Name: Cromatina imunoprecipitação de Tissue Dorsal Root Gânglios seguintes Lesão Axonal (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-20T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Aprenda a técnica de imunoprecipitação de cromatina em gânglios da raiz dorsal após lesão axonal. Este método permite identificar sítios de ligação de fatores de transcrição e modificações epigenéticas relevantes para a regeneração nervosa.

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Gostaríamos de agradecer a Andrea Tedeschi para ajudar na definição das experiências ChIP inicial em laboratório e Lindner Ricco por sua contribuição para afinar as condições para ChIP. Este trabalho foi financiado pela Fundação Hertie, o Grant Fortune, Universidade de Tuebingen, ea DFG concede DI 1497/1-1 (todos concedida a Simone Di Giovanni).

1. Lesão do nervo ciático e coluna dorsal <ol><li> O animal é colocado sobre uma toalha cirúrgica e debaixo dela um thermopad está presente em todo o processo de manter a temperatura corporal do rato a 37 ° C. Todos os animais são anestesiados para a cirurgia com uma contínua isoflurano / O 2 administração. Os instrumentos cirúrgicos são autoclavados antes do procedimento. </li><li> De lesão ciática, ambos posteriores são cuidadosamente raspada, e depilação completa-se com removedor de pêlos genéricas antes limpeza da pele com álcool seguido por Betadyne 3 vezes. </li><li> O nervo ciático é exposto por uma incisão 4 milímetros posterior e paralela ao fêmur no meio da coxa através da pele e espalhando os músculos além do bíceps femoral com uma pinça fina. </li><li> O nervo ciático é exposto em seguida, ferido, ea pele é fechada com dois clipes de sutura. </li></ol> NOTA: A mesma incisão é feita para expor o nervo ciático, mas a ferida é fechada com sutura deixando o nervo intacto para a lesão farsa. <ol start="5"><li> De lesão da coluna dorsal, a parte traseira do mouse é cuidadosamente raspado, e depilação completa-se com removedor de pêlos genéricas antes limpeza da pele com álcool spray / furto. </li><li> A medula espinhal é exposto por uma incisão de 2,5 cm de cerca de T7 a T13. A pele é afastados, e do tecido conjuntivo é removida ao longo da vértebra de T9 a T11. </li><li> A laminectomia é realizada no nível T10 </li></ol> NOTA: Para a maioria dos experimentos, a laminectomia é considerada a lesão Sham. <ol start="8"><li> Algumas gotas de Xylocain são adicionadas ao tecido para anestesiar o cabo, e dura-máter é removido, prestando atenção para não tocar na medula espinhal. </li><li> As colunas dorsal são feridos eo músculo é suturada perto, mais uma vez prestando atenção para não tocar na medula espinhal. Finalmente, a pele é fechada com sutura com grampos de sutura. Buprenorfina (0,1 peso corporal mg / kg) deve ser administrado duas vezes ao dia por 48 horas ou até que deixem de ser necessários. </li></ol> 2. Cross-linking <ol><li> Dissecar DRG L4 e L5 de ratos feridos após a eutanásia. Coletar um total de 16 DRG em gelada HBSS + inibidores da protease do cocktail (2 feridos e 2 farsa DRG de cada animal, para um total de 4 animais). </li><li> Brevemente centrifugar o DRG, em seguida, remova cuidadosamente o HBSS e adicionar 500 mL de formaldeído a 1% em PBS + cocktail inibidores da protease e incubar a amostra durante 30 minutos a 37 ° C. </li></ol> Etapa crítica. Use fresca, de formaldeído de grau de biologia molecular. <ol start="3"><li> Adicionar 125 mM de glicina para parar a fixação e incubar por 5 minutos em temperatura ambiente. </li><li> Brevemente centrífuga, aspirado off buffer, e lavar o tecido duas vezes com 500 gelada mL PBS + protease cocktail inibidores. </li></ol> 3. Preparação núcleos e cisalhamento cromatina <ol><li> Aspirar off PBS, adicionar 400 mL de tampão de lise SDS, transferir para um tubo de microcentrífuga