>Narishige International</td><td></td><td>Modelo MN151.</td></tr><tr><td>Placa de agarose para injeção</td><td>Ferramentas</td><td>Preparado no laboratório</td><td></td><td>Para segurar embriões durante a injeção.</td></tr></tbody></table>

microinjeção de embriões medaka para uso como um organismo modelo genético

Microinjection of Medaka Embryos for use as a Model Genetic Organism

Neste vídeo, demonstramos a técnica da microinjeção em embriões de uma célula estágio medaka. Medaka é um pequeno peixe de água doce do egg-laying que permite que ambas as análises genéticas e embriológicas e é um dos organismos modelo de vertebrados em que genome-wide-driven fenótipo mutante telas foram realizadas 1, como no peixe-zebra eo mouse. Divergência de sobreposição funcional de genes relacionados entre medaka zebrafish e permite a identificação de fenótipos romance que não são identificáveis ​​em uma única espécie 2, assim medaka e peixe-zebra são complementares para análise genética de funções genoma dos vertebrados. Para aproveitar medaka peixes cujos embriões são transparentes e desenvolver externamente, microinjeção é uma técnica essencial para injetar células-traçadores para as células rotulagem, mRNAs ou sentido anti-oligonucleotides para o excesso de expressar e batendo-down genes de interesse, e para a tomada de DNAs linhagens transgênicas.

Medaka e peixe-zebra são complementares para análise genética de funções genoma dos vertebrados. Este protocolo destaca os pontos chave para a microinjeção de sucesso em embriões medaka, uma técnica importante para a análise embriológica e genética utilizando medaka zebrafish e em um laboratório.

Microinjeção de embriões Medaka para uso como um organismo modelo genético

Neste vídeo, demonstramos a técnica de microinjeção em embriões de medaka no estágio de uma célula. O medaka é um pequeno peixe de água doce ovíparo que permite...

