Name: Demonstrar os usos do Spectrometer Novel Força Gravitacional para esticar e Medida Proteínas fibrosas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-19T11:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 51 s
Description: Aprenda a operar um espectrômetro de força gravitacional para medir interações moleculares em nível de molécula única. Este método integra microscópio óptico e câmera digital para análises precisas em neurociência e biofísica.

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Este material é baseado num trabalho apoiado pela National Science Foundation, Grant No. 0842736.

Introdução ao GFS Novel Configuração O GFS consiste de vários componentes essenciais: Um microscópio de luz comum, uma montagem equatorial, uma câmera e um computador [Figura 1]. A câmara de célula de fluxo selada que contém a amostra é também indispensável de acordo com o projeto GFS. O microscópio de luz é montado na montagem equatorial de modo que o escopo pode ser rodado em diferentes orientações no espaço. Esta capacidade permite que o vetor estático de gravidade para ser explorada de modo que as amostras podem ser dinamicamente orientada em relação ao vetor para que a força da gravidade pode transmitir cargas piconewton gama-força para as amostras. A câmera substitui a lente do microscópio de luz da ocular para que ele possa registrar as mudanças na orientação da amostra. Este dados brutos é digitalizado e manipulado pelo computador para interpretar os dados reais e em vigor medidas de distância. O fluxo de câmara selada foi concebido para permitir que todos os graus de liberdade no espaço sem perda de amostra. Na câmara reside a molécula da amostra que está preso perto de um terminal a um "ancorado" talão que é colada à superfície da câmara. O término oposto é amarrado a um "mobile" talão, que é livre a partir da superfície da câmara. É esta pérola móvel, livres no tampão de ensaio que podem ser postas em prática pela força gravitacional, assim, que se estende a molécula amarrados em cargas tão baixa força [Figura 2]. A amostra simplesmente parece um par de microesferas sob o microscópio, embora ele não ter alguma experiência para discernir o bem utilizável pares acoplados por seu apego a uma molécula de pares em que ambos os grânulos estão sentados na superfície do fluxo de câmaras. Uma modificação no sistema é a adição de uma plataforma flutuante que detém o GFS e está suspensa por molas. Nesta configuração, uma vez que a amostra foi rodada em uma posição onde a força gravitacional pode agir sobre a amostra, a plataforma e todos os seus componentes podem ser descartados contra a mola constante. Perto de queda livre, a força que age na esfera móvel é perto de zero e na extensão máxima das nascentes ", a força gravitacional é multiplicado em até duas vezes. Desta forma, uma resposta de força / distância classificados podem ser representados graficamente para medir o comportamento de uma única molécula com cargas força diferente. 1. Preparação de microesferas <ol><li> Submergir cerca de 10 mg de contas de vidro ou sílica em 0,04% 3-Aminopropyltriethoxysilane (corte com acetona) por dois minutos. </li><li> Enxágüe com duas mudanças de água destilada duas vezes e centrifugar a pelota a 2000 xg por 5 minutos. Elimine o sobrenadante. </li><li> Adicionar 5 mL de tampão de acoplamento (0,01 M piridina corte com água destilada duas vezes e ajustar o pH a 6,0), e agitar a mistura vigorosamente. Centrifugar como descrito acima. Repita este passo três vezes. </li><li> Para bolo molhado de contas, adicione 2 mL de solução gluteraldehyde 5% (corte gluteraldehyde com tampão de acoplamento). Agite vigorosamente. </li><li> Sob um capuz, gire mistura / gluteraldehyde talão por 3 horas à temperatura ambiente. </li><li> Centrífuga como acima e aspirar o sobrenadante. </li><li> Lave as contas em 5 mL de tampão de acoplamento, agitando-os vigorosamente e centrifugar e aspirar o sobrenadante. Repita isso três vezes mais. </li><li> Adicionar cerca de 15 mL do anticorpo desejado para contas e agitar vigorosamente. As contas devem ser rodados durante 16-24 horas. </li><li> Sob o capô, adicionar 5 mL de uma solução de resfriamento M glicina (glicina corte com água destilada duas vezes e ajustar o pH a 7,0). Agite vigorosamente esta mistura e rodar por 30 minutos. </li><li> Centrífuga e aspirar o sobrenadante. </li><li> Adicionar 5 mL de tampão de lavagem (0,01 M Tris, pH 7.0; azida de sódio a 0,1%, 0,1% BSA, 0,15 M NaCl; e 0,001 M EDTA). Agite vigorosamente este, centrífuga e aspirar o sobrenadante. Repita este passo três vezes. </li><li> Alterar buffer para baixo teor de sal tampão (0,1 M KCl, 0,02 M imidazol; 5 mM MgCl 2; acertar a pH 7,0). Repita três vezes. </li></ol> 2. Anexo amostra para Microesferas <ol><li> Pegue uma pequena quantidade de contas preparados (cerca de 2 mL de cada bolo de contas no entanto, se há uma discrepância