Name: Um protocolo Optimizado para Criação Fopius arisanus, Um parasitóide de Frutas Tephritid Flies (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: Aprenda a criar Fopius arisanus, um parasitóide eficaz contra moscas-das-frutas Tephritidae. Este protocolo otimizado utiliza blocos de ágar e dieta larval específica para estabelecer colônias sustentáveis em laboratório.

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Agradecemos a Keith Shigeteni de contribuição no insetário e Sostrom Natasha para ajudar com computação gráfica. Este trabalho foi financiado pelo USDA-ARS. Opiniões, resultados, conclusões ou recomendações expressas nesta publicação são as dos autores e não refletem necessariamente a opinião do USDA. O USDA é um provedor de igualdade de oportunidades e empregador.

1. Prepare ovos do hospedeiro para o parasitismo mosca da fruta <ol><li> Prepare um substrato para os ovos de mosca de fruta a ser parasitados por preparar agar (alternativamente, Gelcarin GP812, FMC Biopolymer, Ewing NJ; uma opção mais rentável) pratos cheios, 10 cm de comprimento de cada lado e 1,5 cm de profundidade. Prepare ágar na concentração de 9 g por litro de água. </li><li> Preencha pratos até a borda com ágar líquido (cerca de 70ml) e deixe esfriar e solidificar (pelo menos 45 minutos). </li><li> Uma vez que os blocos de agar são sólidos, aplique uma camada de papel de seda (uma única camada de tecido 'Preferências' Georgia Pacific lote), cobrindo a parte superior de cada bloco. O tecido deve ficar facilmente para o agar por causa da umidade da superfície. </li><li> Aplicar um volume de 0,5 ml de ovos de mosca de fruta em suspensão na água para a superfície coberta de tecido dos blocos de ágar. No nosso insetário, isso é equivalente a cerca de 6000 ovos de Bactrocera dorsalis (12000 ovos por ml). </li><li> Use um pano limpo 2,5 centímetros de largura pincel umedecido em água para espalhar os ovos mosca da fruta uniformemente sobre a superfície do tecido. </li><li> Coloque os ovos de mosca de fruta sob a tela de fundo do parasitóide gaiolas para permitir a oviposição. Toque a parte inferior da tela de fundo para remover parasitas mortos que podem obstruir os ovos. É melhor se a tela de baixo não toca os ovos. </li><li> Permitir que os parasitas para oviposit durante a noite e no dia seguinte, cerca de 21 horas. Isso é tempo suficiente para que uma alta porcentagem dos ovos a serem parasitados. Exposição mais longa superparasitization riscos. </li></ol> 2. Incubação e de pupação fruto hospedeiro parasitado moscas <ol><li> Prepare criação recipiente, colocando 3-3,5 blocos de ágar preparado de ovos parasitados por 1,25 litros de dieta de frutas fly 19 com ovos voltada para cima. </li><li> Coloque o recipiente dieta com ovos em um riser sobre uma camada de 1,5 cm de profundidade grau de vermiculita fina ou areia lavada em um recipiente maior pupação. Cubra o recipiente pupação com uma tampa e fita adesiva nas bordas da fita adesiva com. Vermiculita pode ser reutilizado após peneiração (veja abaixo). </li><li> Verifique se há espaço suficiente entre a parte superior do recipiente dieta e a tampa do frasco pupação de larvas de mosca se arrastar para fora e 'pop' 20 no vemiculite abaixo. </li><li> Mover recipientes pupação para uma sala a 27 ° C e 80% de umidade relativa (UR) por uma semana. Recipientes cubra com um pano escuro para os primeiros quatro dias depois remover o tecido para os dias restantes. </li><li> Remover dieta larval após uma semana, uma vez que as larvas estalaram e entrou na vermiculita para pupação. Se houver larvas nos vermiculite, permitir-lhes pupate durante a noite. </li><li> Peneira as pupas da vermiculita. Comece com uma peneira grossa (cerca de 3 mm), em seguida, use uma peneira para remover qualquer lado restantes aglomerados de vermiculita. </li></ol> 3. Classificação e seleção <ol><li> Pupa contendo F. arisanus pode ser parcialmente segregado de moscas de frutas unparasitized por tamanho. Coletar pupa entre 1,65 e 2,26 milímetros de diâmetro, como estes irão ser enriquecido para moscas parasitadas. 12 pupários que são menores contêm principalmente parasitóides subdimensionado, pupa maiores contêm principalmente moscas. Note também que para as pupas parasitadas a porcentagem de fêmeas se correlaciona positivamente com o tamanho 12. </li><li> Uma variedade de métodos podem ser empregados para classificar pupas por tamanho. Vamos descrever um método mecânico usando um tamanho personalizado classificador 21. </li><li> Pupas lugar no funil no topo de um alimentador de vibração que lentamente alimenta o classificador de tamanho. </li><li> Alimentar o pupas no classificador de tamanho, que consiste de um par de barras de rolamento ligeiramente divergentes em um ângulo de 30 °. A queda de pupas individualmente por tamanho em uma matriz de slots que vazio em dez recipientes separados através de um funil. </li><li> Recolher os copos de pupas na faixa de tamanho de 1,65-2,26 mm e colocá-los em uma gaiola de emergência por mais 7 dias até que a maioria moscas