1 de dezembro de 2010
Neste artigo, vamos mostrar um método para fazer agulhas capilar de vidro com um lúmen 50 mícrons. Esta técnica reduz significativamente os danos cerebrais, minimiza difusão passiva de drogas e permite uma segmentação precisa no cérebro de roedores.
O objetivo geral deste procedimento é realizar microinjeções altamente precisas em estruturas cerebrais profundas para a administração de fármacos, vetores virais ou transplantes celulares. Isso é realizado primeiramente produzindo agulhas de capilar de vidro com uma luz de 50 micrômetros. O segundo passo do procedimento consiste em preencher 50% da agulha com óleo mineral por capilaridade e inserir o êmbolo pela extremidade mais larga do tubo.
O terceiro passo do procedimento é carregar a agulha com a substância ou com a suspensão celular que você deseja injetar. O passo final do procedimento é introduzir a ponta da agulha e injetar a substância em uma estrutura cerebral profunda com um fluxo muito baixo. Em última análise, podem ser obtidos resultados que demonstram um direcionamento muito preciso de substâncias para o cérebro por meio de microinjeções com um tubo capilar de vidro.
Olá, sou Oscar Gonzalez do Laboratório de Neurociência da Escola de Psicologia da Universidade de Colima, México. Hoje, vamos mostrar um procedimento para realizar microinjeção com um tubo capilar de vidro para administrar fármacos no cérebro de camundongos. Utilizamos este procedimento em nosso laboratório para estudar células-tronco neurais adultas.
Então vamos começar. O uso de agulhas de capilar de vidro com lúmen de 50 micrômetros para microinjeções no cérebro reduz significativamente os danos cerebrais, minimiza a difusão passiva de fármacos e permite um direcionamento preciso no cérebro de roedores. Antes que as microinjeções possam ser realizadas, as agulhas de vidro devem ser construídas.
Inicie colocando o tubo de vidro capilar em um eletrodo de alta resistência de um puxador de micropipetas. Em seguida, ligue o eletrodo do puxador de micropipetas. Para aquecer a região central do tubo de vidro e amolecer localmente o vidro, estique o tubo ao longo de seu eixo longitudinal por uma distância inicial de três a cinco milímetros, suficiente para provocar uma redução no diâmetro do tubo de vidro na área localizada.
Continue esticando o tubo de vidro até que ele quebre. Repita esses passos para criar duas agulhas idênticas de barril simples. Agora, coloque as agulhas de vidro em uma micro-fornalha.
Um ângulo de 30 graus é suficiente para biselar a ponta. Por fim, coloque as agulhas sob o microscópio e verifique se ambas possuem o diâmetro interno correto. Para a maioria das drogas hidrofílicas, um diâmetro interno de 30 a 50 micrômetros é ideal com as agulhas construídas.
Vamos ver como utilizá-las para microinjeções. Para começar, encha a agulha construída com óleo mineral pela extremidade mais larga. Deixe o óleo mineral penetrar por capilaridade até atingir aproximadamente 50% do comprimento do tubo capilar.
Coloque graxa de alto vácuo ao redor da extremidade mais larga da agulha e insira o êmbolo através dela. Empurre suavemente o óleo mineral até que uma pequena gota apareça na ponta da agulha de vidro. Agora, fixe a agulha no suporte do microinjetor e comece a preparar o animal para a injeção.
Primeiro, coloque uma almofada de aquecimento no suporte estereotáxico para animais para manter a temperatura corporal do animal. A 37 graus Celsius, retire os pelos da cabeça do camundongo anestesiado e, em seguida, posicione-o e fixe-o no aparelho estereotáxico. Usando barras auriculares e um suporte para os dentes, utilize uma lâmina cirúrgica para fazer uma incisão na pele da região das orelhas até a linha do crânio Lambda.
Polir o crânio com um cotonete para secá-lo e puxar a pele para fora do campo cirúrgico. Em seguida, use a ponta da agulha de vidro para apontar o vértice da sutura bgma e definir ali a posição inicial da injeção. Agora, defina o ponto no crânio que será perfurado movendo os eixos X e Y do aparelho estereotáxico sobre o crânio.
Usando uma microfresadora de pesquisa, perfure cuidadosamente orifícios nas coordenadas selecionadas com pinça fina. Remova cuidadosamente a camada mais profunda do osso e rompa a membrana dura-mater. Você verá algum líquido cefalorraquidiano vazando.
Para confirmar que a agulha pode passar pelos orifícios perfurados, abaixe lentamente a agulha de vidro utilizando o eixo Z do aparelho estereotáxico. Agora, pipete um microlitro da droga a ser injetada e coloque-a sobre um pequeno pedaço de parafina. Coloque a parafina sobre o crânio.
Aspire a droga girando a roda do microinjetor enquanto verifica pelo microscópio se o fluido está subindo para dentro da agulha de vidro. Remova o filme de parafina e redefina a coordenada zero. Agora, mova a agulha até as coordenadas selecionadas e abaixe o suporte até que a ponta da agulha de vidro toque suavemente a superfície do cérebro, ajustando a coordenada Z em zero.
Introduza a agulha de vidro no parênquima cerebral na profundidade desejada. Injete a droga lentamente a uma taxa de cerca de um nanolitro por segundo. Quando o volume desejado for injetado, deixe a droga difundir no parênquima por dois minutos e, em seguida, proceda com a remoção da agulha de forma suave e lenta.
Finalmente, feche a ferida cirúrgica com cola e remova o animal do aparelho estereotáxico. Coloque o animal em uma gaiola pré-aquecida para recuperação da anestesia. Agora mostraremos alguns resultados da microinjeção.
A lisofosfatidilcolina ou lyin foi injetada no corpo caloso, que produz desmielinização dos feixes de substância branca, para minimizar a lesão cerebral provocada pela agulha de vidro. Apenas 20 litros de lyin foram injetados. A desmielinização é representada pela ausência da expressão da proteína básica da mielina nos feixes de substância branca; obtém-se uma injeção muito precisa e um trajeto de agulha muito estreito minimiza a lesão cerebral.
Acabamos de mostrar como construir agulhas de vidro para realizar microinjeções em estruturas cerebrais profundas. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de ter todos os equipamentos e materiais prontos para uso na sala cirúrgica. É isso aí.
Obrigado por assistir e boa sorte com seus experimentos.
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Este artigo apresenta um método para criar agulhas de capilar de vidro com lúmen de 50-μm, permitindo microinjeções precisas em estruturas cerebrais profundas. Esta técnica minimiza danos cerebrais e reduz a difusão passiva de fármacos, possibilitando a administração direcionada em modelos de roedores.
A administração precisa de agentes terapêuticos em estruturas cerebrais profundas permanece um desafio crítico no desenvolvimento de fármacos em neurociência, especialmente em modelos de pequenos animais, onde o trauma procedimental pode comprometer os resultados. Este método de microinjeção aumenta a fidelidade do engajamento do alvo ao minimizar danos teciduais induzidos pela injeção e difusão passiva, melhorando assim a confiabilidade de estudos com intervenções farmacológicas e genéticas. A abordagem auxilia na redução de riscos mecanicistas na fase inicial de descoberta, permitindo a administração reprodutível e com baixo volume de fármacos, vetores virais ou transplantes celulares, com menor variabilidade biológica.
Este método insere-se no continuum de descoberta que vai da validação do alvo até a otimização do composto líder, onde a entrega precisa ao SNC é essencial para avaliar a modulação do alvo e o envolvimento da via.