grande em diâmetro entre os lotes, é vantajoso usar em torno de uma relação de 08:01 de grandes para contas pequenas) e adicioná-los um tubo de microcentrífuga com tampão de ensaio. Reduzir a concentração de sua proteína para cerca de 5 mM, utilizando o tampão de ensaio. Prepare pelo menos um volume total de 400 mL, incluindo o buffer, a proteína, e as contas. </li><li> Gire essa mistura em torno de 1 RPM por 3 horas (se a proteína está agitado demais, ele vai agregar e tornar-se inútil). </li></ol> 3. Preparação de slides Câmara <ol><li> Revestimento uma lâmina de microscópio com espessura de nitrocelulose 0,01% (em acetato de amilo). Deixe este slide secar por cerca de 10 minutos. </li><li> Com um cortador de vidro afiada, corte tampa deslizante, de modo a fazer uma câmara. Isto requer quatro tiras de vidro. </li><li> Use o fato deory borda do copo e ajuntá-lo através de uma mancha de graxa de vácuo em ambos os lados da borda. </li><li> Tiras de graxa imprensa revestido em nitrocelulose seca coberta de slides para criar uma caixa na superfície da lâmina. </li><li> Pipetar cerca de 2 mL de mistura do grânulo / proteína tocando pipeta na superfície de vidro dentro da caixa. </li><li> Adicionar cerca de 2-40 mL de tampão sal dependendo de como grande da câmara é. </li><li> Pressione uma lamínula em cima da caixa que já está revestida com graxa de vácuo para terminar a câmara selada e tampão. </li><li> Deixe deslize sentar num lugar plano para que as contas tenham tempo suficiente para ancorá-los ao nitrocelulose. </li></ol> 4. GFS Aquisição de Dados <ol><li> Montagem de slides para GFS estágio </li><li> Monitorar o que a câmera está gravando GFS e procure legítimo "pares talão", em que o micro é ligado pequena perto do equador da microesfera de grande porte. </li><li> Quando um par potencial talão é encontrado, vá até a profundidade de foco para determinar se o "mobile" talão não está descansando na superfície da lâmina. </li><li> Uma vez que um par adequado é identificado, note ângulo móvel talão é longe d max (d max = a distância máxima entre os centróides das microesferas acoplada). Mover o alcance em condições de adquirir vídeo. </li><li> O ângulo de deslocação do GFS deve ser suficiente para gravar d min, d max, min e d, que poderíamos chamar de 25-90 graus, dependendo do comprimento da molécula. </li><li> RECORDE como o par viaja d min para d max e volta para d min. </li><li> É uma boa idéia para também gravar um filme do fundo para que ele possa ser subtraída posteriormente para análise. </li><li> Se estiver executando uma queda GFS, mova o escopo de volta para d max e registrar a queda de pelo menos 60 frames por segundo. A parte crítica é a oscilação em primeiro lugar, mas longos períodos de gravação também pode ser usado para o estudo dinâmico. </li></ol> 5. GFS Análise de Dados <ol><li> Transformar vídeo bruto em digitalmente imagem "thresholded" e executar macro em ImageJ para determinar a posição do centróide de cada grânulo em cada quadro do vídeo. Este também é para o vídeo cair. </li><li> Despejar o X, Y e dados da área de ImageJ em Excel e traçar os pontos. </li><li> Se um bom par talão foi adquirida pelo vídeo, um corcunda perceptível no gráfico é indicativo das contas estar em suas mais próximo (d min) e no ápice do gráfico é a posição de d max. </li><li> Usando estes dados, o raio de cada esfera deve ser determinada precisamente em ImageJ e toda esta informação é colocada na equação aninhada: d = [(g sin α) 2 + (g cos α + d max - g) 2] 0,5 g = [d min 2 + b 2 r - (r a + r b) 2] 0,5 = r sin β b c = d max - r a - g (D = distância entre centróides; g = força de gravidade; α = o ângulo em graus paralelo à lente objetiva; r b = raio de móveis talão; r a = raio de ancorado talão; = ângulo β de ligação fora do eixo da o equador do cordão ancorado. </li><li> Usando o raio equipados do talão móveis, que também dá o seu volume, e dada a densidade da esfera, a força do talão móvel transmite na molécula pode ser calculado em piconewtons após a flutuação do solvente é subtraído. Este método mede a força sobre a molécula amarrado em piconewtons e calcula o comprimento molécula absoluta entre os anexos de anticorpos em nanômetros. F = V (db) a (F = força, V = volume, d = densidade da microesfera de vidro, a aceleração a = devido à gravidade, b = a densidade da água deslocada). </li></ol> 6. Resultados representativos: Se a preparação do grânulo é feito corretamente, haverá agregação de talão mínimo, embora ainda possa haver um amontoado ocasionais talão. Quando vistos através do escopo, deve haver uma distribuição razoável de contas se emparelhado ou não na câmara. É importante para minimizar vibrações, tanto quanto possível, para fazer isso uma mesa de ar, absorvendo choques especiais para pés de um tripé que sustenta uma montagem EQ, ou no sistema que utiliza molas podem ser usados ​​para o isolamento de vibração. Outra