O objetivo geral deste procedimento é determinar a função gênica ou proteica interrompendo os padrões normais de expressão do seu gene ou proteína de interesse. Isso é realizado primeiramente pela confecção do molde de aros e das agulhas de injeção. O segundo passo do procedimento consiste em coletar embriões médios no estágio de uma célula.O terceiro passo do procedimento é posicionar corretamente embriões de um estágio celular na posição adequada para injeção. O passo final do procedimento é injetar traçadores celulares, RNAs mensageiros ou oligonucleotídeos antissenso nos embriões de estágio unicelular de midar. Em última análise, os resultados podem ser obtidos por meio de observação microscópica que mostre alterações morfológicas, fisiológicas ou moleculares associadas à proteína afetada pela substância injetada.Olá, sou Sean Brazinski do laboratório da Dra. Makoto Fki, do Departamento de Biologia e Bioquímica da Universidade de Bath. Também faço parte integral do laboratório Seki. Hoje mostraremos um procedimento para a microinjeção de embriões de Meca com marcadores celulares, RNAs mensageiros e oligonucleotídeos antissenso.Utilizamos este procedimento em nosso laboratório para estudar a função de um gene de interesse in vivo em nível de célula única. Então, vamos começar. Diferentemente dos peixes-zebra, machos e fêmeas de maka podem ser facilmente distinguidos por suas nadadeiras dimórficas.As nadadeiras femininas têm formato arredondado com margem lisa. Tanto a nadadeira anal quanto a dorsal do macho são maiores do que as da fêmea, e a nadadeira dorsal apresenta uma reentrância acentuada entre os dois últimos raios. Mantenha um casal reprodutivo de meca em um tanque de acasalamento com ou sem fluxo de água.Este P pode ser mantido no tanque com água corrente por até dois meses. Para injeção diária, a fêmea põe até 40 ovos diariamente, que se agrupam no abdômen por meio de filamentos de fixação. Use uma rede para capturar e remover uma fêmea do tanque e segure o peixe com uma das mãos para imobilizá-lo dentro da rede. Suavemente, separe os ovos com o dedo indicador.Retorne a fêmea ao tanque. Use pinças ou o dedo indicador para transferir os ovos para uma placa de Petri de seis centímetros cheia com meio para embriões. Sob um microscópio estereoscópico, use dois pares de pinças para cortar os filamentos de fixação e separar os ovos.Colete os embriões com uma pipeta de espaguete para separá-los das fezes e das algas e transfira um máximo de 40 ovos para uma placa com meio de embrião fresco. Coloque os ovos sobre gelo se for microinjetar imediatamente. Alternativamente, manipule a velocidade de desenvolvimento até estágios posteriores variando a temperatura de incubação.É necessário um molde de plexiglás para fabricar placas de agarose para acomodar embriões durante a injeção. Consulte a parte escrita deste protocolo para obter detalhes. Despeje 0,5 centímetros de 1,5%aros em água em uma placa de Petri de nove centímetros.Quando o aase tiver solidificado, recorte uma área um pouco menor que o molde para que o molde não afunde até o fundo. Construa a área recortada com mais aase a 1,5% e coloque o molde de plexiglass sobre ela. Evite introduzir bolhas de ar quando o Aris tiver solidificado.Normalmente, libere o molde para criar canais. Cubra os Aris com meio embrionário. Cubra a placa e armazene a quatro graus Celsius até o momento de uso.Prepare uma agulha de injeção larga e resistente a partir de um capilar de vidro contendo filamento. Use um microcarregador para preencher a agulha de injeção com a solução de injeção, incluindo vermelho de fenol como traçador, e conecte a agulha a um suporte de injeção com bomba de ar. Monte o equipamento ao lado de um microscópio estereoscópico.Transfira ovos do estágio apropriado para a placa de injeção com agarose. Os embriões podem ser mantidos em gelo por até 30 minutos para interromper o desenvolvimento durante a realização da injeção sob o microscópio estereoscópico. Use pinças para alinhar de sete a dez ovos em cada sulco.Gire os ovos para que a agulha de injeção atinja os ovos perpendicularmente. A célula única do embrião está oposta às gotículas de dente de solo. Portanto, a gotícula de óleo deve ser orientada para a esquerda, de modo que a célula única fique à direita para a injeção.Nos embriões de peixe-zebra, os ácidos nucleicos e os corantes marcadores são microinjetados através da coriona diretamente no citoplasma do embrião, e não na gema. No caso do peixe-zebra, aproxime a agulha dos ovos. Toque a ponta da agulha na coriona ou use pinças microcirúrgicas para romper levemente a ponta da agulha, de modo que uma pequena quantidade da solução injetável escoe pela extremidade.Quebre novamente a agulha em caso de obstrução, perfure o Corian e mova a ponta da agulha de injeção logo abaixo da camada interna para reduzir a probabilidade de refluxo para dentro da agulha. Ajuste a pressão de retenção do injetor para aproximadamente 80 a 100 hectopascals com precisão. Fure a membrana e insira a agulha no citoplasma.Injete o embrião. Visualize o embrião de lado para confirmar a distribuição uniforme do material injetado no citoplasma. Líquidos corretamente injetados no citoplasma apresentam uma borda difusa; material injetado muito profundamente no vitelo apresenta uma borda distinta e não será transferido para o citoplasma.Transfira os embriões injetados para uma placa limpa contendo meio embrionário e deixe-os desenvolverem conforme necessário em um incubador com temperatura adequada. O painel A mostra uma imagem representativa da injeção correta de dextrano rumine no citoplasma de um embrião Meca em estágio de uma célula. O painel B mostra uma imagem representativa da injeção incorreta de dextrano rumine no saco vitelino de um embrião Meca em estágio de uma célula. As linhas pontilhadas indicam o contorno do citoplasma de uma célula.Os painéis C e D mostram os embriões dos painéis A e B, respectivamente, aproximadamente 30 horas após a injeção. Observe que o corpo do embrião no painel D não é vermelho, pois o corante foi injetado incorretamente no saco vitelino. Acabamos de mostrar como microinjetar ácidos nucleicos ou traçadores no estágio de uma célula de embriões mais escuros.Ao realizar este procedimento, é importante utilizar embriões corretamente estagiados para obter uma injeção bem-sucedida. É isso. Obrigado por assistir e boa sorte com seus experimentos.

microinjection-of-medaka-embryos-for-use-as-a-model-genetic-organism

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Microinjeção é um método bem estabelecido e eficaz para a introdução de substâncias estranhas em embriões de peixe-zebra fertilizado. Aqui, nós demonstramos uma técnica de microinjeção robusta para a realização de superexpressão do mRNA, e oligonucleotídeos morfolino estudos gene knockdown no zebrafish.

