Name: Avaliação de Desempenho nadando em Peixes (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-20T12:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 12 s
Description: Aprenda a avaliar o desempenho natatório em peixes utilizando um respirometro de túnel de natação. Este método permite medir o consumo de oxigênio e analisar comportamentos de natação para estudos de ecologia fisiológica.

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O autor agradece a Barbara Berli para fornecer dados de exemplo eo financiamento graciosa da Federação canadense dos animais selvagens.

1. Capturar e Aclimatação <ol><li> Usando uma rede sem nós, recolher os peixes individuais das suas tanque. Minimizar capturar o tempo, evitar a coleta de peixes múltiplas e não mantenha os peixes por mais de alguns segundos na rede como esses fatores podem aumentar o estresse. O estresse pode afetar o desempenho da natação. </li><li> Coloque o peixe ou em um tanque de transferência com anestesia ou diretamente para o respirômetro túnel nadar ("túnel nadar"). Se os peixes devem ser anestesiados, seja tricaina metanosulfanato (MS222) ou óleo de cravo pode ser usado. Concentrações aceitáveis ​​dependerá de muitos fatores, incluindo a sensibilidade das espécies e temperatura, mas normalmente variam entre 10-100 mg / L para 1,2 ou anestésico. A concentração de anestésico deve induzir a anestesia estágio 3 (ou seja, que não responde a estímulos externos) e permitir a recuperação rápida (segundos, por exemplo). Ao usar MS222 em água doce, bicarbonato de sódio deve ser usado em partes iguais (em massa) como um buffer. Sem buffer, MS222 irá reduzir significativamente o pH, eo pH baixo pode prejudicar o tecido branquial. Buffer não é necessário na água do mar, uma vez que contém capacidade tampão suficiente. </li><li> Peixes anestesiados pode ser sexuado, medida de massa e comprimento, e dado um exame superficial externa de sua condição. Comprimento pode ser tomado como o comprimento total (TL), comprimento de dentes (FL) ou comprimento do corpo (BL). Essas métricas diferentes são tipicamente aplicados de acordo com a prática habitual, morfologia das espécies (por exemplo, não fin bifurcada) ou condição de peixe (por exemplo, nadadeira caudal desgastada). </li><li> Ambos os peixes anestesiados e não anestesiados devem ser introduzidos no túnel de nadar o mais rápido possível e em água corrente, pois isso vai facilitar a recuperação. A vazão é normalmente definido como peixe que será capaz de descansar no fundo enquanto pouco de natação. Uma taxa de exemplo para salmão-vermelho adulto é de 0,3 BL / s. </li><li> Peixes devem ser deixados no túnel de nadar para se aclimatar. Período de aclimatação pode ser configurado para períodos tradicionais (por exemplo, 12 horas), ou para aqueles usados ​​na maioria dos estudos atuais que podem ser tão curto quanto 30 min. Para determinar um período de aclimatação ideal para um peixe dado, o tempo necessário para chegar a um estável, de preferência com baixa taxa metabólica pode ser usado (próxima seção detalhada). </li></ol> 2. Medir as taxas metabólicas <ol><li> Mudanças no oxigênio dentro do túnel de natação devem ser registradas ao longo da duração do teste de natação (s). Sondas de oxigênio pode ser lacrado diretamente para dentro do túnel de natação, no entanto, ele deve primeiro ser determinado se o fluxo de água sobre a sonda afeta a função da sonda. Se a sonda é afetada pela velocidade da água que podem ocorrer durante o teste, a sonda terá de ser colocado na sua própria câmara fora do túnel e abastecidos com água do túnel por uma bomba. </li><li> Para repor o oxigênio e diminuir o acúmulo de resíduos, o túnel nadar provavelmente precisará ser lavada periodicamente. Saturação de oxigênio não devem ser permitidas a cair abaixo de 70% para a maioria das espécies como o desempenho de natação pode ser reduzido ou pode haver uma mudança para o metabolismo anaeróbico. Lavagem com água do túnel também pode ajudar a reduzir os aumentos na temperatura da água, no entanto, a temperatura da água deve ser mantida constante pelo acoplamento do túnel nadar até um chiller. Mudanças de temperatura afetará a taxa metabólica. </li><li> Rotina e máxima taxas metabólicas, abreviado "RMR" e "MMR ', normalmente são determinados (Figura 1A). Essas taxas podem ser expressos em volume (V o 2) ou massa (M o 2) de oxigênio por unidade de massa, por unidade de tempo, por exemplo, mg O 2 / kg / hr. A diferença entre as duas taxas podem ser tomadas para obter o 'âmbito da actividade ". Exercício seguinte o "débito de oxigênio", referido como "o consumo de oxigênio em excesso pós-exercício (EPOC), também pode ser determinado e é igual ao oxigênio necessário durante o retorno pós-exercício para RMR. </li></ol><ol><li> Nota: muitas sondas de oxigênio e sua saída fornecerá automaticamente a temperatura corrigida mudanças no oxigênio dissolvido. Aqueles que não terão de ser corrigidos. Além disso, alguns valores terão que ser corrigida se as medições foram realizadas em condições salinas. </li></ol> Medição de desempenho de natação Uma variedade de habilidades de desempenho natação pode ser avaliado em um túnel de nadar. A forma mais comum para caracterizar o desempenho natação é pela duração para o qual ele pode ser mantido 3. Quanto mais lenta a velocidade, mais tempo pode ser mantido e vice-versa. As velocidades são geralmente referidos como 'burst', 'prolongada' ou 'sustentável', que correspondem a duração de segundos, minutos ou horas (max = 200 min), e horas e mais além (&gt; 200 min), respectivamente. Para determinar essas velocidades, os peixes são submetidos a definida pelo usuário 'passos', que consiste em 'altura' set, água ou