pré-refrigeradas, e interromper o tecido com aproximadamente 30 golpes com a micropistilo. </li></ol> Etapa crítica. Lise e destruição do tecido são vitais para um bom rendimento da cromatina reticulada. <ol start="2"><li> Sonicate a amostra com 8 pulsos, 10 segundo cada um com saída de 70% (Bandelin, Sonoplus GM70). </li></ol> CUIDADO. O corte da cromatina deve ser otimizado para o seu sonicação especial configurar e fragmentação da cromatina adequada deve ser verificado antes de executar o experimento IP real (ver secção 3). NOTA fragmentação. Da cromatina também pode ser realizada por micrococcal nuclease digestão (MNase). Como regra geral, a fragmentação por sonicação é o preferido para tecido fixado, enquanto que a digestão é favorecida MNase para imunoprecipitação nativa tecido cromatina. Cruzada, cortado cromatina pode ser armazenado a -80 ° C por até 2 meses, mas evitar repetidos de congelamento / descongelamento. 4. Análise da digestão da cromatina (recomendado) <ol><li> Retire 10 ml da sua amostra cromatina cortado para análise. Adicionar 200 mM de NaCl para a amostra e reverter o cross-link, incubando a 65 ° C por 2h. </li><li> Purificar DNA (ver secção 8) e executar um gel 1% agarose. DNA deve ser fragmentado para um comprimento de cerca de 200-1000 pb (Figura 1). </li></ol> CUIDADO. Excessiva fragmentação da cromatina pode levar à diminuição do sinal, enquanto que a fragmentação incompleta levará à resolução diminuída e aumento de fundo. 5. Imunoprecipitação <ol><li> Determinar o número de reações de imunoprecipitação (ver nota abaixo), e dividir amostras igualmente em novos tubos. Reduzir o volume de cadaaté 500 mL com tampão ChIP + cocktail inibidores da protease. </li><li> Retire 5 mL da sua amostra diluída e transferência para um novo tubo. Esta é a sua amostra de entrada de 1% e vai ser armazenadas a -20 ° C até ser necessário (Seção 7). </li><li> Para cada imunoprecipitação, adicione anticorpos IgG controle apropriado ou normal e incubar a 4 ° C durante a noite com rotação. </li></ol> NOTA. Ao determinar o número de imunoprecipitação, um controlo positivo (por exemplo, anticorpos Histone H3) e um controle negativo (IgG Normal) deve ser considerada. A quantidade de anticorpo utilizado para cada IP varia entre anticorpos e deve ser determinado empiricamente. No entanto, é geralmente dentro de uma escala de 2-10? G / imunoprecipitação. <ol start="4"><li> Para immunoprecipitate seu complexo anticorpo / proteína / DNA, adicionar 30 mL de chip de Contas da proteína G Grade Magnética e incubar por 2 horas a 4 ° C com rotação. </li></ol> 6. Lavagem <ol><li> Para suspenso ligado complexo cromatina talão, colocar o tubo na cremalheira magnética. Aguarde até que a solução é clara e, em seguida, remova cuidadosamente o seu sobrenadante. </li><li> Adicionar 1 ml de lavar baixo teor de sal (buffer ChIP) para as contas e incubar a 4 ° C por 3-5 minutos, com rotação, em seguida, puxe para baixo e aspire contas off lavar como no passo 6.1. Repita esta etapa para um total de 3 lavagens. </li><li> Adicionar 1 ml de tampão de lavagem de alta sal (buffer ChIP + 350 mM NaCl) para as contas e incubar por 3-5 minutos, com rotação, em seguida, puxe para baixo e aspire contas off lavar como no passo 6.1. </li></ol> 7. Eluição e reversão de cross-linking <ol><li> Colher amostras a sua entrada fora do -20 ° C, adicionar 150 mL de tampão de eluição ChIP e reserve em temperatura ambiente até Passo 7.5. </li><li> Adicionar 150 mL de tampão 1x ChIP eluição de cada amostra IP a partir do Passo 6.3. </li><li> Colocar os tubos em um Thermomixer e eluir a cromatina dos grânulos, incubando amostras a 65 ° C por 30 minutos com vortex gentil. </li><li> Suspenso contas no rack magnético, e transferir cuidadosamente a cromatina eluída (sobrenadante) em tubos de novo. </li><li> Em todos os tubos, incluindo amostras de sua entrada, adicione 200mM de NaCl e 40 g / reação de Proteinase K e incubar a 65 ° C por 2 horas. </li></ol> NOTA. A etapa de eluição pode ser realizado à temperatura ambiente, também, mas pode não ser tão eficiente. 