emergiram as pupas unparasitized. </li><li> Em seguida, use um ventilador para separar pupários vazios daqueles insetos contendo ainda. </li></ol> 4. F. arisanus surgimento e manutenção <ol><li> Para manter a colônia de F. arisanus usar uma gaiola parasitóide segurando com uma frente de vidro removível, cerca de 25 cm de comprimento de cada lado. A gaiola tem um milímetro de triagem dois na parte superior e dois dos lados. A parte de trás da gaiola é coberto por um lençol de borracha com um furo de 9 cm para o acesso. O fundo da gaiola tem um recorte cobertas por dentro com 1-2mm de tela 2 grandes o suficiente para permitir a colocação de dois blocos de agar com ovos de mosca de fruta para oviposição do parasitóide. </li><li> As gaiolas holding também deve ter uma porção coloridas ao longo do trimestre inferior da fachada de vidro para minimizar a luz que pode criar crowding parasitóide ao longo da frente da gaiola, resultando em mortalidade elevada. </li><li> Coloque cerca de 11 g desses seleçãoted pupas em recipientes plásticos de aproximadamente 9 cm de diâmetro. Isso deve produzir cerca de 600-700 parasitas por gaiola. Seleção de tamanho deve resultar em cerca de 60% do sexo feminino. </li><li> Anexar tampas selecionados para os recipientes. As tampas devem ser cobertos com 2 mm 2 de triagem, o que permitirá adultos F. arsianus para deixar os recipientes após a emergência, mas, conterá qualquer moscas de frutas restantes. </li><li> Manter os parasitas a 24 ° C e cerca de 45% RH com uma ventilação 12:12 fotoperíodo e bom. Se a mortalidade alta é observada, movendo-se as gaiolas ao ar livre por algumas horas por dia ou ventilação pode aumentar a reduzi-lo. Parasitas deve estar pronto para oviposit em uma semana adicional e devem ser produtivo por mais duas semanas. </li><li> Streak não diluído mel girado ao longo do topo das gaiolas, pelo menos, três vezes por semana ou sempre que o mel disponível é seco. Aplique o mel girou em estrias estreitas usando um dedo. Note que, se as estrias são muito pesados ​​o mel vai gotejar para dentro da gaiola, se muito leve o mel vai secar rapidamente e exigem reaplicação freqüente. </li><li> Colocar os blocos de ágar (10 cm x 10 cm x 4 cm) nos topos das gaiolas para fornecer umidade para os parasitas. Estes devem ser mudadas duas vezes por semana. </li></ol> 5. Resultados representativos: Relatamos aqui os resultados de procedimentos de controle de qualidade realizados no F. USDA-ARS arisanus operação de criação em Hilo, Havaí entre 05 de janeiro e 22 junho de 2010. Criação no local de Hilo na escala descrita neste artigo de vídeo e protocolo foi iniciado em agosto de 2009, e os problemas iniciais e ajustes com o novo local tinha sido na sua maioria resolvidos por janeiro. Portanto, estes dados são representativos dos resultados de outros pesquisadores podem obter a partir de sua colônia, se seguir o protocolo, conforme descrito e ter experiência de criação de insetos em geral. Durante este período, fomos mantendo uma pequena colônia de F. arisanus: 4 parasitóide gaiolas segurando produzidos por semana, equivalente a cerca de 3.600 F. arisanus. Uma verificação inicial das taxas de parasitismo enriquecido foi conduzido tomando uma amostra de 2 g de pupas na faixa de tamanho de 1,65-2,26 mm (enriquecido), antes de mais uma semana de desenvolvimento em uma gaiola de retenção (isto é, imediatamente após a dieta larval foi removido e os pupas peneirado e tamanho classificadas. Referimo-nos a estas como 'pupas cedo "). Durante os primeiros três meses de 2010 os parasitas significa proporção na amostra enriquecida foi de 0,46 (DP = 0,18). Durante o trimestre seguinte esta média foi de 0,58 (DP = 0,08), refletindo a estabilização dos procedimentos e criação de colônias no novo local. Note-se que as pupas enriquecido, que não estavam parasitados com sucesso incluem aqueles que não produzem emergentes e aqueles que produziram as moscas. Após mais uma semana na remoção gaiola realização de pupários vazios outra amostra de grama dois anos foi tomada ('pupas tarde'). Moscas da fruta representava menos de 1% desta amostra. O baixo percentual de moscas da fruta é parcialmente devido a com o anterior aparecimento de moscas em comparação com parasitas, assim a maioria voa permaneceu no recipiente de exploração. Finalmente, a Figura 1 apresenta o rendimento em massa de pupa de janeiro a junho de 2010. Os rendimentos são medidos a partir de pupas enriquecido na faixa de tamanho de interesse, 1,65-2,26 mm. A grande massa de "início de pupas 'no início do ano indica uma alta proporção de moscas de frutas e pupas unemerged naquela época, enquanto que os ajustes foram sendo feitos para as novas instalações. <img src="/files/ftp_upload/2901/2901fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Rendimento de enriquecido (pupal diâmetro 1,65 2,26 milímetros) precoce (imediatamente após a seleção do tamanho) e 'atrasado' pupas (após a realização de uma semana e remover carcaças vazias) na ARS-USDA colônia ariasnus F. em Hilo, Hawaii , Janeiro - Junho 2010