seja aumentar a velocidade de fluxo, e 'duração', isto é, duração passo. Maximizar a altura dos degraus e comprimento do passo minimizando irá capturar a velocidade maior onda, ao fazer o inverso irá capturar a maior velocidade sustentada. No passotestes, a maneira tradicional de indicar a velocidade máxima atingida é igual à velocidade da última etapa totalmente concluída mais a parte temporal da etapa final, inacabada (Figura 1A). Explosão de avaliação de desempenho de natação <ol><li> Para capturar natação estourar ou a capacidade de sprint, após aclimatação, trazer a velocidade de fluxo para um máximo estimado (por exemplo, duas vezes por crit U; veja abaixo), e motivar os peixes a nadar. Os peixes devem estar descansando na parte traseira da câmara como a velocidade de fluxo é aumentado rapidamente. Peixes podem precisar de ser motivado para nadar. A motivação pode ser mecânico (toque, por exemplo) ou elétrica (por exemplo, uma pequena carga aplicada a uma grade de choque na parte traseira do túnel nadar). Embora não seja especificamente um teste de habilidade rajada, o peixe também pode ser dado um "teste de aceleração constante" (CAT ou U ΔV), constituído por várias etapas de curta duração (por exemplo, 1 min) 4,5. </li><li> Registrar a duração de natação. O número de explosão individual e sua distância também podem ser registrados 6. Velocidade pode ser dada como a máxima atingida ou calculados de acordo com a equação na Figura 1A. Avaliação de desempenho prolongado e sustentado de natação A medida mais utilizada para estimar a capacidade de natação prolongada ou sustentada é referido como 'o desempenho de natação crítica "(crit U). Comprimento do passo para crit U tem sido tradicionalmente definido em 20 min, apesar de tempos mais curtos, como 10 min também têm sido utilizados. A regra geral é que, pelo menos, dez passos devem ser tomados antes de fadiga, que pode resultar em testes de longa, por exemplo,&gt; 3 horas / peixe. Para encurtar o teste U crit, a sete etapas iniciais pode ser abreviado para 5 min (o teste é então chamado de "rampa de crit U"). </li></ol><ol><li> Após aclimatação e / ou um mergulho prática, aumentar a velocidade de fluxo de acordo com tamanho do passo. </li><li> Para definir a altura dos degraus apropriado para crit U, provavelmente será necessário estimar crit U para uma amostra do peixe a ser testado. Isto pode ser conseguido usando os valores da literatura. Alternadamente, peixe pode ser dado um "mergulho prática" após a introdução ao túnel. Para isso, dar peixe a curto, definido pelo usuário etapas, até a fadiga. Use a velocidade final alcançada como uma estimativa inicial de U crit. Ajustar o tamanho do passo (altura e comprimento) para cada peixe. </li><li> Para testar a capacidade de recuperação ou determinar a variação individual de desempenho, o peixe pode ser dado um teste de natação segundo após um período de recuperação 7-9. </li><li> O peixe também pode ser testado em escolas, embora os peixes tendem a fadiga em diferentes momentos durante os testes que pode ser problemático para removê-los do túnel e eliminar a capacidade de medir o consumo de oxigênio. </li><li> Uma vez cansado de peixes, devem ser autorizados a recuperar ou removido imediatamente para amostras de tecido. Várias métricas de desempenho relacionadas à natação podem ser coletados durante os testes ou após o uso de análise de vídeo (Figura 1 C, D). </li><li> Para medir a taxa de ventilação e freqüência de batimento de cauda, ​​a taxa de bombeamento e opercular número de batidas da cauda deve ser recolhida durante períodos de alguns segundos (Figura 1B) 10,11. </li><li> Para medir a amplitude bater cauda, ​​a deflexão máxima da nadadeira caudal pode ser medido (Figura 1B) 12. </li><li> Teste seguinte, os peixes podem ser sacrificado, dado um exame post-mortem e tecidos coletados para determinar o hematócrito (volume globular vermelha), as concentrações de hormônio do estresse, armazena energia muscular (por exemplo, fosfocreatina glicogênio), atividades de enzimas (por exemplo, lactato desidrogenase, esterase acetilcolina ) ou outros parâmetros fisiológicos. </li></ol> 3. Resultados representante <img src="/files/ftp_upload/2572/2572fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. A) Um exemplo de teste crit rampa U-dado a um salmonídeos juvenil, uma incubadora levantou truta arco-íris (Oncorhynchus mykiss), 6,3 cm de comprimento do corpo (BL) e 3,5 g de massa. O teste foi realizado em uma L 12 modificado Brett tipo respirômetro (Loligo Systems, Dinamarca; <a href="http://www.loligosystems.com/">www.loligosystems.com</a> ). Rotina e máxima taxas metabólicas foram calculadas como a inclinação (mg / h) x volume (L) / peixe em massa (kg), e foram 198 e 961 mg O 2 / kg / h, respectivamente (âmbito de atividade = 4,84). Estas taxas são de acordo com os relatados por Brett para juvenis sockeye salmão (O. nerka) 13. Nota: para cálculos de consumo de oxigênio, o volume de água é igual ao volume respirômetro menos volume de peixes. A cruz indica o ponto onde os peixes se recusou a nadar mais e onde crit U foi calculado. B) Os valores de freqüência de batimento da cauda foram registrados mais de 10 s seis vezes; valores de amplitude cauda bateu foram registrados três vezes; valores apresentadossão média ± SEM. C) Uma vista lateral alargada e D) vista de cima do peixe nadando dentro da câmara de nadar. D) Mostra o peixe rastreado por EthoVision software (Noldus, Países Baixos; <a href="http://www.noldus.com/">www.noldus.com</a> ). Abreviaturas: crit U = velocidade de nado crítica; U f = velocidade da última etapa totalmente concluída, U s = velocidade de passo, t f = tempo gasto na última etapa, o tempo t = s passo.