dica útil relativamente à câmara de fluxo selada é deixá-lo repousar durante cerca de cinco minutos em um nível de tabela depois de ter sido totalmente construído. Isso permite que qualquer grânulos maiores unattached a flutuar para baixo através do buffer e descanso na camada de nitrocelulose. Se o slide eram vez montado diretamente em cima da conclusão, o investigador teria sempre têm de lidar com contas, literalmente, voando pelo campo de visão, e se isso acontece durante a aquisição de vídeo que pode corromper ªexperiência e. Se isso for feito corretamente, a fuga de talão é significativamente minimizado e os resultados mais limpo vídeo. Quando um par potencial talão é identificado pelo operador GFS, é útil para colocá-lo através de uma rotação preliminar para monitorar o comportamento do par. Raramente, o talão grande não é solidamente fixado sobre o slide. Se isso acontecer, não há nenhum uso em utilizar o par, pois é fundamental que a maior permanência do grânulo ancorada em uma posição fixa por toda a duração da aquisição. Se o par é estável e não apresenta "roll talão ancorada", então ele é adequado para a experimentação. Um gráfico de distâncias de separação talão versus mudança no ângulo em relação à gravidade pode ser usado para avaliar os dados adquiridos. Um resultado bom representante mostraria pouca separação em um planalto e como o cordão móvel liberta-se do talão ancorado por causa da influência da gravidade, o gráfico vai mostrar mais a separação. Isso continua até que um pico legal é alcançado, que é chamado d max e para baixo a curva começa novamente retornando à base d min [Figura 1]. Em condições ideais, esta assinatura é simétrica. Um resultado não-representativa iria mostrar um gráfico com os padrões incoerentes não mostrando nenhuma d distintas min-max-d d padrão min, ou ele iria mostrar as separações que são ordens de magnitude muito alta para uma única molécula, indicando talvez houvesse um pedaço de poeira entre as contas, ou talvez que o talão móveis simplesmente não foi anexado a todos. O processo de encontrar o par, atirando-o, processá-lo e analisá-lo parar de muitos tem lacunas onde imprópria pares talão são abatidos fora. Então, se você chegar ao final de todo o processo e você tem um comprimento de molécula que é consistente com os resultados anteriores, pode-se ser muito confiante de que o par original talão é representativo e pode ser incluído nos resultados. Em um bom dia, cerca de metade do tiro pares de esferas pode ser tomada até se tornar um ponto de dados legítimos. Por exemplo, o comprimento da bobina enrolada de miosina entre MF20 e MF30 anticorpos, é conhecido com base em dados e EM AFM, dados para abordagem 100 nm 2,7,8,9. Se o resultado é várias vezes esse comprimento, a amostra agregada. Os resultados aqui apresentados são a partir de experimentos de rotação padrão GFS e demonstrar uma distância de 96 nm ± 5 nm, [Figura 2], que concorda em estreita colaboração com as medições do MF30 (que liga a N-terminal de miosina subfragment-2) e MF20 (que se liga na meromyosin luz) distância de separação de anticorpos sobre a miosina deduzida a partir dos valores da literatura [Figura 3]. <img src="/files/ftp_upload/2624/2624fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. GFS configuração. Partes principais do GFS são rotulados. <img src="/files/ftp_upload/2624/2624fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Esquemática do princípio GFS. Lado esquerdo mostra centróide de móveis talão a uma distância mínima de centróide de talão ancorado. Como GFS é girada, móveis talão alinha com o vetor de gravidade, que também é paralela com o eixo da molécula amarrados. Nesta posição, a distância entre os centróides das esferas móveis e ancorado é, no máximo. Canto superior direito mostra uma fatia representativa de um filme GFS. Parte inferior direita é uma imagem da rotação GFS passando. <img src="/files/ftp_upload/2624/2624fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3 resultado Representante mostrando min d à esquerda do gráfico;. D max em uma separação relativa de 17,78 mícrons, e um retorno à d min em torno da linha de base de cerca de 17,75 microns de separação relativa entre as contas. <img src="/files/ftp_upload/2624/2624fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Resultado Representante do experimento de rotação GFS mostrando distância entre MF20 e MF30 anticorpos média 96 nm. Isso representa a duração aproximada de S2. <img src="/files/ftp_upload/2624/2624fig5.jpg" alt="Figura 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 5"> Figura 5. Miosina II dímero usado para mostrar anexos possível para uso com o GFS incluindo anticorpos e / ou anexos de actina. Possibilidades diferentes de fixação permite diferentes estratégias GFS para medir diferentes regiões, ou para aplicar força perpendicular ou paralelo ao domínio da haste do dímero miosina.

