1 de abril de 2011
Este artigo descreve uma In vitro Técnica para células cancerosas invasoras de monitorização por meio de uma monocamada de células endoteliais. Os dados são adquiridos em tempo real, como uma função de alterações na impedância sobre a superfície de eléctrodos no fundo bem.
Este vídeo demonstra um método para monitorar a invasão de uma monocamada de células endoteliais por células cancerígenas, utilizando uma técnica baseada em impedância elétrica em tempo real. Primeiro, células endoteliais da veia umbilical humana, denominadas VE, são semeadas em placas EPL de 16 poços revestidos com eletrodos de ouro no fundo dos poços. Para formar uma monocamada confluente, células cancerígenas são adicionadas, as quais se aderem às células VE e invadem a monocamada de VE, rompendo as junções entre as células endoteliais. Em seguida, são obtidas leituras de impedância, que dependem da área total do fundo do poço coberta pelas células.
A extensão da invasão pode então ser determinada com base em alterações na impedância elétrica. A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como os ensaios de câmara de vazio e METROGEL, é que as interações entre células endoteliais e células tumorais imitam mais fielmente o processo metastático in vivo, e os dados são obtidos em tempo real e são mais facilmente quantificáveis, ao contrário da análise de ponto final utilizada em outros métodos. Embora este método possa fornecer informações sobre a invasão de células cancerígenas.
Também pode ser aplicado a outros sistemas, como o estudo de interações entre células no sistema imunológico. Além disso, a fase inicial do experimento, na qual observamos o crescimento de células UX, pode ser utilizada para avaliar a proliferação celular de qualquer linhagem celular, sem etapas adicionais de invasão, demonstrando que o procedimento será realizado por Rahim, estudante de pós-graduação do meu laboratório. Todas as etapas deste protocolo devem ser realizadas em condições estéreis em uma câmara de cultura de tecidos.
O sistema Xcel utilizado neste experimento é mantido permanentemente em uma incubadora com 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono, exclusivamente dedicada a este instrumento desde seu primeiro uso. O instrumento deve permanecer na incubadora por pelo menos 16 horas para equilibrar-se com o novo ambiente de temperatura e umidade. Em seguida, prepare o Thence EPL 16 revestindo-o com gelatina 0,1% por uma hora a 37 graus Celsius.
Após o revestimento da placa, lave-a uma vez com PBS. Em seguida, adicione 100 microlitros do meio e gm dois reconstituído para realizar uma leitura em branco. Para medir a impedância de fundo na ausência de células.
Coloque o EPL no sistema do agente Excel no computador. Abra o software do agente Excel clicando no ícone do software RTCA na área de trabalho na janela do software. Clique na guia layout e selecione os poços que contêm as amostras.
Para programar a frequência da aquisição de dados em tempo real. Clique na aba cronograma, depois clique no ícone adicionar uma etapa. Varreduras indica o número de leituras e intervalos indica o intervalo de tempo entre as leituras. Esses valores são definidos automaticamente como um e 1,00 minuto, respectivamente.
Isso programa o sistema para realizar uma leitura de fundo. Clique em adicionar um passo e insira 300 na caixa de varreduras e 10 minutos na caixa de intervalos. Isso programará o instrumento para realizar medições de impedância por até 50 horas.
Para iniciar o experimento, clique no ícone iniciar uma etapa. A impedância de fundo de cada poço será medida após a realização da medição de fundo. A janela exibe a mensagem.
Pronto para a próxima etapa, clique por favor. Próxima etapa para iniciar. Neste momento, as células podem ser adicionadas e a formação de uma monocamada pode ser monitorada conforme descrito.
Na próxima seção, as células endoteliais de veia umbilical humana, ou VE utilizadas aqui, são cultivadas em meio EGM dois reconstituído com o kit complemento EGM dois contendo suplementos de fatores de crescimento e 5% de FBS. As células devem ser mantidas em uma incubadora a 37 graus Celsius na presença de 5% de dióxido de carbono. No dia do experimento, verifique a confluência das HUB E sob microscópio; as células devem ter um número baixo de passagens, preferencialmente não superior a seis e com confluência inferior a 75%, para gerar uma monocamada uniforme. Colha as células por tripsinização. Assim que as células se desprendem do frasco, todos os vestígios de tripsina devem ser removidos por centrifugação a 200 ×g. Após a centrifugação, lave as células uma vez com PBS.