8. Recuperação de DNA <ol><li> Adicionar 1 volume de clorofórmio Fenol / com suas amostras a partir do Passo 7.5 e vortex por 30 segundos. </li><li> Centrifugar a velocidade máxima em microcentrífuga a temperatura ambiente por 5 minutos. </li><li> Cuidadosamente a fase de recuperação (superior) aquosa para novos tubos, adicionar 1 volume de clorofórmio para a fase aquosa e vórtice por 30 segundos. </li><li> Centrifugar a velocidade máxima em microcentrífuga a temperatura ambiente por 5 minutos. </li><li> Cuidadosamente a fase de recuperação (superior) aquosa para novos tubos, em seguida, adicione 300mM de NaOAc, 20 mg / reação de glicogênio, e 2,5 volumes de etanol gelado de 100%. </li></ol> CUIDADO. A adição de uma transportadora, como o glicogênio, é necessária para aumentar a precipitação de relativamente pequenos fragmentos de DNA de tamanho. <ol start="6"><li> Incubar a -80 ° C por 2 horas para DNA precipitado. </li></ol> NOTA. A etapa de precipitação também pode ser realizada durante a noite a -20 ° C. <ol start="7"><li> Centrifugar as amostras a velocidade máxima em microcentrífuga por 20 minutos a 4 ° C. </li><li> Remova cuidadosamente o sobrenadante e lavar os pellets de DNA precipitado com 300 l de etanol gelado 70%. </li><li> Centrifugar as amostras a velocidade máxima em microcentrífuga por 10 minutos a 4 ° C. </li><li> Cuidadosamente remover o máximo possível sobrenadante e deixar o pellets de ar seco. </li><li> Ressuspender em 20 l de H 2 O. estéril Amostras estão agora prontos para PCR, ou o DNA pode ser armazenado a -20 ° C. </li></ol> 9. Resultados representante Um resultado representativo de uma experiência de chip em DRGs após lesão ciática é mostrado (Figuras 1 e 2). Primeiro, vamos mostrar DNA fragmentado para um comprimento de cerca de 200-1000 pb (Figura 1). Segundo, nós demonstramos um Chip sinal PCR seguintes do promotor proximal do crescimento associado a proteína-43 (GAP-43) somente após lesão do nervo ciático (faixa 4, Figura 2, 5 '). Não há sinal de PCR está presente quando o animal recebe uma lesão farsa só (pista 3), e quando se usa soro normal de IgG para o IP (faixa 5 e 6). Para testar a especificidade do anticorpo, foram analisadas as amostras de DNA mesmo, mas usou um conjunto de primers de controle que detecta uma região no 3'-UTR do nosso gene de interesse onde não há ocupação é esperado. Sinais de PCR estão ausentes de todas as pistas (pistas 3-6, Figura 2, 3 '), exceto para o sinal de entrada, representando amostras de DNA não-IP como padrão PCR controles (faixa 1-2, FIGUre 2). Este procedimento chip pode ser realizada tanto após a lesão de coluna vertebral dorsal ciático ou conforme resumido em um esquema (Figura 3). <img src="/files/ftp_upload/2803/2803fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Gel Agarose de DNA invertido cruzado que foi cortado por sonicação para a faixa adequada de comprimentos de fragmentos. <img src="/files/ftp_upload/2803/2803fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Resultados Semi-PCR quantitativo do tecido DRG seguintes lesão do nervo ciático mostrando que p53 acetilada se liga ao GAP-43 região promotora proximal 48 horas após a lesão do nervo ciático. Controle de PCR a partir do mesmo show DRG tecido que p53 acetilada não se liga a uma região controle do DNA localizado na região 3'-não traduzida (UTR) do gene GAP-43 (S = Sham, I = lesionados). <img src="/files/ftp_upload/2803/2803fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Um diagrama geral mostrando a localização dos locais de lesão no nervo ciático ea coluna dorsal.