<ol><li>Schwaiger, I., Sattler, C., Hostetter, D. R., Rief, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+myosin+coiled-coil+is+a+truly+elastic+protein+structure%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Mater%22%5BJournal%5D)">The myosin coiled-coil is a truly elastic protein structure.</a> Nat. Mater. 1, 232-235 (2002).</li>
<li>Root, D. D., Yadavalli, V. M., Forbes, J. G., Wang, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coiled-coil+nanomechanics+and+uncoiling+and+unfolding+of+the+superhelix+and+alpha-helices+of+myosin%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Coiled-coil nanomechanics and uncoiling and unfolding of the superhelix and alpha-helices of myosin.</a> Biophysical Journal. 90, 2852-2866 (2006).</li>
<li>Nishizaka, T., Miyata, H., Yoshikawa, H., Ishiwata, S., Kinosita, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unbinding+force+of+a+single+motor+molecule+of+muscle+measured+using+optical+tweezers%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Unbinding force of a single motor molecule of muscle measured using optical tweezers.</a> Nature. 377, 251-254 (1995).</li>
<li>Gawalapu, R. K., Root, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+labeling+and+computational+analysis+of+the+strut+of+myosin%27s+50+kDa+cleft%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Biochem.+Biophys%22%5BJournal%5D)">Fluorescence labeling and computational analysis of the strut of myosin's 50 kDa cleft.</a> Arch. Biochem. Biophys. 456, 102-111 (2006).</li>
<li>Kellermayer, M. S. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+and+manipulating+individual+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Molecules+Physiol.+Meas%22%5BJournal%5D)">Visualizing and manipulating individual protein.</a> Molecules Physiol. Meas. 26, R119-R153 (2005).</li>
<li>Shimizu, T., Dennis, J. E., Masaki, T., Fischman, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axial+arrangement+of+the+myosin+rod+in+vertebrate+thick+filaments%3A+immunoelectron+microscopy+with+a+monoclonal+antibody+to+light+meromyosin%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Axial arrangement of the myosin rod in vertebrate thick filaments: immunoelectron microscopy with a monoclonal antibody to light meromyosin.</a> J. Cell Biol. 101, 1115-1123 (1985).</li>
<li>Godfrey, J. E., Harrington, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-association+in+the+myosin+system+at+high+ionic+strength.+I.+Sensitivity+of+the+interaction+to+pH+and+ionic+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Self-association in the myosin system at high ionic strength. I. Sensitivity of the interaction to pH and ionic environment.</a> Biochemistry. 9, 886-893 (1970).</li>
<li>Root, D. D., Stewart, S., Xu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+docking+of+myosin+and+actin+observed+with+resonance+energy+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Dynamic docking of myosin and actin observed with resonance energy transfer.</a> Biochemistry. 41, 1786-1794 (2002).</li>
<li>Xu, J., Root, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conformational+Selection+during+Weak+Binding+at+the+Actin+and+Myosin+Interface%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Conformational Selection during Weak Binding at the Actin and Myosin Interface.</a> Biophys. J. 79, 1498-1510 (2000).</li>
<li>Sattin, B. D., Pelling, A. E., Goh, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+base+pair+resolution+by+single+molecule+force+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">DNA base pair resolution by single molecule force spectroscopy.</a> Nucleic Acids Res. 32, 4876-4883 (2004).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Ao converter um filme para uma representação digital thresholded, é crucial para a imagem thresholded para manter a mesma área em cada quadro do vídeo. Porque as contas em um par de esferas se movem independentemente um do outro, qualquer desvio nas áreas thresholded também pode causar as distâncias relativas entre os centróides das contas à deriva e introduzir erros significativos. Controlar a área limite reduzido o erro de cinco vezes nas medidas distância de 26 nm até 5 nm. Também é crucial para obter uma medida prec...