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</ol>

Nós não temos conflitos de interesse para relatar.

Neste artigo de vídeo protocolo e acompanhamento que temos descrito e demonstrado um protocolo otimizado para a criação de F. ariasnus, um parasitóide de moscas da fruta Tephritid, em um ambiente de laboratório. Este protocolo tem sido aperfeiçoado ao longo dos anos, para minimizar a quantidade de equipamentos de trabalho e especializado necessário para manter uma colônia. Notamos que uma bem estabelecida colônia, produtiva e estável de moscas da fruta host é necessária para qualquer tentativa de criação de parasitóides. No nosso insetário usamos Bactrocera dorsalis como uma mosca de fruta de acolhimento, mas outras espécies têm sido mostrados para ser os anfitriões competentes, bem 14-17. Vários aspectos da F. arisanus manutenção da colônia ainda precisam ser exploradas. Estes incluem a taxa de adaptação desta espécie de laboratório em 10 de mecanismos de aprendizagem 22 e as mudanças genéticas que podem ocorrer com adaptação e mecanismos que podem estar envolvidos na plasticidade anfitrião mosca da fruta. Nos últimos dez anos houve vários exemplos da propagação de moscas Dacine todo o mundo, em especial os da Bactrocera género: B. dorsalis na Polinésia Francesa, B. carambolae em partes da América do Sul, B. invadens na África e B. zonata na África e Mediterrâneo do Norte. Testing 3,23,18 a eficácia dos agentes de controle biológico, como F. arisanus contra outras espécies Bactrocera deve ser uma alta prioridade, e é nossa esperança que a aplicação dos métodos descritos neste protocolo e artigo de vídeo que o acompanha, vai acelerar a pesquisa sobre F. arisanus em uma ampla variedade de locais 24. Por fim, novas pesquisas utilizando este método como ponto de partida também pode fornecer informações importantes para a colonização de parasitóides de ovos romance 25,1

um protocolo optimizado para criação fopius arisanus, um parasitóide de frutas tephritid flies

