19 de abril de 2011
Um método simples e eficiente para transformar Physcomitrella pantens Protoplastos é descrito. Este método é adaptado de protocolos para Physocmitrella Protonemal protoplastos e Arabidopsis Transformação de protoplastos do mesófilo 1.
O objetivo geral deste procedimento é transformar os Protoplastos SCO Metre. Isso é feito digerindo primeiro as plantas com Drizly. Em seguida, os protoplastos são lavados com manitol para remover o gotejamento e são então incubados com DNA e peg.
Finalmente, os protoplastos transformados são espalhados em placas e incubados. Em última análise, os resultados podem ser obtidos. Isso mostra protoplastos transformados expressando proteínas marcadas com fluorescência por meio de microscopia de fluorescência Demonstrando o procedimento estará Y lu, um pós-doutorado do meu laboratório.
A principal vantagem desta técnica é que ela é eficaz e gera consistentemente protoplastos que expressam a proteína de interesse Para isolar musgo Os protoplastos começam adicionando nove mililitros de 8% de manitol em uma placa de Petri usando uma espátula Coloque musgo de cinco a sete dias de idade de duas a três placas PP NH quatro no manitol. Consulte o protocolo escrito que acompanha esta e outras receitas de reagentes. Em seguida, adicione três mililitros de 2%drizly e incube em temperatura ambiente com agitação suave por uma hora.
Filtrar a mistura através de uma malha de 100 mícrons para obter uma suspensão homogénea verde. Em seguida, centrifugar o filtrado a 250 g durante cinco minutos. Descarte o sobrenadante com muito cuidado.
Ressuspenda os protoplastos em 500 microlitros de 8% de manitol. Em seguida, adicione mais 9,5 mililitros de 8% de manitol. Certifique-se de que os protoplastos estejam totalmente suspensos.
Execute as etapas de lavagem mais duas vezes, girando a solução novamente a 250 G por cinco minutos. Descartar o sobrenadante e suspender os protoplastos. Primeiro em 500 microlitros.
Em seguida, 9,5 mililitros de 8% de manitol usando um hemocitômetro. Conte o número de protoplastos em 10 microlitros da suspensão para transformar o DNA nos protoplastos isolados. Primeiro, gire a mistura de protoplastos a 250 G por cinco minutos.
Remova o sobrenadante ressuspendendo os protoplastos a 1,6 milhão por mililitro em solução MMG. Incubar a suspensão à temperatura ambiente durante 20 minutos. Em seguida, adicione 600 microlitros da solução de Protoplasts em um tubo de cultura contendo 60 microgramas de DNA. Tremer.
Adicione suavemente 700 microlitros de solução de cálcio PEG e agite. Poço incubar a amostra à temperatura ambiente durante 30 minutos durante este período de espera. Cubra as placas PRMB com celofane.
Em seguida, dilua a suspensão com três mililitros de W cinco solução centrifugar a 250 G por cinco minutos. Para remover o PEG ressuspende, os protoplastos em dois mililitros de placa PRMT um mililitro por placa PRMB coberta com celofane. Mantenha as placas a 25 graus Celsius em uma câmara de crescimento.
Finalmente, quatro dias após a transformação, mova o celofane para placas de seleção novas. Esta figura mostra um exemplo de plantas de 18 dias regeneradas a partir de protoplastos, transformadas com 15 microgramas de plasma super enrolado, DNA, carregando um de resistência à higromicina. Aqui, 30 microgramas do mesmo plasmídeo super enrolado, DNA, foram transformados em protoplastos.
60 microgramas de DNA xadrez foram transformados nesta amostra. E, finalmente, essas plantas foram regeneradas a partir de protoplastos que foram transformados com 120 microgramas do mesmo DNA de plasma superenrolado carregando o de resistência à higromicina. A eficiência de transformação não é afetada por concentrações de DNA de até 60 microgramas.
No entanto, concentrações mais altas de DNA são prejudiciais a esse procedimento. Os dados indicam que este método fornece resultados consistentes em uma ampla gama de quantidades de DNA um semestre. Esta técnica pode ser feita em três horas se for realizada corretamente.
Após este procedimento, métodos adicionais como RNAi transitório e nocautes genéticos podem ser realizados para responder a perguntas adicionais sobre a função do gene.
Este artigo descreve um método simples e eficiente para transformar protoplastos de Physcomitrella patens. A técnica é adaptada de protocolos existentes para transformação de protoplastos e tem como objetivo produzir resultados consistentemente bem-sucedidos.
A transformação mediada por PEG de protoplastos de Physcomitrella patens permite a entrega eficiente e reprodutível de genes, apoiando a genômica funcional de alto rendimento em sistemas vegetais. Essa capacidade é fundamental para equipes de descoberta inicial que buscam investigar a função gênica, validar alvos e acelerar a elucidação de vias metabólicas em um modelo geneticamente manipulável. O potencial de escalonamento e padronização do método torna-o valioso para triagens genéticas abrangentes e desmistificação mecanicista em portfólios.
Este protocolo de transformação insere-se na transição entre a descoberta inicial e a identificação de compostos líderes, permitindo a manipulação genética, a validação de alvos e o desenvolvimento de ensaios em modelos vegetais.