Em seguida, ressuspenda as células e o meio e GM dois reconstituído para uma concentração de 2,5 vezes 10 à quinta células por mililitro. Uma vez que as células estejam ressuspendidas, remova o EPL calibrado de fundo do sistema EXOGEN e adicione 100 microlitros da suspensão de HX aos 100 microlitros do meio E GM dois já presentes na placa. Coloque imediatamente o EPL no analisador de células do sistema Excel.
Inicie a aquisição de leituras de impedância clicando no botão de etapa inicial na janela do software. Deixe as células endoteliais crescerem. O sistema continuará realizando leituras de impedância a cada 10 minutos.
As uve mostram um achatamento transitório característico do índice celular quatro a seis horas após a semeadura, seguido por outra estabilização após 16 a 18 horas. Portanto, é importante deixar as células formarem uma monocamada confluente por pelo menos 18 horas. Uma vez formada a monocamada, é hora de adicionar as células invasoras em preparação para o ensaio de invasão.
Prepare as células tumorais invasoras. Aqui são usadas células de osteossarcoma. Comece pelo isolamento das células com tripsina.
Remova todos os vestígios de tripsina centrifugando as células a 200 G e lavando uma vez com PPS. Após a lavagem, suspenda as células em densidade final de um vezes 10 à quinta células por mililitro no meio utilizado para cultivar as células tumorais, como meio RPMI ou DMEA contendo 10% de FBS. Pausar o experimento clicando no ícone de etapa de pausa na janela do software.
Remova o EPL e aspire o meio EGM dois da monocamada em vácuo. Adicione 100 microlitros de suspensão de células tumorais contendo um vezes 10 à quarta células. Geralmente, uma proporção de um para 2,5 células tumorais por células endoteliais funciona melhor para o ensaio.
No entanto, a proporção pode ser otimizada para linhagens celulares individuais. Coloque o EPL de volta no sistema agente Excel dentro do incubador. Clique em próximo passo para continuar coletando leituras de impedância em intervalos de 10 minutos.
Monitore a invasão em tempo real nas próximas seis a doze horas. Uma queda no índice de células resultará da retração das junções endoteliais e da penetração por células tumorais invasoras. Quando o experimento terminar, utilize o software exergen para normalizar os resultados em relação ao momento da adição das células tumorais invasoras.
O software exergen permite a normalização em qualquer ponto temporal em que os VEX foram cultivados no sistema exergen, conforme mostrado neste vídeo, e células K7M2 ou células K12 foram adicionadas após a formação da monocamada. Como mostrado aqui, ocorre uma diminuição acentuada no índice celular dentro de algumas horas após a introdução das células K7M2. K7M2 é uma linhagem celular de osteossarcoma altamente metastásica.
Essas células expressam altos níveis da proteína ligadora do citoesqueleto ene, o que explica as propriedades invasivas da linhagem celular. As células K 12, por outro lado, são menos metastáticas e incapazes de penetrar a monocamada endotelial com a mesma eficiência das células K sete M dois. Isso é representado por uma diminuição menos acentuada no índice celular, conforme mostrado aqui.
O controle mostrado aqui representa a impedância da monocamada de uve. Na ausência de células cancerígenas, os experimentos foram realizados em triplicata. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como medir a invasão em tempo real, gerando uma monocamada de células endoteliais e desafiando a monocamada com células cancerígenas.
As etapas iniciais do experimento envolvendo a formação de monocamada de HU XL podem ser utilizadas para avaliar a proliferação celular por impedância. Dois.
Este artigo descreve uma técnica baseada em impedância elétrica em tempo real para monitorar a invasão de células cancerígenas através de uma monocamada de células endoteliais. O método permite a quantificação de interações celulares que simulam processos metastáticos in vivo.
Essa técnica de impedância elétrica em tempo real permite que equipes de P&D biofarmacêuticas avaliem quantitativamente a invasão de células cancerígenas através de monocamadas endoteliais com relevância fisiológica. Ao capturar alterações dinâmicas e sem marcação de impedância que se correlacionam com a ruptura de junções e a penetração de células tumorais, o método auxilia na redução de riscos mecanicistas de alvos anti-metastáticos. Ele fornece confiança preditiva no estágio inicial de descoberta, distinguindo fenótipos invasivos de não invasivos em um formato escalável e reprodutível.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos iniciais, onde métricas de invasão em tempo real orientam relações precoces entre estrutura e atividade, além de estudos sobre o mecanismo de ação.