<table><tbody><tr><td>3-aminopropiltrietoxissilano</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>919-30-2</td><td></td></tr><tr><td>Acetona</td><td>Fisher Scientific</td><td>A18P-4</td><td></td></tr><tr><td>Piridina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>110-86-1</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldeído</td><td>Fisher Scientific</td><td>G7776</td><td></td></tr><tr><td>Glicina</td><td>Research Organics</td><td>BP381-1</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9682T</td><td></td></tr><tr><td>Azida de sódio</td><td>Amresco</td><td>71289</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>AMR-0332-100G</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>MSI</td><td>E9884</td><td></td></tr><tr><td>Nitrocelulose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>60443</td><td></td></tr><tr><td>N-N Dimetilformamida</td><td>Extraído de Grande Novo</td><td>D4254</td><td></td></tr><tr><td>Miosina II esquelética de coelho</td><td>Coelhos Nova Zelândia Brancos (7-8)</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>anticorpo MF30 (9-10)</td><td>Banco de Hibridomas para Estudos do Desenvolvimento</td><td>MF30</td><td></td></tr><tr><td>anticorpo MF20 (6)</td><td>Banco de Híbridos</td><td>MF20</td><td></td></tr><tr><td>Microscópio de laboratório</td><td>Boreal</td><td>WW57905M00</td><td></td></tr><tr><td>Montagem equatorial</td><td>Celestron</td><td>CG-5</td><td></td></tr><tr><td>Câmera de vídeo digital</td><td>Sony Corporation</td><td>XCDV60</td><td></td></tr><tr><td>Liberação do Caliper</td><td>Cabelas</td><td>IA-415482</td><td></td></tr><tr><td>Mola de compressão</td><td>Jones Spring Co.</td><td>723</td><td></td></tr><tr><td>Mola de tração</td><td>Jones Spring Co.</td><td>770</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>Institutos Nacionais de Saúde</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Drivers Fire-i &amp;e aplicação </td><td>Unibrain</td><td>3.80</td><td></td></tr><tr><td>Excel</td><td>Microsoft</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

