Name: Preparação de culturas de neurônios a partir de embriões Midgastrula Stage Drosophila (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-07-04T00:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 7 s
Description: Aprenda a preparar culturas primárias de neurônios a partir de embriões de Drosophila em estágio de gástrula média. Este método permite estudar a excitabilidade elétrica e a transmissão sináptica em neurônios.

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Este trabalho foi financiado pelo NIH para conceder NS27501 DKOD. Suporte adicional para este trabalho a partir de uma HHMI Professor Grant para DKOD.

I. de colheita de embriões Drosophila <ol><li> Prepare pratos de coleta de ovos <ol><li> Ferva 200 ml dH 2 O com 8 g de agar </li><li> Arrefecer a 50 ° C </li><li> Adicionar 2 ml EtOH e 2 ml de ácido acético </li><li> Despeje em 35 milímetros petri pratos de plástico, tops </li><li> Esfriar e guarde em recipiente apertado do ar a 4 ° C </li><li> Faz cerca de 80 placas </li></ol></li><li> Prepare colar Yeast <ol><li> Dissolver o fermento Fleishmans ativa fermento em água para formar colar </li><li> Microondas por 20-30 segundos para matar levedura (atente para ferver mais) </li><li> Loja em seringa de 10 cc (sem agulha) a 4 ° C por 2 semanas </li></ol></li><li> Moscas: Os adultos utilizados para a coleta de ovos são geralmente mais produtiva entre 3 e 14 dias depois de sair, desde que tenham tido acesso a alimentos frescos. Muitas ações têm mutante diminuição da fertilidade, que pode se manifestar de uma taxa reduzida de postura de ovos e uma mudança na idade em que eles são mais produtivos. Geralmente, várias centenas de adultos fazem para uma população postura boa. </li><li> Procedimento: Espalhe uma camada fina de pasta de levedura em uma placa de coleta de ovos. Isto fornece um substrato favorável para a postura dos ovos. Adulto transferência voa para uma garrafa limpa ovo recolha e tape o prato de coleta para a boca da garrafa. Não deixe as moscas nessas garrafas mais do que 3-4 horas como a umidade aumenta e as moscas ficam presas na pasta e nas laterais do frasco. </li></ol> II. Dechorionation embrião com Bleach <ol><li> Criar um funil de Buchner ligado a um frasco de filtro ligado a um aspirador. Coloque um pedaço de papel Whatman # 1 no funil. Com sucção em execução, molhe o papel com água destilada estéril. </li><li> Enxágüe embriões a partir de chapas para a coleta de papel de filtro com uma corrente de água de uma garrafa de lavagem. </li><li> Lave-os em vários volumes de água estéril, desligue aspirador, em seguida, adicionar um volume funil de água sanitária a 50%. Deixe os ovos sentar 5-10 minutos. O córions será dissolvido em 1-2 minutos, mas quanto mais tempo você deixar os embriões no bleach mais da levedura contaminante será destruída. Escolher os adultos e as larvas que têm lavado prato. </li><li> Enxágüe os embriões em uma placa de Petri estéreis (NÃO cultura de tecidos) com água destilada estéril. Muitos dos embriões grude no fundo do prato, se não tiver sido pré-molhada. Enxaguar várias vezes com água estéril neste prato. </li><li> Examine os embriões com luz transmitida para escolher embriões meados de gástrula palco. </li></ol> III. Preparação de culturas único embrião <ol><li> Faça DDM1 (ver receitas na seção IV) </li><li> Derramar água fora prato de embriões pouco antes de cultivo. Cobrir embriões com meios estéreis. </li><li> Conjunto com 3, 35 pratos de petri milímetros. Coloque em 4 autoclavado lamínulas redondas em cada prato. Em cada lamela, colocar 5 mL de meio. Use Bellco lamínulas de baixa coverlips vidro de chumbo. Bellco Biológica Copos 800-257-7043 Cat # 1943-00012 </li><li> Puxar alguns pipetas razoavelmente bem. O pipetas que usamos são puxados em um extrator Narishige PP-83. As dimensões exatas da pipeta não são cruciais e que geralmente puxá-los mais finos do que queremos e eles quebram a ponta no mesmo campo de visão como o embrião para medir o tamanho. Você não quer para sugar todos os embriões de uma só vez, e seu não quer a ponta tão pequena que leva 5 minutos para sugar as células. Apontar para algures no meio. Examine os embriões com luz transmitida e usar um tubo de sucção da boca ligado ao pipeta para remover o conteúdo do embrião. Dispersar as células para a lamínula cuidadosamente preparado por expelir as células tão perto da lamela possível. Você pode querer examinar as lamelas com maior poder e mais dispersar as células da mesma maneira. </li><li> Permitir que as células sentar-se por não mais que 10 minutos. Flood o prato com a mídia e colocar em incubadora, de 4-5% CO 2 ambiente, se estiver usando meio definido. Temperatura entre 22-24 ° C. Rotineiramente use 23 ° C e umidade de 95%. Umidade é importante, como você quiser evitar a evaporação. Você pode usar uma incubadora de padrão de mamíferos colocado em uma das câmaras frias com controle de temperatura definida para 23 ° C. </li></ol> IV. DDM1 meio definido para o cultivo das culturas <ol><li> Faça DMEM: Para 100 mls de F12/DME Ham Media (DMEM) (Irvine Scientific # 9052). <ol><li> Adicionar 0,476 g Hepes (20mM) (Sigma # H-3375). Mix. </li><li> Adicionar 1,25 ml L-Glutamina 200 mM (Irvine Scientific # 9317). Mix. </li><li> Filtro na capa com 0,2 m de acetato de seringa filtro (precisa de 2 filtros). </li><li> O pH é 6,64 e Osm 288. </li><li> Faça alíquotas de 10ml em tubos de centrífuga de 15ml. </li><li> Armazenar a 4 ° C por não mais de 2 semanas. Nota: Utilize sempre água filtrada e fazer autoclavado em recipientes que são reservados para Mídia e suplementos apenas. Nunca coloque um eletrodo de pH ou agitar bar utilizado para outros fins em Media.To fazer DDM1: suplementos Adicionar listados abaixopara DMEM pouco antes de cultivo. </li></ol></li><li> A 10 ml de DMEM acrescentar: <ul><li> 100 mL Transferrina </li><li> 100 mL Putrescine </li><li> 100 mL Selenium </li><li> 100 mL de progesterona </li><li> 50 mL de insulina </li></ul></li></ol>