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<li>Blažka, P., Volf, M., Čepela, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+type+of+respirometer+for+the+determination+of+the+metabolism+of+fish+in+an+active+state%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Bohemoslov%22%5BJournal%5D)">A new type of respirometer for the determination of the metabolism of fish in an active state.</a> Physiol. Bohemoslov. 9, 553-558 (1960).</li>
<li>Peake, S. J., Farrell, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fatigue+is+a+behavioural+response+in+respirometer+confined+smallmouth+bass%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Fish+Biol%22%5BJournal%5D)">Fatigue is a behavioural response in respirometer confined smallmouth bass.</a> J. Fish Biol. 68, 1742-1755 (2006).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Em um ambiente natural, comportamentos como predador de fuga e migração dependem sendo capaz de nadar em intensidades específicas para diferentes ocasiões. Em um ambiente de laboratório, nadar respirômetros túnel e aumenta pisou na velocidade pode ser usada para estimar a capacidade dos peixes para executar numerosos comportamentos. Medidas da taxa metabólica e outros tecidos em nível de avaliação (como a produção de lactato) podem ser incluídos com os testes de natação para ajudar a determinar os mecanismos fisiológicos subjacentes modos diferentes de natação. Projeto de túnel de natação pode influenciar fortemente o desempenho da natação. Existem vários tipos de túneis nadar utilizado para determinar o desempenho de natação, a maioria são caracterizados como quer Brett 13 - ou Blazka de 14 tipos. Para qualquer projeto, considerações importantes são o &quot;uniformidade&quot; do fluxo de água (como é retilíneo), a velocidade do fluxo máximo eo comprimento da câmara de nadar. Uniformidade é importante porque os peixes nadam instintivamente encontrar e em áreas de baixo fluxo para minimizar o esforço. Taxa de fluxo elevado potencial pode ser necessário testar a capacidade de natação estourar ou espécies nadar rápido (atum, por exemplo). Swim comprimento da câmara pode ser muito significativa como em câmaras de pequeno comprimento, o comprimento de peixes ou seja,&gt; 10% do comprimento da câmara, o peixe pode ser incapaz de utilizar todos os modos de natação. Especificamente, pequenos tubos podem restringir a capacidade dos peixes para a transição de um equilíbrio instável portão para nadar, isto é, à natação estourar e litoral. Portanto, o peixe pode parar de nadar em aproximadamente a mesma velocidade, independentemente do comprimento do passo e crit U pode ser análoga a &quot;velocidade de transição gate &#39;15. Todos os túneis nadar precisam ser calibrados usando dispositivos como sensores de fluxo ou velocimetria de partículas de imagens (PIV) do equipamento. O ideal é nadar túneis terá fluxo retilíneo, mas se os peixes são encontrados para favorecer uma área, sua velocidade de mergulho pode ser ajustado com base em diferenças locais no fluxo.