demonstrar os usos do spectrometer novel força gravitacional para esticar e medida proteínas fibrosas

Demonstrating the Uses of the Novel Gravitational Force Spectrometer to Stretch and Measure Fibrous Proteins

O estudo da estrutura macromolecular tornou-se crítica para a elucidação dos mecanismos moleculares e função. Existem vários bio-instrumentos limitada, mas importante, capaz de testar a dependência força de características estruturais em proteínas. Escala tem sido um parâmetro limitante sobre a precisão pesquisadores podem perscrutar o mundo nanomechanical de moléculas, tais como ácidos nucléicos, enzimas e proteínas motoras que executam o trabalho de sustentação da vida. Microscopia de força atômica (AFM) é bem afinado para determinar estruturas de proteínas nativas fibroso com uma resolução distância a par com microscopia eletrônica. No entanto, em estudos AFM força, as forças são tipicamente muito maior do que uma única molécula poderá ter 1, 2. Armadilhas ópticas (OT) são muito bons em determinar a distância relativa entre as esferas de presos e que pode dar forças muito pequenas 3. No entanto, eles não rendem precisa comprimentos absoluta das moléculas em estudo. Simulações moleculares fornecem informações de suporte para tais experiências, mas são limitados na capacidade de lidar com os mesmos grandes tamanhos moleculares, prazos longos, e convencer alguns pesquisadores, na ausência de outras evidências 2, 4. A força gravitacional espectrómetro (GFS) preenche um nicho importante no arsenal de um investigador, oferecendo uma combinação única de habilidades. Este instrumento é capaz de gerar forças tipicamente com 98% ou maior precisão do intervalo femtonewton à gama nanonewton. As medições de distância atualmente são capazes de resolver o comprimento absoluto molecular até cinco nanômetros, e relativa distâncias par talão de separação com uma precisão semelhante a uma armadilha óptica. Além disso, o GFS pode determinar alongamento ou desenrolando onde a força está perto de equilíbrio, ou fornecer uma força de classificados de justapor contra qualquer medida mudanças estruturais. É ainda possível determinar quantas resíduos de aminoácidos estão envolvidos em eventos desenrolando sob cargas fisiológicas força 2. Ao contrário de outros métodos onde há força de calibração extenso que deve preceder qualquer ensaio, o GFS não requer calibração tal força 5. Complementando os pontos fortes de outros métodos, o GFS vai colmatar as lacunas na compreensão do nanomecânica de proteínas vitais e de outras macromoléculas.

Este é um passo-a-passo mostrando o objetivo, funcionamento e resultados representativos do espectrômetro de força gravitacional romance.

Demonstrar os usos do Spectrometer Novel Força Gravitacional para esticar e Medida Proteínas fibrosas

O estudo da estrutura macromolecular tornou-se fundamental para a elucidação de mecanismos e funções moleculares. Existem diversas abordagens limitadas, porém...