<ol><li>Rohrbough, J., O'Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+bases+of+behavioral+plasticity%3A+Establishing+and+modifying+synaptic+circuits+in+the+Drosophila+Genetic+System%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System.</a> J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).</li>
<li>O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voltage-gated+currents+and+firing+properties+of+embryonic+Drosophila+neurons+grown+in+a+chemically+defined+medium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Voltage-gated currents and firing properties of embryonic Drosophila neurons grown in a chemically defined medium.</a> J. Neurobiol. 27, 113-126 (1995).</li>
<li>Lee, D., O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+excitatory+synaptic+transmission+mediated+by+nAChR+in+cultured+Drosophila+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Fast excitatory synaptic transmission mediated by nAChR in cultured Drosophila neurons.</a> J. Neurosci. 19, 5311-5321 (1999).</li>
<li>Lee, D., O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclic-AMP-dependent+plasticity+at+excitatory+cholinergic+synapses+in+Drosophila+neurons%3A+Alterations+in+the+memory+mutant+dunce%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cyclic-AMP-dependent plasticity at excitatory cholinergic synapses in Drosophila neurons: Alterations in the memory mutant dunce.</a> J. Neurosci. 20, 2104-2111 (2000).</li>
<li>Hodges, D. D., Lee, D., Boswell, K., Preston, C. F., Hall, L. M., O'Dowd, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((tipE+regulates+sodium-dependent+repetitive+firing+in+Drosophila+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell+Neurosci%22%5BJournal%5D)">tipE regulates sodium-dependent repetitive firing in Drosophila neurons.</a> Mol. Cell Neurosci. 19, 402-416 (2002).</li>
<li>Lee, D., Su, H., Dowd, O., K, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GABA+receptors+containing+Rdl+subunits+mediate+fast+inhibitory+synaptic+transmission+in+Drosophila+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">GABA receptors containing Rdl subunits mediate fast inhibitory synaptic transmission in Drosophila neurons.</a> J. Neurosci. 23, 4625-4634 (2003).</li>
</ol>

Em culturas de Drosophila preparados a partir de embriões em estágio midgastrula os neurônios surgem a partir de precursores neuroblastos, muitos dos quais divide antes de diferenciação in vitro. Este sistema, portanto, proporciona uma oportunidade única para a exploração de fatores genéticos e ambientais importantes em fases muito iniciais de desenvolvimento neuronal (Rohrbaugh et al., 2003). Nós temos mostrado que os neurônios cultivados em um meio simples definida diferenciar em neurônios eletricamente excitáveis ​​que também forma funci...