<ol><li>Beirowski, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+and+qualitative+analysis+of+Wallerian+degeneration+using+restricted+axonal+labelling+in+YFP-H+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative and qualitative analysis of Wallerian degeneration using restricted axonal labelling in YFP-H mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 134, 23-35 (2004).</li>
<li>Carey, M. F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCarey%2C+MF+%22Chromatin+immunoprecipitation+%28ChIP%29%22">Chromatin immunoprecipitation (ChIP)</a>. , Cold Spring Harb. Protocol. (2009).</li>
<li>Dahl, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+micro+chromatin+immunoprecipitation+assay+%28%26mu%3BChIP%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">A rapid micro chromatin immunoprecipitation assay (&mu;ChIP.</a> Nat. Protoc. 3, 1032-1045 (2008).</li>
<li>Haring, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+immunoprecipitation%3A+optimization%2C+quantitative+analysis+and+data+normalization.+Plant+Methods%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Chromatin immunoprecipitation: optimization, quantitative analysis and data normalization. Plant Methods.</a> 11, 3-11 (2007).</li>
<li>Jiang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+neuronal+chromatin+from+brain+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Isolation of neuronal chromatin from brain tissue.</a> BMC Neurosci. 9, 42-42 (2008).</li>
<li>Lee, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+neural+stem+cells+from+the+postnatal+cerebellum%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Isolation of neural stem cells from the postnatal cerebellum.</a> Nat Neurosci. 8, 723-729 (2005).</li>
<li>Makwana, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+in+successful+peripheral+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Febs+J%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms in successful peripheral regeneration.</a> Febs J. 272, 2628-2638 (2005).</li>
<li>Tedeschi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+p53-CBP%2Fp300+transcription+module+is+required+for+GAP-43+expression%2C+axon+outgrowth%2C+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+and+Differentiation%22%5BJournal%5D)">A p53-CBP/p300 transcription module is required for GAP-43 expression, axon outgrowth, and regeneration.</a> Cell Death and Differentiation. 16, 543-554 (2009).</li>
<li>Teng, F. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+regeneration+in+adult+CNS+neurons--signaling+molecules+and+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Axonal regeneration in adult CNS neurons--signaling molecules and pathways.</a> J Neurochem. 96, 1501-1508 (2006).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Este protocolo fornece um método para solicitar directamente sobre o meio ambiente cromatina durante a regeneração axonal no sistema nervoso adulto após lesão axonal. Ele incorpora o modelo de lesão DRG com imunoprecipitação da cromatina para sondar o ambiente de transcrição e epigenéticos após a lesão ou o PNS ou CNS. É particularmente útil para pesquisadores que gostariam de caracterizar suposta sítios de ligação para o seu fator de transcrição favorito, e para determinar se a ocupação destes locais ocorre em resposta...