<table><tbody><tr><td>tricaina metanosulfonato (MS222)</td><td><a href="http://www.argent-labs.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Argent Labs</a></td><td></td><td>Opcional</td></tr><tr><td>Óleo de cravo</td><td><a href="http://www.sigmaaldrich.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Sigma-Aldrich</a></td><td></td><td>Opcional</td></tr><tr><td>Respirômetro de túnel de natação</td><td><a href="http://www.loligosystems.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Loligo Systems</a></td><td></td><td>Exigido</td></tr><tr><td>Câmeras de alta velocidade</td><td>Múltiplos fornecedores</td><td></td><td>opcional</td></tr><tr><td>Placa de captura de vídeo</td><td>Múltiplos fornecedores</td><td></td><td>opcional</td></tr><tr><td>Software de análise de comportamento</td><td><a href="http://www.noldus.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Noldus</a></td><td></td><td>opcional</td></tr></tbody></table>

avaliação de desempenho nadando em peixes

Swimming Performance Assessment in Fishes

Testes de desempenho natação de peixes têm sido parte integrante de estudos de energética muscular, mecânica de natação, as trocas gasosas, fisiologia cardíaca, doença, poluição, hipóxia e temperatura. Este documento descreve um protocolo flexível para avaliar o desempenho dos peixes nadando com equipamentos em que a velocidade da água pode ser controlada. O protocolo envolve um a vários aumentos pisou na velocidade de fluxo que se destinam a causar peixe à fadiga. Velocidades passo e sua duração pode ser configurado para capturar as habilidades de natação de relevância fisiológica e ecológica diferente. Mais freqüentemente tamanho do passo é definido para determinar velocidade de nado crítica (crit U), que se destina a captar a capacidade máxima de natação sustentada. Tradicionalmente este teste consistiu em cerca de dez passos cada duração de 20 min. No entanto, as medidas de duração mais curta (por exemplo, 1 min) estão cada vez mais sendo utilizados para captar a capacidade de aceleração ou o desempenho de natação estourar. Independentemente do tamanho do passo, os testes de natação pode ser repetido ao longo do tempo para avaliar a variação individual e capacidade de recuperação. Desfechos relacionados à natação, como medidas de taxa metabólica, use fin, a taxa de ventilação e de comportamento, tais como a distância entre os peixes escolaridade, muitas vezes são incluídos antes, durante e após os testes de natação. Dada a diversidade de espécies de peixes, o número de questões de investigação inexplorado, ea importância de muitas espécies para a ecologia global e saúde econômica, estudos de desempenho peixes nadando permanecerá populares e de valor inestimável para o futuro previsível.

A vida da maioria dos peixes são baseados na natação. Este protocolo descreve técnicas para a captura de uma gama de modos disponíveis de natação para os peixes individuais e escolaridade, e inclui métricas associadas com a fisiologia eo comportamento de natação.

Avaliação de Desempenho nadando em Peixes

Testes de desempenho natatório de peixes têm sido fundamentais para estudos de energética muscular, mecânica de natação, trocas gasosas, fisiologia cardíaca, doenças, ...