An Optimized Protocol for Rearing Fopius arisanus, a Parasitoid of Tephritid Fruit Flies

Fopius arisanus (Sonan) é um parasitóide de moscas da fruta importante Tephritid por pelo menos duas razões. Primeiro, é o um dos únicos três parasitóides opiine conhecido para infectar o hospedeiro durante a fase de ovo 1. Em segundo lugar, tem uma ampla gama de hospedeiros em potencial de frutas voar. Talvez devido à sua história de vida, F. arisanus tem sido um sucesso usado para controle biológico de moscas da fruta em várias regiões tropicais 2-4. Um impedimento para o amplo uso do F. arisanus para controle de mosca da fruta é que é difícil estabelecer uma colônia de laboratório estável 5-9. Apesar desta dificuldade, na década de 1990 pesquisadores do USDA desenvolveu um método confiável para manter populações de laboratório de F. arisanus 10-12. Há um interesse significativo em F. arisanus 13,14 biologia, especialmente quanto à sua capacidade de colonizar uma grande variedade de hosts Tephritid 14-17; interesse é especialmente dirigido pelo alarmante disseminação de pragas mosca Bactrocera frutas para novos continentes na última década 18. Pesquisa mais aprofundada sobre F. arisanus e implementações adicionais desta espécie como um agente de controle biológico irá beneficiar de otimizações e melhorias de métodos de criação. Neste protocolo e artigo vídeo associado descrevemos um método otimizado para a criação de F. arisanus com base em uma abordagem descrita anteriormente 12. O método descrito aqui permite criação de F. arisanus em pequena escala, sem a utilização de frutas, utilizando materiais disponíveis em regiões tropicais em todo o mundo e com as exigências de trabalho relativamente baixa manual.

Fopius arisanus é um parasitóide de ovos-larvas de moscas da fruta Tephritid que é utilizado com sucesso no controle biológico dessas pragas importantes tropical. Descrevemos aqui um protocolo otimizado para a criação de F. arisanus em pequena escala, utilizando materiais facilmente disponíveis.

Um protocolo Optimizado para Criação Fopius arisanus, Um parasitóide de Frutas Tephritid Flies

Fopius arisanus (Sonan) é um parasitoide importante de moscas-das-frutas Tephritidae por pelo menos dois motivos. Primeiro, é um dos apenas três opiíneos...