<table border="1"><tbody><tr><th> Reagente </th><th> Companhia </th><th> Número de catálogo </th></tr><tr><td> Tampão ChIP 10x </td><td> Sinalização celular </td><td> 7008 </td></tr><tr><td> Tampão eluição 2x ChIP </td><td> Sinalização celular </td><td> 7009 </td></tr><tr><td> ChIP Beads proteína G Grade Magnética </td><td> Sinalização celular </td><td> 9006 </td></tr><tr><td> Rack Punho Magna (8 também) </td><td> Millipore </td><td> 2-40 </td></tr><tr><td> Clorofórmio </td><td> MERCK </td><td> ONU 1888 </td></tr><tr><td> O formaldeído 37% </td><td> ROTH </td><td> CP10.1 </td></tr><tr><td> Solução Glycine 10x </td><td> Sinalização celular </td><td> 7005 </td></tr><tr><td> Glicogênio </td><td> Sigma </td><td> G1767 </td></tr><tr><td> HBSS 10x </td><td> Gibco </td><td> 14185 </td></tr><tr><td> Anticorpo histona H3 (coelho) </td><td> Sinalização celular </td><td> 2650 </td></tr><tr><td> Normais coelho IgG </td><td> Sinalização celular </td><td> 2729 </td></tr><tr><td> Fenol / clorofórmio / álcool isoamílico </td><td> ROTH </td><td> A156.1 </td></tr><tr><td> Cocktail de protease Comprimidos Inibidores </td><td> Roche </td><td> 04 693 116 001 </td></tr><tr><td> Proteinase K (20 mg / ml) </td><td> Sinalização celular </td><td> 10012 </td></tr><tr><td> SDS tampão de lise </td><td> Norte do estado </td><td> 20-163 </td></tr></tbody></table><table border="1"><tbody><tr><th> Equipamentos necessários </th></tr><tr><td> Sonicador </td></tr><tr><td> Micropistilo </td></tr><tr><td> Microcentrífuga </td></tr><tr><td> Thermomixer </td></tr></tbody></table>