O objetivo principal do seguinte experimento é determinar a capacidade dos peixes de realizar comportamentos de natação energeticamente exigentes. Isso é alcançado colocando os peixes em um respirômetro com túnel de natação e submetendo-os a aumentos na velocidade do fluxo de água. Durante esse período, a captação de oxigênio deve ser registrada, permitindo a determinação das alterações na taxa metabólica.Devido ao exercício, pode-se utilizar um software de análise de vídeo para obter informações relacionadas ao comportamento de natação. São obtidos resultados que mostram diferenças no desempenho natatório com base na velocidade máxima que o peixe conseguiu atingir e no tempo que conseguiu manter essa velocidade. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na ecologia fisiológica sobre as demandas energéticas da natação e seus mecanismos reguladores; demonstrar o procedimento juntamente comigo será uma honra para o aluno.Isso pode ser feito a partir do meu laboratório utilizando uma rede sem nó para coletar peixes individuais do tanque de contenção. Minimize o tempo de captura. Evite coletar múltiplos peixes e não segure os peixes na rede por mais de alguns segundos.Como esses fatores podem aumentar, o estresse pode afetar o desempenho natatório. Coloque os peixes em um tanque de transferência com água doce contendo anestesia de metano sulfonato tricaino tamponada com bicarbonato de sódio. Os peixes anestesiados são então sexados, medidos quanto à massa e comprimento, e submetidos a um exame externo rápido de sua condição, medindo-se o comprimento total, o comprimento da forquilha ou o comprimento do corpo.Introduza os peixes no túnel de natação o mais rapidamente possível para auxiliar na recuperação. Ajuste a taxa de fluxo de modo que os peixes possam repousar no fundo enquanto nadam minimamente. Uma taxa de exemplo para salmão-vermelho adulto é 0,3 BL por segundo.Coloque uma sonda de oxigênio no respirômetro. Monitore os níveis de oxigênio no túnel de natação durante o teste. Os períodos de aclimatação variam entre os peixes.Aqui, uma truta arco-íris jovem é aclimatada por 30 minutos para reabastecer oxigênio, reduzir acúmulo de resíduos e manter a temperatura da água. Limpe o túnel periodicamente. A maneira mais comum de caracterizar o desempenho natatório de peixes em um túnel de natação é pela duração durante a qual ele pode ser mantido.Quanto mais lenta a velocidade, maior o tempo que o peixe pode nadar, e vice-versa. As velocidades são geralmente classificadas como explosão, prolongada ou sustentada, correspondendo a durações de segundos, minutos a horas e horas ou mais, respectivamente. Para determinar essas velocidades, os peixes são submetidos a etapas definidas pelo usuário, compostas por altura definida, ou seja, fluxo de água, aumento de velocidade e duração da etapa.Maximizar a altura do passo e minimizar o comprimento do passo capturará a maior velocidade explosiva, enquanto fazer o oposto capturará a maior velocidade sustentada. Em seguida, configure um sistema de análise de vídeo para gravar o comportamento de natação durante o estudo. A análise de vídeo também pode ser realizada após os ensaios, utilizando vídeos gravados após a aclimatação, aumento da velocidade do fluxo de acordo com o tamanho do passo e registro da duração da natação, se necessário.Uma pequena carga fornecida por uma grade de choque na parte traseira do túnel de natação pode ser usada para estimular a natação quando o peixe interrompe a natação. Encerre o teste e permita um período de recuperação de 30 minutos para capturar a capacidade de natação explosiva ou de sprint. Aumente a velocidade do fluxo até um valor máximo estimado.Os peixes devem permanecer na parte traseira da câmara enquanto a velocidade do fluxo aumenta rapidamente. Uma vez fatigados, os peixes devem ser deixados em repouso para recuperação ou removidos imediatamente para coleta de tecidos, determinando as taxas metabólicas rotineira e máxima, abreviadas como RMR e MMR, calculando o volume ou a massa de oxigênio por unidade de massa por unidade de tempo. Neste exemplo, a RMR foi de 198 e a MMR foi de 961 miligramas de oxigênio por quilograma por hora.No teste de etapas, a forma tradicional de relatar a velocidade máxima alcançada consiste em calcular a velocidade da última etapa completamente concluída, somada à fração temporal da última etapa final incompleta. A equação apresentada aqui é utilizada para estimar a capacidade de natação prolongada ou sustentada, também denominada desempenho crítico de natação, ou você crit; o cruzamento indica o ponto em que o peixe se recusou a nadar mais e onde você foi calculado. Softwares de análise de vídeo podem ser usados para determinar comportamentos de natação, como o número de arrancadas e seu comprimento.A frequência da batida da cauda e a amplitude da batida da cauda também podem ser calculadas, conforme observado. Aqui, amostras subseqüentes podem ser coletadas para determinar os níveis de hematócrito, concentrações de hormônios do estresse, reservas energéticas musculares, atividades enzimáticas ou outros parâmetros fisiológicos.