FOIA Aus é um importante agente de controle biológico no Havaí porque ataca moscas-das-frutas, que são pragas econômicas sérias em todo o trópico e especialmente aqui no Havaí. A vantagem de FOIA Aus é que ele ataca a fase de ovo do inseto-praga, controlando o inseto em estágio inicial. Nos vídeos a seguir, você poderá observar detalhes de como criamos FOIA Aus em um ambiente de laboratório.E ao final deste programa, você verá algumas discussões sobre como esse parasitoide em particular foi utilizado em um programa de liberação bem-sucedido na Polinésia Francesa. Iniciaremos nosso protocolo com parasitas adultos prontos para ovipositar em ovos de uma mosca-das-frutas hospedeira. O primeiro passo é preparar os ovos da mosca-das-frutas para apresentação ao parasita.Em seguida, permite-se que as larvas de mosca-das-frutas eclosionem, se desenvolvam e sofram pupação. Uma vez que as moscas-das-frutas atinjam o estágio de pupa, são classificadas por tamanho para enriquecer a população de parasitas. Por fim, os parasitas emergem e são mantidos até a maturação.Em seguida, eles se encontram e estão novamente prontos para invadir uma nova leva de frutas. Ovos de moscas. Isso completa o ciclo.Prepare um substrato para a fruta. Ovos de mosca produzidos por meio de blocos de ágar com aproximadamente 10 centímetros de lado. O ágar é preparado na concentração de nove gramas de pó de ágar por litro de água.Em uma superfície nivelada, encha as placas até a borda com o meio líquido, deixando-o solidificar por pelo menos 45 minutos. Uma vez que os blocos de meio estejam sólidos, aplique uma única camada de papel-toalha cobrindo a parte superior de cada bloco. O papel deve aderir facilmente ao meio devido à umidade superficial.Uma segunda aplicação. Aplique os ovos de mosca-das-frutas na superfície do bloco helicoidal coberta com tecido. Um volume de 0,5 mililitro de ovos de mosca-das-frutas em suspensão fornece aproximadamente 6.000 ovos por bloco.Uma escova de pintura com 2,5 centímetros de largura, mergulhada em água, é usada para espalhar uniformemente os ovos de mosca-das-frutas sobre a superfície do tecido. Os ovos de mosca-das-frutas são então colocados sob a tela inferior das gaiolas de parasitas para permitir a postura sobre eles; bater na parte inferior da tela remove os parasitas mortos, que poderiam obstruir as moscas. Os ovos de mosca permitem que os parasitas realizem a postura durante a noite.Aproximadamente 21 horas são suficientes para que uma alta porcentagem dos ovos de mosca-das-frutas seja parasitada. Um tempo maior de exposição aumenta o risco de superparasitismo. Os principais componentes necessários para o cultivo dos ovos após a exposição aos parasitas são a dieta larval de mosca-das-frutas, recipientes para a dieta larval e recipientes para pupação.Coloque de três a três e meio blocos preparados de brocas com ovos parasitados em um litro e um quarto de dieta para larvas de mosca. Coloque o recipiente com a dieta e os ovos sobre um suporte elevado e um recipiente de pupação sobre uma camada de um centímetro e meio de vermiculita de granulação fina ou areia lavada.Fixe as bordas do recipiente de pupação com fita crepe. Certifique-se de que haja espaço suficiente entre o topo do recipiente da dieta e a tampa do recipiente de pupação para que as larvas possam sair rastejando e cair na vermiculita abaixo. Transfira os recipientes de pupação para uma sala com temperatura de 27 graus centígrados e umidade relativa de 80% por uma semana.Cubra os recipientes com um pano pesado durante os primeiros quatro dias após uma semana. Abra os recipientes de pupação e remova a dieta larval. Utilizamos Bre Dorsals como mosca-das-frutas hospedeira para criar foia Airis.Outras espécies dos gêneros Asfa e sitis também são hospedeiras potenciais. Se houver larvas não emergidas na vermiculita, deixe-as pupar durante a noite na peneira. Inicie a coleta das pupas da vermiculita com uma peneira grossa e um recipiente grande.Em seguida, utilize uma peneira manual para remover quaisquer torrões remanescentes de vermiculita Eria contendo opia. Ais podem ser parcialmente segregadas de moscas-das-frutas não parasitadas por. Assim, com base em pesquisas anteriores, coletamos apenas a aria entre 1,65 e 2,26 milímetros de diâmetro er, que são menores e contêm principalmente parasitoides subdimensionados.