As culturas feitas neste mídia deve ser mantida em uma incubadora de 5% CO2 em cerca de 22-24 ° C. Usamos um padrão de cultura de tecidos de mamíferos incubadora colocado em uma sala fria e aquecida a 23 ° C. Sempre usada água filtrada e fazer autoclavado em recipientes que são reservados para a mídia e os suplementos apenas. Nunca coloque um medidor de pH ou agitar bar utilizado para outros fins nos meios de comunicação.

preparação de culturas de neurônios a partir de embriões midgastrula stage drosophila

Preparation of Neuronal Cultures from Midgastrula Stage Drosophila Embryos

Este vídeo ilustra o procedimento para a tomada de culturas primárias de neurônios a partir de embriões midgastrula estágio Drosophila. Os métodos de coleta de embriões e sua dechorionation o uso de alvejante são demonstradas. Usando uma pipeta de vidro ligado a um tubo de sucção da boca, que ilustram a remoção de todas as células de embriões individuais. O método para dispersar as células de cada embrionários em uma queda (5 l) pequenas de meio sobre uma lamela de vidro sem revestimento é demonstrada. Uma visão através do microscópio, 1 hora após o plaqueamento ilustra a densidade celular preferido. A maioria das células que sobrevivem quando cultivada em meio definido são neuroblastos que dividem uma ou mais vezes na cultura antes de estender processos neuríticas por 12-24 horas. Uma visão através do microscópio ilustra o nível de crescimento de neuritos e ramificação esperado em uma cultura saudável de dois dias in vitro. As culturas são cultivadas em um bicarbonato simples, baseada médio definido, em um 5% CO 2 incubadora a 22-24 ° C. Processos neuríticas continuar a desenvolver durante a primeira semana de cultura e quando fazem contato com neurites de células vizinhas que muitas vezes forma funcional conexões sinápticas. Neurônios nessas culturas, se manifesta de sódio voltagem dependentes, cálcio e canais de potássio e são eletricamente excitáveis. Este sistema de cultura é útil para estudar molecular fatores genéticos e ambientais que regulam a diferenciação neuronal, excitabilidade, e formação de sinapses / função.

Este vídeo demonstra a preparação de culturas primárias de neurônios a partir de embriões midgastrula estágio Drosophila. Pontos de vista de culturas vivas mostram as células de 1 hora após o plaqueamento e neurônios diferenciados após 2 dias de crescimento em um meio de bicarbonato baseado definido. Os neurônios são eletricamente excitáveis ​​e formam conexões sinápticas.

Preparação de culturas de neurônios a partir de embriões Midgastrula Stage Drosophila

Este vídeo ilustra o procedimento para a realização de culturas neuronais primárias a partir de embriões de Drosophila em estágio de gastrulação média. Os métodos para a coleta de embriões...

Meu nome é Diana Dowd, e sou professora do departamento de Biologia do Desenvolvimento e Células e anatomia e neurobiologia na uc Irvine. E hoje vou demonstrar o preparo de culturas neuronais primárias a partir de embriões de drosophila. O que isso envolve é, na verdade, remover todas as células de um embrião de drosophila em estágio de meio gastrula e colocá-las em cultura celular.E o que utilizamos essas culturas para é compreender realmente quais são os genes e fatores ambientais importantes para a regulação da excitabilidade elétrica e da transmissão sináptica entre neurônios de drosófila. Para iniciar este procedimento, precisamos coletar embriões de drosófila. Para isso, pegamos placas de coleta de ovos e espalhamos um pouco de pasta de levedura sobre elas.É um substrato favorável para as moscas adultas depositarem seus ovos. Colocamos essas placas sobre frascos contendo uma população de moscas adultas, geralmente de cem a 200 moscas. Em seguida, deixamos as moscas adultas depositarem seus ovos por cerca de duas a três horas.Em seguida, removemos as placas de coleta de ovos, e esses são os embriões que utilizamos para o procedimento de Cultura. O próximo passo do procedimento

preparation-neuronal-cultures-from-midgastrula-stage-drosophila

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Biologia

Este vídeo demonstra a preparação de culturas primárias de neurônios do cérebro de final de estágio Drosophila pupas. Pontos de vista de culturas vivas mostram crescimento de neuritos e imagem dos níveis de cálcio usando Fura-2.

Culturas primárias neuronais do cérebro de Tarde Stage Drosophila pupas

Na eletroporação utero é um método valioso para transfecting células progenitoras neuronal in vivo. Dependendo da colocação dos eletrodos e do ponto no tempo de desenvolvimento de eletroporação, certos subgrupos de células corticais podem ser alvo. Células-alvo podem então ser analisados ​​in vivo ou in vitro para efeitos da alteração genética.