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Biology

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Medindo os impactos de contaminantes ambientais sobre o comportamento dos peixes é muitas vezes subjetiva e desafiando particularmente quando se trata de endpoints subletais. Descrevemos métodos, incluindo a tecnologia de vídeo para quantificar o comportamento de natação do início da vida estágio esturjão branco (Acipenser transmontanus) durante e após 96 horas exposições agudas a várias concentrações de cobre.

Quantificar Peixe Natação comportamento em resposta à exposição aguda de Aqueous Copper Usando Computer Assisted Vídeo e Análise de Imagem Digital

Este manuscrito descreve a configuração, implementação e análise de ousadia, agressão e cardume em peixe-zebra e testes para a presença de uma síndrome comportamental. Uma abordagem padronizada para quantificação comportamental permitirá uma comparação mais fácil entre os estudos. Modificações neste protocolo são possíveis, pois cada ensaio pode ser executado individualmente.

Arrojo, agressão e Ensaios shoaling para Zebrafish Síndromes Comportamentais

O peixe-zebra é um excelente modelo para estudar a função muscular e doenças. Durante o início da embriogênese, o peixe-zebra inicia contrações musculares regulares, produzindo um comportamento rítmico de natação, que é alterado quando o músculo é interrompido. Aqui descrevemos um ensaio de resposta evocada por toque e locomoção para examinar o desempenho da natação como uma medida da função muscular.

Usando resposta ao toque evocadas e locomoção Os ensaios para avaliar o desempenho muscular e funcional de Zebrafish

Descreveremos um protocolo comportamental destinado a avaliar como personalidades do zebrafish influenciam sua resposta à água correntes e campos magnéticos fracos. Peixes com as mesmas personalidades são separados com base no seu comportamento exploratório. Em seguida, observa-se seu comportamento de orientação rheotactic em um túnel de natação com uma baixa taxa de fluxo e sob diferentes condições magnéticas.

Avaliar a influência da personalidade na sensibilidade a campos magnéticos no Zebrafish

Ao contrário da medição durante a natação gratuita, que apresenta desafios e limitações inerentes, a determinação de parâmetros importantes da função cardiorrespiratória para os nadadores pode ser feita usando uma natação mais viável e mais fácil de administrar natação amarrada protocolo rapidamente incrementado com troca de gás e coleta de dados ventilatórios.

Um protocolo máximo de natação amarrada rapidamente incrementado para avaliação cardiorrespiratória dos nadadores

Descrevemos um protocolo para monitorar mudanças na atividade de neurônios diferentes durante comandos motores em um sistema de células ciliadas vertebrados modelo.

Atividade da Linha Lateral Posterior Neurônios Diferentes durante a Natação em Zebrafish

Capaz de recuperação funcional após lesão medular, o zebrafish adulto é um sistema modelo de elucidar mecanismos inatas de regeneração neural. Aqui, descrevemos a resistência à natação e os ensaios de comportamento de natação como leituras funcionais da regeneração da medula espinhal.

Avaliação da resistência ao natação e comportamento de natação em zebrafish adulto

O aparelho de exercícios projetado para peixes menos afortunados facilita a implementação de diversos protocolos de exercícios com intensidades variadas, manipulando a velocidade do fluxo de água, alcançável por meio da reotaxia.

Um aparelho de exercícios de peixe-zebra induzido por natação para abordagens de treinamento versáteis

Tarefas de preferência social multi-câmara foram adaptadas de roedores para peixe-zebra, facilitando o estudo do comportamento social em organismos modelo. Esse protocolo valida uma tarefa de baixo custo de 3 câmaras em tanque aberto, usando webcams e software de código aberto para medir a preferência social dos peixes-zebra, tornando-a acessível para pesquisa e ensino de graduação.

Alternativa de baixo custo para examinar preferência social em peixe-zebra (Danio rerio) usando a tarefa de 3 câmaras em aquário aberto e natação livre

Aprenda a avaliar o desempenho natatório em peixes utilizando um respirometro de túnel de natação. Este método permite medir o consumo de oxigênio e analisar comportamentos de natação para estudos de ecologia fisiológica.

Avaliação de Desempenho nadando em Peixes

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