Microinjeção de mRNA e Oligonucleotídeos Anti-Senso Morpholino em embriões Zebrafish.

Este vídeo mostra como morfolino ou mRNA podem ser injetadas em embriões de peixe-zebra na fase de uma célula para diminuir ou aumentar o nível de produtos de genes específicos durante o desenvolvimento subseqüente.

Microinjeção de embriões Zebrafish para analisar a função do gene

Devido ao córion duro e macio embriões, manipulação de embriões medaka está mais envolvido do que em zebrafish. Este vídeo mostra passo-a-passo os procedimentos de como manipular embriões medaka, incluindo dechorionation, montagem em agarose para a imagem latente e transplante de células para a produção de quimeras. Estes procedimentos são essenciais para a utilização medaka zebrafish e em um laboratório para tirar o máximo proveito de seus recursos complementares para a análise genética de...

Dechorionation de Embriões Medaka e Transplante de Células de Geração de Quimeras

Este vídeo descreve uma técnica de microinjeção de embriões para entregar compostos no saco vitelino de peixe-zebra.

Microinjeção de embriões: uma técnica para entregar um composto na gema do peixe-zebra

A microinjecção é uma técnica comum usada para fornecer estruturas de ADN, ARNm, oligonucleidos morfolino anti-sentido ou outros tratamentos em ovos, embriões, e as células de várias espécies.

High Throughput microinjeções de ouriço do mar zigotos

Métodos que produzem embriões morphant são essenciais para estudar mecanismos de desenvolvimento e redes de regulação gênicas. A estrela do mar Patiria miniata é um sistema modelo emergente para estes estudos. Aqui apresentamos um protocolo para a obtenção de gametas, produzindo culturas de embriões, e microinjeção rápida de zigotos de esta espécie.

Um Método para microinjeção de Patiria minata zigotos

A mosca-das-frutas do Mediterrâneo Ceratitis capitata (Diptera: Tephritidae) é uma praga mundial da agricultura. Uma compreensão mais profunda de sua biologia é fundamental para controlar as populações de moscas e, assim, reduzir o impacto econômico. A microinjeção de embriões é uma ferramenta fundamental que permite tanto a transformação da linha germinativa quanto os estudos genéticos reversos nesta espécie.

Entrega de Ácidos Nucleicos através de microinjeção de embriões na Worldwide Agrícola praga de insectos,<em&gt; Ceratitis capitata</em

Pequenos peixes de laboratório tornaram-se modelos populares para pesquisa óssea sobre os mecanismos subjacentes aos distúrbios ósseos humanos e para a triagem de drogas moduladoras ósseas. Neste relato, descrevemos um protocolo para avaliar o efeito do alendronato em células ósseas em larvas de medaka com lesões osteoporóticas.

Tratamento de drogas e<em&gt; In Vivo</em&gt; Imagem de Osteoblast-osteoclastos Interações em um modelo de Medaka Peixe Osteoporose

Um protocolo simples e eficiente de microinjeção para edição de genes em embriões de bagre de canal usando o sistema CRISPR/Cas9 é apresentado. Neste protocolo, guia de RNAs e proteínas Cas9 foram injetadas na gema de uma célula de embriões. Este protocolo foi validado por nocauteando dois genes imune-relacionados de bagre do canal.

Microinjeção de proteína CRISPR/Cas9 em bagre do canal, Ictalurus punctatus, embriões para Gene Editing

Este artigo descreve dois métodos rápidos e eficientes para a coleta de espermatozoides do pequeno modelo de medaka de peixe (Oryzias latipes), bem como um protocolo para avaliar de forma confiável a qualidade do esperma usando a análise de espermatozoides assistida por computador (CASA).

Coleta de espermatozoides e análise de espermatozoides assistida por computador no modelo Teleost japonês Medaka (Oryzias latipes)

Aprenda a técnica de microinjeção em embriões de medaka para análise genética em modelos de vertebrados. Este método permite estudar a função de genes in vivo em nível de célula única.

Microinjeção de embriões Medaka para uso como um organismo modelo genético

Explorar mais vídeos