Name: Forma Polímeros Memória da Cultura célula ativa (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 53 s
Description: Aprenda a desenvolver substratos de cultura celular com polímeros de memória de forma que alteram a topografia durante a incubação. Esta técnica inovadora permite estudar mudanças dinâmicas no comportamento celular.

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Os autores gostariam de agradecer a Kelly A. Burke de assistência técnica com a preparação do substrato ACC. Baseado no artigo publicado em Biomateriais, Davis KA, et al, o comportamento das células de memória dinâmica na forma de polímero substratos, Biomateriais, doi:. 10.1016/j.biomaterials.2010.12.006, Copyright Elsevier (2011). Este material é baseado num trabalho apoiado pela NSF Grant sob No. DMR-0907578.

1. Isotérmica de cura UV-NOA63 <ol><li> A câmara de cura personalizado foi desenvolvido utilizando uma lâmina de vidro (75 mm x 25 mm x 1 mm), um espaçador de 1 milímetro de espessura Teflon, e uma placa de alumínio (75 mm x 25 mm x 3 mm), conforme mostrado na Figura 1. A câmara é realizada em conjunto com grampos da pasta pequena. </li><li> Injetar o NOA63 na câmara através de um buraco no espaçador Teflon usando uma agulha de calibre 18. O NOA63 pode ser gentilmente aquecida para facilitar a injeção. </li><li> Coloque a câmara sobre uma chapa quente fixado em 125 ° C e deixe aquecer a uma temperatura uniforme por 5 min. </li><li> Pré-cura do NOA63 em uma câmara da lâmpada UV (λ max = 365 nm, ver tabela) por 20 minutos com a lâmpada de 6,5 cm da superfície do vidro. </li><li> Remover o NOA63 da câmara a quente usando uma lâmina de barbear. </li><li> Pós-cura a NOA63 sob a luz UV por 3 h 40 m na placa quente a 125 ° C. </li><li> Armazenar os NOA63 desidratado a -20 ° C. </li></ol> 2. Caracterização memória de forma NOA63 <ol><li> Prepare um espécime dumbbell por prensagem a quente uma curado NOA63 filme com um soco personalizado (ver tabela), cujas dimensões são mostrados na Figura 2. </li><li> Carregar a amostra em um analisador dinâmico mecânica (DMA; ver tabela) com fixação de tração. Definir o instrumento para "força controlada" modo, então o programa o procedimento de teste da seguinte forma: <ol><li> Equilibrar a 95,00 ° C </li><li> Isotérmicos para 10,00 min </li><li> Rampa de força de 0,300 N / min a 2,500 N </li><li> Isotérmicos para 5,00 min </li><li> Rampa de 2,00 ° C / min para 20,00 ° C </li><li> Isotérmicos para 10,00 min </li><li> Rampa de força de 0,300 N / min a 0,015 N </li><li> Isotérmicos para 5,00 min </li><li> Rampa de 2,00 ° C / min para 95,00 ° C </li><li> Repita os passos 2-9 mais duas vezes </li></ol></li></ol> 3. Preparação de Substratos Cultura atividade celular <ol><li> Amostras individuais podem ser preparados a partir do filme SMP isotermicamente curado. Cortar o filme SMP com uma navalha ao tamanho da amostra desejado. Coloque o SMP em uma chapa quente set a uma temperatura maior que a T g para reduzir o módulo e facilidade de corte. </li><li> A forma temporária pode ser fixado em um número de maneiras diferentes. Aqui usamos um banco de imprensa top hidráulico com quente / frio platens para emboss uma topografia temporária. Regule a temperatura do platens a uma temperatura acima da T g. </li><li> Uma impressora foi feita por cura epóxi em um disco de vinil. Isto irá produzir uma forma temporária de sulcos paralelos. Aqui, a impressora teve picos triangulares 35-40 mM de altura e 60 m de largura, espaçadas 80 mM distante. A impressora pode ser feita de outros materiais e com diferentes topografias, mas deve ser mais duro do que NOA63 na temperatura relevos. Coloque o SMP amostras de bruços sobre a impressora e colocar as amostras e impressora na imprensa. </li><li> Aplicar um pré-carga ~ 100 kPa para fazer o contato entre os pratos de aquecimento e as amostras e segure por aproximadamente 5 minutos para permitir que as amostras para chegar a uma temperatura uniforme. </li><li> Aplicar 1-6 MPa para as amostras e segure por um minuto. A tensão de 4,7 MPa leva a replicação incompleta da topografia impressora. A topografia temporária produzido tem picos arredondados 25-35 mM de altura e 150 m de largura. O SMP será fratura se um maior estresse é aplicado. Aplique tensões menores