O sistema de força gravitacional é composto por um suporte epi, um microscópio óptico comum, uma câmera digital e um computador. Utilizamos este conjunto para realizar ácido de molécula única. Podemos registrar o equilíbrio de forças ou podemos aplicar uma força gradiente por meio da queda.Para começar, precisamos preparar um microvidro para que eles possam ser feitos por esse tipo de processo. Para medir cerca de 10 miligramas dos grãos que você vai usar, normalmente preparo 2K. Aqui temos cinco mililitros do que vamos usar em três triologias.É aí que vamos obter nosso Put One terminal. Prossiga e misture bem com uma pipeta e, em seguida, transfira dois mililitros da mistura sobre o seu bolo de be. Deixe os bolos de be por dois e então vortexe completamente em dois.O down comeu os dois molhados. Deseja oh uma purina em água bidestilada. Acoplamento em pH seis.Então, você simplesmente adiciona cinco mililitros do tampão de acoplamento a cada amostra de carne, e esse acoplamento faz com que a esfera ligue. Em seguida, os anticorpos que estão flutuando livremente ligam-se novamente; vorteixe por um minuto. Centrifugue por cinco minutos e, para obter seu tampão diluído, você irá reduzi-lo de qualquer concentração que tenha para 5% usando o tampão de acoplamento.Em seguida, você coleta dois mililitros desta solução e adiciona, o que permitirá que o casal TER se ligue ao terminal já presente em nosso vórtex. Isso por dois, gire por três. Este é o procedimento com o tampão de acoplamento.Novamente, cinco mililitros de um tampão de acoplamento no seu bolo de filtração. Mais uma vez, misture, centrifugue e aspire. Sature. Na quarta vez, permita que haja saturação na parte superior do bolo, para que o anticorpo possa mover-se livremente.Este é o nosso anticorpo aqui. Micro o volume. Os anticorpos úmidos são rotacionados, você sete, que é um molar cortado com água bidestilada, e a mistura é rotacionada sob a por 30 minutos durante o tempo apropriado.Para neutralizar toda a cola subutilizada, olho no olho. Vai girar para baixo, livrar-se do S. Depois, você deseja preparar um o conteúdo do qual é o protocolo. Pegue cinco mililitros da pegue as esferas, aqui estão as esferas, intex para baixo dente.Repita o passo três vezes e, em seguida, faça o mesmo para qualquer ensaio que você estiver realizando. Para iniciar nosso preparo, primeiro precisamos obter nossa proteína. Neste caso, vá até a proteína armazenada a -70, é importante pegar essa proteína e aquecê-la.Isto agora está muito mais concentrado do que o que queremos usar em nosso ensaio. Então, vamos reduzir para cerca de quinze e colocar um pouco disso na ponta. Mas depois é necessário, pois o volume preciso após reduzirmos a quantidade para cerca de cinco microlitros, com estas microesferas grandes, vamos coletar um volume maior, que será de 10 microlitros a partir desta esfera de exemplo.E isso vai fornecer uma boa, aqui estamos adicionando cerca de mais cinquenta microlitros de tampão de ensaio no tubo de microcentrífuga para obtermos uma concentração final. Então agora vamos fazer o vi como com aex seu irá A aqui estamos girando o um literalmente e faremos isso. Agora é a hora de realmente construir o fluxo no qual nossas taxas residirão e serão.Então, estou colocando esta lâmina de microscópio padrão em oh 1% e isso será cortado com uma cola para as ancoragens se ligarem à superfície do, o corte em vidro e lamínulas e lâminas de microscópio. Já reforcei as bordas com o, e aplicarei este pedaço mais fino de vidro, uma lâmina hiper mais espessa. Esta câmara será relativamente pequena.Aqui está um pequeno aqui, e suas posições estão danificadas. Outro daqueles caras segura todos os dias. O agente me deixa melhor, falta melhor.Aqui vamos provar os dois últimos que talvez tenham 25 anos antes de começarmos a adicionar o biscoito e o queijo. E você perdeu o sol. Apenas alguns têm sabor, e apenas em poucos.E aqui, se você olhar atentamente, é possível ver realmente o grânulo. A ponta, o que faço é começar simplesmente batendo na área em que estou, e não, depois de fazer isso completamente, enquanto o restante da superfície da lâmina aqui, ficaremos em cerca de 40 graus, para que possamos posicionar a lâmina em diferentes orientações sem nos preocuparmos com o fato de que as gotas podem migrar para baixo. Ei, você não precisa de nenhum parafuso para coletar minha amostra para o meu vinho, na parte traseira da linha, e talvez eu precise montar a lâmina e uso um clipe extra para manter as coisas mais estáveis. E podemos colocar a objetiva.Este é um controle remoto que usamos para posicionar aqui o nosso lâmina e tudo está ligado, incluindo a câmera. Podemos começar a monitorar possíveis seres vivos fazendo isso simplesmente movendo e monitorando a tela de vídeo. O da esquerda tem uma pequena esfera e sua pequena esfera parece-se com as outras pequenas esferas que estão apenas paradas na superfície do lop.No entanto, o par de microesferas apresenta uma microesfera que entra em foco quando a superfície da microesfera desfocada do LOP indica que ela está em um plano de foco diferente das outras microesferas no lâmina, bem como do par correspondente, de modo que a microesfera à direita A mostra como os pares podem funcionar em uma lâmina. Assim, posicionamos a lâmina enquanto realizamos a rotação com diferentes ângulos, o que nos fornece diferentes comprimentos de, então utilizamos a rotação. Observamos uma representação de como um campo de parâmetros pode se parecer usando um computador.Encontramos ambos. Neste caso, ao calcular, podemos descartar a medida fornecida e aqui descartar o F e também descartamos. Obrigado por assistir.Boa sorte com o seu distúrbio. Há um momento para dançar. Além disso, não pense que alguém não ganhará o meu.Meus amigos estão ocupados tentando conseguir. Isso tudo me deixou para trás. Onde está aquela garota com quem eu vim?Ela vai embora com meu amigo. Ela realmente acha que é. Será que ela não conhece um homem de verdade?Monte novamente, corra novamente, touro mecânico. Deixe-o soltar. Direita, direita, direita lá embaixo no México.Adoro o jeito de rodar hoje à noite. Touro mecânico. Não desacelere.Dê-me 5 unidades para me posicionar quando terminar com minha mão esquerda. Apenas para usar a minha direita. Sim, com a minha mão esquerda, vou apenas usar a direita.

