13 de fevereiro de 2011
Nós descrevemos um protocolo de observar e analisar as trajetórias de células rolando no assimétrica receptor-padrão substratos. Os dados resultantes são úteis para a engenharia de receptor-padrão substratos para a etiqueta livre de separação de células e análise.
Este protocolo observa e analisa trajetórias de rolamento celular em padrões de receptores assimétricos para facilitar a engenharia de substratos com padrões de receptores para separação e análise de células sem marcação. Comece com a impressão por microcontato de moléculas de PEG sobre um substrato de ouro para criar padrões alternados de monocamadas auto-organizadas, seguido pelo preenchimento do substrato com P-selectina e receptores. Em seguida, incorpore o substrato à câmara de fluxo. Introduza as células HL-60 na câmara.
Registre uma sequência de imagens da interação de rolamento de células HL 60 em padrões de P-selectina e analise as imagens convertidas a partir do vídeo. As trajetórias do rolamento, o rastreamento da borda celular, o comprimento e as velocidades de rolamento em planos, regiões e bordas podem ser obtidos usando um programa MATLAB. Este método pode fornecer informações sobre como as células HO 60 se movem sobre padrões assimétricos de receptores sob fluxo de cisalhamento.
Isso pode ser aplicado para quantificar interações com outras superfícies celulares, análise direta das células mediante a observação de suas trajetórias em padrões de receptores e para o projeto de dispositivos microscópicos de fixação para separação celular. A microimpressão por contato é utilizada para criar padrões alternados de monocamadas auto-organizadas de moléculas de peg sobre um substrato de ouro.
Primeiro, encharque o carimbo de PDMS com uma solução de PEG cinco milimolar em etanol. Seque a superfície por 20 minutos. Coloque suavemente o carimbo sobre a superfície de ouro por 40 segundos e certifique-se de que haja um bom contato entre a superfície de ouro e o carimbo.
Nenhuma pressão excessiva é necessária. Enxágue a superfície com etanol e seque sob um fluxo de nitrogênio. Agora, utilizando uma câmara de perfusão, incube os substratos com solução de P-selectina a 15 microgramas por mililitro durante três horas à temperatura ambiente para padronizar as áreas restantes com P-selectina, enxágue a câmara e, em seguida, complete as superfícies com BSA a um miligrama por mililitro durante uma hora para bloquear interações inespecíficas.
Lave a superfície com tampão DPBS antes de realizar o experimento de rolamento celular. Monte a câmara de fluxo e, em seguida, faça passar uma suspensão de 10 à quinta células por mililitro. Células HL 60 sobre o padrão, superfícies em uma câmara de fluxo retangular com ângulos de inclinação do padrão de receptor de 10 graus.
À temperatura ambiente de 24,5 graus Celsius. Ajuste a bomba de seringa para gerar uma taxa de fluxo de 75 microlitros por minuto, com tensão de cisalhamento laminar correspondente de 0,5 dina por centímetro quadrado. Agora, com um microscópio invertido e câmera acoplada, grave o rolamento das células HL 60.
Interações com p adesivo, selecione e substratos. Utilize uma objetiva de quatro x a uma taxa de um quadro por segundo durante períodos de 300 segundos. Realize três experimentos independentes.
Apresente os dados como média e desvio padrão dos valores médios obtidos de cada experimento. As imagens de microscópio convertidas a partir do vídeo de HL 60. Rolling. Interações com substratos adesivos p-selectina demonstram regiões claras e escuras correspondentes às regiões de receptor p-selectina e PEG, respectivamente.
As trilhas são delimitadas usando um programa personalizado em MATLAB aqui. O ângulo de inclinação da borda foi de 10 graus e a tensão de cisalhamento foi de 0,5 dina por centímetro quadrado. Análises adicionais são baseadas na distribuição do comprimento de rastreamento da borda, no valor médio do comprimento de rastreamento da borda, bem como em VE e VP, as velocidades de rolamento na borda e no interior das faixas.
Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como examinar as trajetórias celulares em padrões assimétricos de receptores.
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Este protocolo observa e analisa trajetórias de rolamento celular em padrões de receptores assimétricos para facilitar a engenharia de substratos com padrões de receptores para separação e análise de células sem marcação.
O entendimento das trajetórias de rolamento celular em padrões assimétricos de receptores permite o projeto racional de dispositivos de separação microfluídicos livres de marcadores. Este protocolo fornece dados quantitativos sobre o comprimento do rastreamento de borda e a velocidade de rolamento sob tensão de cisalhamento definida, apoiando a modelagem preditiva do comportamento celular em fluxo. Essas informações reduzem a iteração empírica na engenharia de dispositivos para fluxos de trabalho de purificação celular e análise fenotípica.
O método se insere na fase inicial de descoberta para orientar o desenvolvimento de ensaios e a geração de ferramentas pré-clínicas, especialmente para alvos nos quais a adesão sob fluxo é uma leitura funcional.