cromatina imunoprecipitação de tissue dorsal root gânglios seguintes lesão axonal

Chromatin Immunoprecipitation from Dorsal Root Ganglia Tissue following Axonal Injury

Axônios no sistema nervoso central (SNC) não se regeneram, enquanto as do sistema nervoso periférico (SNP) se regeneram de forma limitada após a lesão (Teng et al., 2006). Reconhece-se que os programas de transcrição essencial para crescimento de neuritos e axonal são reativados após lesão no PNS (Makwana et al., 2005). No entanto as ferramentas disponíveis para analisar regulação gênica neuronal in vivo são limitados e muitas vezes desafiador. Os gânglios da raiz dorsal (DRG) oferecem um sistema excelente modelo prejuízo, porque tanto o CNS e PNS são inervados por um axônio bifurcada proveniente da soma mesma. Os gânglios representar uma coleção discreta de corpos celulares, onde todos os eventos ocorrem de transcrição, e assim fornecer uma região claramente definida de atividade transcricional que pode ser facilmente reproduzível e retirado do animal. Lesão de fibras nervosas no PNS (por exemplo, nervo ciático), onde a regeneração axonal ocorre, deve revelar um conjunto de programas de transcrição que são distintas das respondendo a uma lesão similar no sistema nervoso central, onde a regeneração não ocorre (por exemplo, na medula espinhal ). Sites para o fator de transcrição de ligação, histona e modificação de DNA resultante da lesão a qualquer PNS ou SNC podem ser caracterizadas usando cromatina imunoprecipitação (chip). Aqui, nós descrevemos um protocolo chip usando tecido DRG fixo rato após lesão axonal. Esta poderosa combinação oferece um meio para caracterizar o ambiente cromatina pró-regeneração necessária para promover a regeneração axonal.

Nós apresentamos um método para imunoprecipitação da cromatina do tecido da raiz dorsal após lesão axonal gânglios. A abordagem pode ser usada para identificar locais de transcrição específicos fator determinante e importante modificação epigenética de histonas e DNA para a regeneração de axônios lesados ​​tanto no sistema nervoso periférico e central.

Cromatina imunoprecipitação de Tissue Dorsal Root Gânglios seguintes Lesão Axonal

Os axônios no sistema nervoso central (SNC) não se regeneram, enquanto aqueles no sistema nervoso periférico (SNP) regeneram-se em certa medida após ...