Árias maiores contêm principalmente moscas. Uma variedade de métodos pode ser empregada para separar os pupas por tamanho. Descreveremos um método mecânico utilizando um separador de tamanho personalizado para as árias coletadas parasitadas.A porcentagem de fêmeas aumenta com o tamanho. Coloque o puy no funil na parte superior do classificador mecânico por tamanho. Um alimentador vibratório move-os para o topo de um par de hastes rolantes ligeiramente divergentes em um ângulo de 30 graus. As peças caem individualmente em uma série de ranhuras que se esvaziam através de funis em 10 recipientes separados.Coloque pupas no intervalo de tamanho entre 1,65 milímetros e 2,26 milímetros em uma gaiola de emergência por mais sete dias, até que a maioria das moscas tenha emergido das pupas parasitadas. Em seguida, use um ventilador para separar as cascas vazias das moscas daquelas que ainda contêm parasitoides vivos. Para manter a colônia de Opia Aus, utilize uma gaiola de contenção de parasitas com frente de vidro removível, com aproximadamente 25 centímetros de comprimento por lado.A gaiola possui uma tela de um milímetro quadrado na parte superior e em dois dos lados. A parte traseira da gaiola é revestida com uma folha de borracha que tem um orifício de nove centímetros para acesso. O fundo da gaiola tem uma abertura recortada, coberta internamente com uma tela de um a dois milímetros quadrados.Grande o suficiente para permitir a colocação de dois blocos de augere com frutas e ovos de moscas para o parasita na posição superior. As gaiolas de contenção também devem ter uma parte colorida ao longo do quarto inferior da frente de vidro para minimizar o agrupamento do parasita ao longo da frente da gaiola. Coloque aproximadamente 11 gramas da ária selecionada em recipientes plásticos, com cerca de nove centímetros de diâmetro.Isso deve produzir cerca de 600 a 700 parasitas por caixa. A seleção por tamanho deve resultar em cerca de 60% fêmeas. Prenda tampas de tela aos recipientes. As tampas devem ser cobertas com uma tela de dois milímetros quadrados, que permitirá que as moscas deixem os recipientes ao emergir, mas conterá quaisquer moscas-das-frutas remanescentes.Mantenha os parasitas a 24 graus centígrados e cerca de 45% de umidade relativa, com um fotoperíodo de 12:12 e boa ventilação. Aplique mel centrifugado ao longo da parte superior das gaiolas pelo menos três vezes por semana ou sempre que o mel disponível estiver seco. Aplique o mel centrifugado em linhas finas usando a ponta do dedo. Observe que, se as linhas forem muito grossas, o mel pingará dentro da gaiola; se forem muito finas, o mel secará rapidamente e exigirá reaplicação frequente. Coloque blocos de umedecedor, com 10 centímetros de lado e quatro centímetros de profundidade, sobre as gaiolas para fornecer umidade aos parasitas.Esses blocos devem ser trocados duas vezes por semana. Em 2001, recebemos uma pequena subvenção para verificar se poderíamos introduzir controles biológicos na Polinésia Francesa para ajudar a aliviar a situação, pois naquela época a mosca-das-frutas-oriental estava simplesmente causando infestações incríveis em todas as frutas tropicais. O laboratório aqui no Havaí fez 10 remessas.Assim, cada um desses envios geralmente correspondia a cerca de cem mil Opia air sayings, embora na realidade fosse um número bem maior, mas enviávamos o EPI da mosca-das-frutas-oriental com o parasitoide no interior, e depois os fazíamos emergir. Montamos um pequeno laboratório em Taiti, onde recebíamos esses materiais e, então, fazíamos emergir o FOIA Air Sanus. Durante um período de aproximadamente um ano, liberamos quase um milhão de FOIA Aans.No geral, este é o exemplo mais bem-sucedido fora do Havaí. Quando o FOIA Aus foi inicialmente liberado no Havaí, tornou-se o melhor exemplo de controle biológico de moscas-das-frutas em todo o Pacífico. Ao longo dos últimos 10 anos, houve uma disseminação considerável do complexo Bactrocera Dorsals ao redor do mundo.Então, Bactrocera carbo se espalhou para a América do Sul, Suriname, e agora está no norte do Brasil. Em seguida, houve outra espécie chamada Bacter inance, que se espalhou por toda a África e está causando todo tipo de estragos. Além disso, também houve a disseminação do bacter papaya.Portanto, esse sucesso agora abre oportunidades para lançar esses FOIA Aus na América do Sul, na África e em outras partes da Ásia.