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

Foram utilizadas técnicas de microscopia e processamento de imagem com lapso de tempo para observar e analisar a compactação de gel mediada por fibroblasto e o realinhamento da fibra fibrina em um bioreator ambientalmente controlado durante um período de 48 horas.

Observando e quantificando compactação de gel de fibrina mediada por fibroblasto

Os celulossomos são complexos multienzimáticos projetados para digerir celulose. O SMFS baseado em AFM foi usado para estudar as propriedades mecânicas e a configuração de dobramento de conjuntos de proteínas associadas ao celulossomo. Apresentamos um fluxo de trabalho completo para imobilização de proteínas, aquisição de dados e análise de dados para estudar as interações de complexos receptor-ligante individuais envolvidos na montagem do celulosomo.

Investigando Sistemas receptor-ligante do Celulossoma com base-AFM única molécula Força Espectroscopia

Análise das propriedades contráteis das fibras musculares esqueléticas, pele quimicamente, ou permeabilizadas oferece um poderoso meio para avaliar a função muscular ao nível da célula muscular único. Neste artigo vamos descrever uma técnica válida e confiável para preparar e testar permeabilizadas fibras musculares esqueléticas in vitro.

Medição do isométrica máxima força gerada pelo permeabilizadas fibras musculares esqueléticas

Apresentamos um protocolo para a aplicação da espectroscopia de espalhamento de luz de Brillouin a fibras colágenas tipo I purificadas com elastina e tripsina da matriz extracelular para extrair suas propriedades elásticas completas.

Preparação de Matriz Extracelular fibras de proteína de Brillouin Spectroscopy

Vários biossensores de força baseados em FRET foram desenvolvidos recentemente, permitindo a resolução específica da proteína da força intracelular. Neste protocolo, demonstramos como um desses sensores, projetado para o ligante da proteína do complexo nucleoesqueleto-citoesqueleto (LINC) Nesprin-2G, pode ser usado para medir as forças de actomiosina no complexo nuclear LINC.

Um protocolo para usar a transferência de Förster Ressonância Energia (FRET) Biossensores -force medir forças mecânicas em todo o Complexo LINC Nuclear

Descrevemos os procedimentos detalhados e estratégias para medir as propriedades mecânicas e mecânicas vias desdobramento de moléculas de proteína único, usando um microscópio de força atômica. Também mostramos resultados representativos como uma referência para a seleção e a justificativa de gravações de molécula de proteína única boa.

Espectroscopia de força das moléculas de proteína único, usando um microscópio de força atômica

Este protocolo descreve a imobilização covalente de proteínas com um heterobifunctional agente de acoplamento silano para superfícies de óxido de silício projetado para a espectroscopia de força força atômica microscopia com base única molécula que é exemplificado a interação de RrgA (adesina pilus-1 ponta de S. pneumoniae) com fibronectina.

Imobilização covalente de proteínas para a espectroscopia de força única molécula

Aqui, apresentamos um protocolo para a utilização simultânea de ressonância Förster, sensores de tensão baseados na transferência de energia para medir proteína carga e fluorescência recuperação após fotobranqueamento para medir a dinâmica da proteína, permitindo a medição de força-sensível dinâmica da proteína dentro de células vivas.

Medição da dinâmica de força-sensível da proteína em células vivas, usando uma combinação de técnicas fluorescentes

A espectroscopia de força de conjunto (EFS) é uma técnica robusta para desdobramento mecânico e detecção em tempo real de um conjunto de estruturas biomoleculares em campos biofísicos e de biossensoriamento.

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Um método de engenharia de tecido exclusivo foi desenvolvido para alongar as fibras nervosas numerosos na cultura recapitulando crescimento estiramento do axônio, uma forma de crescimento do sistema nervoso através do qual os nervos alongados em conjunto com o crescimento do corpo aumentando.

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Aprenda a operar um espectrômetro de força gravitacional para medir interações moleculares em nível de molécula única. Este método integra microscópio óptico e câmera digital para análises precisas em neurociência e biofísica.

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