No útero Eletroporação seguido por Cultura Neuronal primário para estudar a função do gene no subconjunto dos neurônios corticais

Nós fornecemos um protocolo detalhado para preparar células primárias...

Culturas de células primárias de Drosophila Os embriões Gástrula

Este vídeo descreve um método para cultivar neurônios dopaminérgicos a partir de tecido cerebral embrionário de camundongo. O processo inclui o tratamento do mesencéfalo com uma enzima proteolítica, destacando as células e cultivando-as em lamínulas revestidas de polímero em um meio rico em nutrientes com antibióticos para seu crescimento e viabilidade a longo prazo.

Cultura e manutenção de neurônios dopaminérgicos do tecido cerebral embrionário de camundongos

Este vídeo demonstra um protocolo para identificar fatores exógenos que iniciam a reativação das células-tronco neurais cerebrais da Drosophila de seu estado quiescente. As larvas recém-eclodidas são dissecadas para isolar seus cérebros, que são então cultivados em meio com ou sem um hormônio de teste para avaliar o potencial do hormônio para induzir a reativação e proliferação de células-tronco neurais.

Analisando a reativação de células-tronco neurais em explantes cerebrais de Drosophila cultivados

O vídeo demonstra o processo de isolamento e cultura de neurônios dopaminérgicos do mesencéfalo de embriões de camundongos. Os assoalhos do mesencéfalo ventral isolados são dissociados usando enzimas. Os neurônios dopaminérgicos resultantes são colhidos e transferidos para micro-ilhas dentro de placas de vários poços. As células são incubadas com um meio de neurônio dopaminérgico para manter as células em alta densidade dentro das micro-ilhas.

Isolamento e cultura de neurônios dopaminérgicos embrionários primários do mesencéfalo de camundongos

Fonte: Jeong, S. Visualização do padrão de projeção axonal de neurônios motores embrionários em Drosophila. J. Vis. Exp. (2017)Este vídeo demonstra a visualização de projeções axonais em embriões Drosophila. A imunomarcação de neurônios motores, a dissecção precisa para expor estruturas neuronais e a microscopia de contraste de interferência diferencial revelam coletivamente a arquitetura neuronal detalhada, enfatizando os padrões de projeção axonal.

Visualização de padrões de projeção axonal de neurônios motores embrionários em Drosophila

Células Drosophila S2 e neurônios cultivados são grandes sistemas para a imagem latente de transporte organela motorizado in vivo. Aqui nós descrevemos protocolos detalhados para o cultivo de ambos os tipos de células, a sua imagem e análise de transporte.

Transporte Organelle em Cultivadas Drosophila Células: Linha celular S2 e primário neurônios.

As causas da degeneração dos neurônios dopaminérgicos do mesencéfalo durante a doença de Parkinson não são totalmente compreendidas. Os sistemas de cultura celular fornecem uma ferramenta essencial para o estudo das propriedades neurofisiológicas desses neurônios. Aqui apresentamos um protocolo otimizado, que pode ser utilizado para modelagem in vitro da neurodegeneração.

Isolamento, cultura e Long-Term Manutenção da Primária mesencefálico Dopaminergic neurônios dos cérebros de roedores Embryonic

Este trabalho detalha um método de imuno-histoquímica padrão para visualizar as projeções de neurônios motores de embriões de Drosophila melanogaster em estágio final 16. A preparação em fileira de embriões fixos corados com anticorpo FasII fornece uma ferramenta poderosa para caracterizar os genes necessários para a identificação do axônio do motor e o reconhecimento do alvo durante o desenvolvimento neural.

Visualização do Padrão de Projeção Axonal de Neurônios de Motor Embrionários em<em&gt; Drosophila</em

Um método para reativar células-tronco neurais quiescentes em explantas cerebrais de Drosophila cultivadas foi estabelecido. Usando este método, o papel dos sinais sistêmicos pode ser desacoplado a partir de sinais intrínsecos teciduais na regulação da quiescência de células-tronco neurais, entrada e saída.

Reativação de células-tronco neurais em explantes cerebrais de Drosophila cultivadas

Aprenda a preparar culturas primárias de neurônios a partir de embriões de Drosophila em estágio de gástrula média. Este método permite estudar a excitabilidade elétrica e a transmissão sináptica em neurônios.

Preparação de culturas de neurônios a partir de embriões Midgastrula Stage Drosophila

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