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Um método para a criação de Drosophila melanogaster sob condições axénicas e gnotobióticos é apresentada. embriões voam são dechorionated em hipoclorito de sódio, transferidos assepticamente à dieta estéril, e criados em recipientes fechados. Inoculando dieta e embriões com bactérias leva a associações gnotobióticos e presença de bactérias é confirmada por plaqueamento de corpo inteiro de Drosophila homogeneizados.

Elevando a mosca da fruta<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Sob axênicas e gnotobióticos Condições

Aqui apresentamos um protocolo baseado no sistema de isca mealworm (Tenebrio molitor)-isca que foi utilizado para isolar e selecionar fungos entomopatômicos (EPF) a partir de amostras de solo. Uma fórmula eficaz de número de conidia (ECN) é usada para selecionar EPF tolerante ao alto estresse com base em características fisiológicas para controle microbiano de pragas no campo.

Isolamento e Seleção de Fungos Entomopatômicos de Amostras de Solo e Avaliação da Virulência Fúngica contra Pragas de Insetos

Ganaspis brasiliensis-a larval parasitoide de Drosophila suzukii (uma praga global de cultura de frutas invasivas)-- foi aprovado ou é considerado para introdução na Europa e nos Estados Unidos para o controle biológico desta praga. Este artigo fornece protocolos para a criação em pequena escala e em larga escala deste parasitoide.

Métodos de Criação do Parasitoide Ganaspis brasiliensis, um Agente promissor de controle biológico para a Drosophila suzukii invasiva

Aumentar a detecção de moscas-das-frutas tefritídeos imaturas no campo pode desencadear esforços oportunos para eliminar populações dessas pragas destrutivas. A detecção de larvas de ínstar tardio é mais rápida e precisa ao acumular frutos hospedeiros em um saco e passar a polpa por uma série de peneiras do que o corte manual e a inspeção visual.

Peneiramento de polpa de frutas para detecção de moscas tefritídeos imaturas no campo

Aqui apresentamos um protocolo para obtenção de fungos entomopatogênicos de uma broca florestal e uma forma substitutiva de avaliar suas atividades entomopatogênicas usando um inseto modelo coleóptero. Este método é eficiente e conveniente para explorar recursos fúngicos entomopatogênicos de pragas de insetos perfuradores de madeira em florestas naturais.

Isolamento, Identificação Comportamental e Avaliação de Patogenicidade de Fungos Entomopatogênicos de uma Broca da Madeira Florestal

Este artigo descreve a manutenção laboratorial (incluindo acasalamento e alimentação) da mosca díptera inferior Bradysia (Sciara) coprophila.

Manutenção laboratorial da Bradisia (Sciara) coprophila da mosca dos dípteros inferiores: um novo / antigo organismo modelo emergente

O objetivo deste protocolo é facilitar a análise funcional das interações parasitoide–hospedeiro em Asobara japonica e Drosophila melanogaster. Por meio de métodos otimizados de criação, um ensaio de infecção com oviposição única e knockdown gênico mediado por RNAi.

Protocolos para Criação Eficiente e Análise Funcional da Vespa Endoparasitoide Asobara japonica e seu hospedeiro Drosophila melanogaster

Agressão a estudar em Drosophila (mosca da fruta)

Este vídeo ilustra as técnicas gerais usadas para a retaguarda Anopheles gambiae em laboratório. Os métodos para cuidar dos mosquitos laboratório são demonstrados por todos os estágios do ciclo de vida do organismo a partir de larvas de pupas a sangue-alimentação adultos.

Protocolo para a Criação Mosquito (A. gambiae)

Um método rápido para análise composto volátil na fruta é descrito. Os compostos voláteis presentes no espaço de topo de um homogenato da amostra são rapidamente separados e detectados com ultra-rápida cromatografia gasosa (GC) acoplado com uma onda acústica de superfície (SAW) do sensor. Um procedimento para manipulação de dados e análise também é discutida.

Análise de Frutas volátil Usando um Nariz Eletrônico

Aprenda a criar Fopius arisanus, um parasitóide eficaz contra moscas-das-frutas Tephritidae. Este protocolo otimizado utiliza blocos de ágar e dieta larval específica para estabelecer colônias sustentáveis em laboratório.

Um protocolo Optimizado para Criação Fopius arisanus, Um parasitóide de Frutas Tephritid Flies

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