Geração de Mamosferas Primárias: Uma Técnica para Determinar a Potência Celular

0 vistas5:07 min • April 30th, 2023

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Uma única célula-tronco do câncer de mama dá origem a um aglomerado de células chamado mamosfera primária. Para obtê-los, primeiro cultive uma linhagem de câncer de mama até 70% a 80% confluente, para garantir que as células estejam em fase de crescimento. Adicione Tripsin-EDTA para separar as células do frasco e adicione um meio com soro para interromper a ação da Tripsin.

Agora, pegue as células em um tubo e centrifugue para obter o pellet celular. Ressuspenda o pellet no meio da mamosfera sem soro e passe a suspensão por um filtro de tampa de filtro de células, para obter uma suspensão de célula única. Esta suspensão consiste em células-tronco, células progenitoras e células diferenciadas que apresentam diferentes expressões proteicas.

CD44 e CD24 são proteínas de superfície celular características das células-tronco do câncer de mama. Eles são positivos para expressão de CD44 e negativos para CD24. Isole as células da suspensão celular usando fluorescência ou classificação celular ativada por magnetismo. Em seguida, pegue uma alíquota e uma coloração azul de tripano nas células e calcule o número de células viáveis por mililitro usando uma lâmina de hemocitômetro para encontrar a densidade de semeadura.

Finalmente, semeie as células em uma placa de seis poços ultra baixa aderente, para que as células permaneçam suspensas. Incube a placa por 5 a 10 dias sem mexer na placa até que as esferas tenham 40 mícrons de diâmetro. No protocolo a seguir, geraremos mamosferas primárias a partir de uma linhagem celular de câncer de mama.

- Trabalhando sob uma capa de cultura estéril, inicie este procedimento com células MCF7 ou MDA-MB-231 que são 70% a 80% confluentes. Aspirar o meio do balão. Lave as células duas vezes com PBS, adicione Tripsin-EDTA e incube por dois a seis minutos. Após o descolamento, extinguir adicionando meio de mamosfera contendo 10% de FBS.

Uma vez que as células tenham se desprendido, transfira-as para um tubo de centrífuga cônico de 15 mililitros e gire-o 200 vezes g em temperatura ambiente por cinco minutos. Após esta centrifugação, decanta o sobrenadante e, em seguida, ressuspende as células em um a cinco mililitros de meio de mamosfera. Pipete para cima e para baixo 10 vezes para quebrar o pellet celular.

Em seguida, transfira a suspensão celular para um filtro de tampa de filtro de célula de 40 mícrons e colete o fluxo através do tubo conectado para obter uma suspensão de célula única. Pipete uma alíquota de 20 microlitros das células ressuspensas em um hemocitômetro e use um microscópio para examiná-la. Se aglomerados de células forem observados como visto aqui, use uma seringa para passar a suspensão para dentro e para fora de uma agulha de calibre 25 uma ou duas vezes.

Uma vez que as células tenham sido dispersas em uma única suspensão celular, conforme mostrado aqui, prossiga para isolar subconjuntos celulares CD44 positivos e CD24 negativos por meio de classificação de células ativadas por fluorescência ou classificação de células ativadas por magnetismo usando a coluna LS para selecionar positivamente as células CD44 positivas. Uma vez que as células desejadas se fixam às paredes da coluna LS, descarte o fluxo, remova as células da coluna, aplique cinco mililitros de tampão e aplique e pressione o êmbolo fornecido com a coluna para liberar as células desejadas.

Em seguida, use uma coluna LD para purificar ainda mais a população por seleção negativa. Aqui, as células CD24 positivas se ligam às colunas LD. Colete o fluxo que contém as células CD24 negativas. Em seguida, o uso de citometria de fluxo confirma os fenótipos de todas as células isoladas. Usando o método de exclusão de azul de tripano, calcule a densidade de células viáveis.

Depois de diluir adequadamente a suspensão celular, semeie cada poço de uma placa de fixação ultrabaixa de seis poços com 500 a 4.000 células por centímetro quadrado em 2 mililitros de meio completo de mamosfera. Incube as placas tomando cuidado para não perturbá-las por 5 a 10 dias até que as esferas sejam observadas. Continue cultivando até que as esferas tenham pelo menos 40 mícrons de diâmetro, mas ainda não tenham começado a se tornar apoptóticas.

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Última atualização: 15 agosto 2026