O objetivo geral deste procedimento é imunoprecipitar complexos de proteína-DNA reticulados a partir de tecido de gânglios da raiz dorsal após lesão nervosa. Isso é realizado primeiramente induzindo lesão do nervo ciático ou da coluna dorsal. O segundo passo consiste em reticular a amostra e solubilizar o complexo proteína-DNA.O terceiro passo do procedimento é imunoprecipitar um complexo específico de proteína-DNA. Por fim, o DNA é purificado e recuperado. Em última análise, podem ser obtidos resultados que mostram o enriquecimento de fragmentos de DNA associados a uma proteína ou modificação histônica de DNA.Este método pode ajudar a responder perguntas-chave no campo da regeneração axonal, como quais sítios de ligação ao DNA, fatores de transcrição e modificações de histonas são necessários para a regulação de genes importantes na promoção da regeneração axonal. Para começar, coloque um animal anestesiado sobre a mesa cirúrgica. Mantenha a anestesia durante toda a cirurgia por meio da administração contínua de oxigênio com isoflurano através de um cone nasal antes de prosseguir.Confirme a profundidade correta da anestesia com o reflexo de preensão do dedo do pé para lesão do nervo ciático. Depile cuidadosamente a região traseira e remova os pelos residuais com um agente depilatório. Após a remoção dos pelos, limpe a pele com aplicações repetidas de álcool seguidas por Betadine.Realize uma incisão de quatro milímetros através da pele, posterior e paralela ao fêmur. No terço médio da coxa, use pinças finas para separar os músculos e expor o nervo ciático branco localizado abaixo. Após isolado, o nervo pode ser deixado intacto para servir como controle cirúrgico simulado ou seccionado para induzir lesão.Para finalizar, puxe a pele para unir as bordas e feche com dois clipes cirúrgicos para lesão da coluna dorsal. Remova os pelos das costas e limpe o local da incisão conforme mostrado anteriormente. Faça uma incisão de 2,5 centímetros acima da medula espinhal, da vértebra T7 até T13.Use pin&ccedil;as finas para segurar a pele enquanto separa a gordura. Em seguida, fixe a gordura superficial com dois ganchos. Uma vez que a gordura estiver puxada para tr&aacute;s, localize o vaso sangu&iacute;neo no espa&ccedil;o entre a sexta e a s&eacute;tima v&eacute;rtebras para utiliz&aacute;-lo como ponto de refer&ecirc;ncia.Corte o músculo bilateralmente sobre as vértebras oitava e décima e insira dois ganchos para mantê-lo aberto. Use uma tesoura pequena para remover os músculos sobre a lâmina de T8 a T10, segurando o processo espinhoso. Realize uma laminectomia em T10 cortando o osso de conexão em ambos os lados.Levante cuidadosamente a metade superior das vértebras para expor a medula espinhal subjacente. Aplique algumas gotas de Xilocaína 2% para anestesiar a medula espinhal e, em seguida, remova a dura-máter, tomando cuidado para não tocar a medula espinhal.Parar neste ponto forneceria um controle cirúrgico simulado para lesar a coluna dorsal. Faça um corte de 0,3 a 0,4 milímetros de profundidade através da medula espinhal. Por fim, feche o músculo com pontos e libere a gordura superficial.Puxe a pele para unir as bordas e feche com clipes cirúrgicos. Devolva o animal à sua gaiola de origem e monitore até a recuperação completa. 48 horas após a lesão, eutanazie o animal e colete os gânglios da raiz dorsal L4 e L5 ou DRG.O primeiro passo é expor a coluna vertebral ventral. Em seguida, remova a metade ventral das vértebras de T12 a L6. Para expor a medula espinhal, identifique os gânglios da raiz dorsal (DRGs) localizados no espaço entre as vértebras ao lado da medula espinhal.Use pin&ccedil;as finas para segurar os g&acirc;nglios da raiz dorsal L4 e L5, levantando levemente. Corte o mais pr&oacute;ximo poss&iacute;vel do corpo do g&acirc;nglio da raiz dorsal. Colete um total de 16 g&acirc;nglios da raiz dorsal de quatro animais e coloque-os em HBSS gelado.Centrifugue brevemente o gânglio da raiz dorsal, adicione 500 microlitros de formaldeído 1% e incube a amostra por 30 minutos. A 37 graus Celsius, adicione 125 milimolar de glicina para interromper a fixação e incube por cinco minutos à temperatura ambiente. Após uma breve centrifugação, aspire o tampão e lave o tecido duas vezes com 500 microlitros de PBS frio adicionado de coquetel de inibidores de protease.Em seguida, aspire o PBS e adicione 400 microlitros de tampão de lise SDS, e desintegre o tecido com aproximadamente 30 movimentos de um pistilo micro. Em seguida, sonique a cromatina com oito pulsos de dez segundos cada a 70% da potência. Sugere-se que você analise uma amostra para confirmar a fragmentação do DNA em comprimentos de aproximadamente 200 a 1000 pares de bases.Divida igualmente a amostra de cromatina fragmentada em um novo tubo. Para cada reação de imunoprecipitação a ser realizada, complete o volume de cada tubo até 500 microlitros com tampão chip mais coquetel de inibidores de protease. Em seguida, retire cinco microlitros da sua amostra diluída e transfira para um novo tubo.Esta é a sua amostra de entrada de 1% e será armazenada a menos 20 graus Celsius até o momento do uso. Posteriormente, adicione anticorpo ou controle de IgG normal a cada tubo e incube a quatro graus Celsius com rotação durante a noite. No dia seguinte.Imunoprecipite o complexo adicionando 30 microlitros de esferas magnéticas de proteína G e incubando por duas horas a quatro graus Celsius com rotação. Em seguida, coloque o tubo em um suporte magnético para sedimentar o complexo de cromatina ligado às esferas. Quando a solução estiver clara, remova cuidadosamente o sobrenadante e lave as esferas três vezes com um mililitro de tampão de baixa força iônica, com uma incubação de três a cinco minutos a quatro graus Celsius com rotação para cada lavagem.Em seguida, lave uma vez com um mililitro de tampão de alta salinidade. Neste momento, retire a amostra de 1%input de menos 20 graus Celsius e adicione 150 microlitros de tampão de eluição chip. Reserve o tubo à temperatura ambiente para uso posterior.Retornando às amostras de IP, adicione 150 microlitros de tampão de eluição 1x chip a cada tubo. Incube as amostras a 65 graus Celsius por 30 minutos com vortexagem suave para eluir a cromatina dos grânulos. Coloque os grânulos no suporte magnético e transfira cuidadosamente a cromatina eluída para novos tubos, incluindo as amostras de entrada.Adicione 200 milimolar de cloreto de sódio e 40 microgramas por reação de protease K e incube a 65 graus Celsius por duas horas; após a incubação, recupere o DNA utilizando procedimentos padrão para análises posteriores aqui. São mostrados os resultados de PCR semi-quantitativa de tecido de gânglio da raiz dorsal após lesão do nervo ciático. As linhas um e dois mostram o sinal de PCR das amostras de entrada.O sinal de PCR na faixa quatro mostra que o P 53 acetilado se liga à região promotora proximal do gap 43 somente após lesão do nervo ciático. Nenhum sinal de PCR está presente quando o animal recebe uma lesão simulada, como visto na faixa três, e ao usar soro IgG normal mostrado nas faixas cinco e seis. A PCR controle a partir do mesmo tecido de DRG mostra que o P 53 acetilado não se liga a uma região controle de DNA localizada na região não traduzida três-prima do gene gap 43.Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de três etapas críticas para o sucesso. Comece com uma quantidade suficiente de tecido, garanta uma fragmentação e solubilização eficientes do complexo DNA-proteína e escolha um bom anticorpo para imunoprecipitação da proteína de interesse.

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JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Demonstramos um protocolo para o isolamento axoplasma do nervo ciático de ratos adultos com base na dissecação de fascículos do nervo e incubação em meio hipotônico para liberar mielina e lise não-axonal estruturas, seguida de extração dos restantes materiais axônio enriquecido.

Isolamento axoplasma de nervo ciático do rato

Imagens ao vivo de axônios da raiz dorsal após rizotomia

Estudo genético da regeneração do axônio com cultivadas Adulto neurônios do gânglio da raiz dorsal

Fonte: Li, Q., et al. Investigando a regeneração do axônio de mamíferos: eletroporação in vivo do gânglio da raiz dorsal de camundongos adultos. J. Vis. Exp. (2018)Este vídeo demonstra o processo de regeneração axonal em um nervo ciático de camundongo após uma lesão por esmagamento. O nervo isolado é fixado e preparado para imagens, com proteínas fluorescentes expressas em neurônios para visualizar o crescimento do axônio. Usando um microscópio de epifluorescência, a regeneração do axônio é...

Regeneração axonal no nervo ciático de um camundongo após uma lesão por esmagamento

Fonte: Li, Q. et al. Investigando a regeneração do axônio de mamíferos: eletroporação in vivo do gânglio da raiz dorsal de camundongos adultos. J. Vis. Exp. (2018)Este vídeo demonstra a transfecção mediada por eletroporação de neurônios DRG de camundongos para estudar a regeneração do axônio. Ele descreve as etapas para fornecer construções de ácido nucleico aos neurônios DRG, induzir lesão do nervo ciático e avaliar a regeneração axonal.

Transfecção mediada por eletroporação de gânglios da raiz dorsal de camundongos para promover a regeneração sensorial do axônio

Um paradigma lesão utilizando a Drosophila larval cordão nervoso ventral para investigar a regeneração do sistema nervoso central e de reparação é descrito. Stabbing seguido por varredura a laser microscopia confocal em amostras de lapso de tempo e fixa, combinada com a análise quantitativa, com software desenvolvido propositadamente e genética, são utilizados para investigar os mecanismos moleculares do CNS regeneração e reparo.

Um Paradigma para Investigar Lesão de reparação do sistema nervoso central em<em&gt; Drosophila</em

Este protocolo apresenta o uso de uma injeção de gânglio da raiz dorsal (DRG) com um vetor viral e uma lesão concomitante por esmagamento da raiz dorsal em um rato adulto como modelo para estudar a regeneração sensorial do axônio. Este modelo é adequado para investigar o uso da terapia gênica para promover a regeneração sensorial do axônio.

Dorsal Root Injection gânglio da raiz dorsal e lesão por esmagamento como um modelo para Sensorial Axon Regeneração

Eletroporação é uma abordagem eficaz para entregar genes de interesse em células. Aplicando-se esta abordagem na vivo sobre os neurônios do gânglio de raiz dorsal do rato adulto (DRG), descrevemos um modelo para estudo de regeneração do axônio em vivo.

Investigação regeneração do axônio mamíferos: In Vivo Electroporation do gânglio de raiz Dorsal do rato adulto

Apresentamos aqui o desenvolvimento para a aquisição consistente de cortes criostato de gânglio da raiz dorsal de alta qualidade.

Um procedimento para criossecção do gânglio da raiz dorsal de camundongos

Este protocolo descreve um sistema microfluídico modelando a dinâmica metabólica neuronal pós-lesão axonal, permitindo imagens, análise multiômica e estudos mecanicistas de remodelação metabólica intrínseca.

Chip microfluídico para construção de modelos de lesão axonal e habilitação de análise multiômica

Os gânglios da raiz dorsal (DRG) contêm corpos celulares primários de neurônios sensoriais e transmitem sinais sensoriais periféricos para a medula espinhal. Este protocolo descreve um método para dissecação por DRG de camundongos que suporta o isolamento padronizado de gânglios estruturalmente intactos, identificação segmentar anatômica, orientação intuitiva para usuários iniciantes e redução de lesão processual no tecido.

Dissecação e isolamento dos gânglios dorsais da raiz do camundongo

Aprenda a técnica de imunoprecipitação de cromatina em gânglios da raiz dorsal após lesão axonal. Este método permite identificar sítios de ligação de fatores de transcrição e modificações epigenéticas relevantes para a regeneração nervosa.

Cromatina imunoprecipitação de Tissue Dorsal Root Gânglios seguintes Lesão Axonal

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