para introduzir topografias com amplitudes menores. </li><li> Reduzir a temperatura abaixo da T g. Aqui usamos a capacidade de refrigeração de água da platens imprensa. </li><li> Quando a temperatura está abaixo da T g, retire a força aplicada. </li><li> As amostras podem ser armazenadas desidratado a -20 ° C. Quando armazenado sob estas condições, temos observado uma diminuição menos de 1 mícron em recuperação amplitude após dois meses de amostras em relevo com a impressora disco de vinil. </li></ol> 4. Experimento de Cultura ativos celular <ol><li> A luz UV de um gabinete de segurança biológica (CSB) é usado para esterilizar as amostras. Providenciar as amostras de bruços em pratos estéril, sem tampas e ligar a luz UV BSC por 6 h. </li><li> Amostras virar para novos pratos estéril face para cima. Acender a luz UV BSC por 6 h. </li><li> As amostras agora precisam ser equilibrados para um estado relativamente estável antes do plaqueamento com células. Colocar as amostras em uma placa de 96 poços e adicionar 150 mL de meio de crescimento completo. </li><li> Coloque a placa em um 30 ° C incubadora com 5% de CO 2 até alcançar a desejada recuperação parcial. Aqui usamos 30 h para produzir amostras com amplitude grande o suficiente para alinhar as células. </li><li> As amostras podem agora ser revestida com as células. Colocar as amostras em uma placa de 96 novos também. </li><li> Adicionar 150 ml de solução de células às amostras. Aqui usamos C3H/10T1/2 fibroblastos embrionárias de camundongos em 20.000 células / ml para atingir células isoladas (em geral não estão em contacto com outras células). </li><li> Para permitir que as células a unir e espalhar sobre a topografia temporária, coloque em uma incubadora de 30 ° C por 9,5 h. </li><li> A morfologia das células ensaiogia antes da transição, retire amostras e realizar coloração e imagens de fluorescência das amostras. Este material apresenta autofluorescência durante a maior parte da faixa de UV e visível. Fluoróforos no extremo vermelho do espectro, tais como Alexa Fluor 647 são recomendados para reduzir fundo. </li><li> Para disparar amostras para se recuperar, mover o prato para a 37 ° C incubadora e continuar a cultura por 19 h para permitir que o material para a recuperação e permitir que as células de adaptar a sua morfologia para a nova topografia. </li><li> Retirar amostras e aplicar mancha apropriado (phalloidin de actina filamentosa de imagem) e de imagens dos procedimentos. </li></ol> 5. Resultados representativos: Curada NOA63 é um sólido, transparente vítreo que tem propriedades excelente forma de memória conforme mostrado na Figura 3. Neste caso, o material foi curado como no Protocolo 1 acima e mostra um uniforme T g de 51,1 ° C (determinado a partir do início da queda E '). Observa-se da um jeito ciclos de memória de forma (aquecimento, deformação, refrigeração, recuperando-se, a Figura 3) que, uma grande porcentagem de tensão foi fixado após a descarga a 20 ° C, correspondendo a um rácio de fixação 15 (R f) de 89,3 % (em média mais de três ciclos; o mesmo abaixo de R r). A cepa fixa recuperado em uma proporção de recuperação (R r) de 84,4% em uma faixa de temperatura relativamente pequenas durante o aquecimento. Além disso, o desempenho de memória de forma não apresentaram deterioração até três ciclos, em que todas as curvas seguem quase exactamente com o outro. NOA63 foi usado neste protocolo porque está prontamente disponível a partir do fabricante e fornecido como um pré-polímero facilmente curadas sem solvente com fotoiniciador. No entanto, sua composição não é divulgada pelo fornecedor. Verificou-se a permitir a ligação das células de alta e viabilidade. Finalmente, a temperatura de transição podem ser ajustadas para permitir uma magnitude significativa de recuperação entre as duas temperaturas celular compatível. Uma série de outros sistemas de polímero também pode ser usado com este protocolo, se a temperatura de transição é compatível com a cultura de células e se promover a adesão e viabilidade celular. A amplitude da topografia temporária (grooves) diminui ao longo do tempo a 30 ° C. Por 30 h, a 30 ° C, a amplitude foi reduzida em ~ 50% (Figura 4, o tempo 0) 16. Reduz mais 10% nos próximos 9,5 h. Quando a recuperação é desencadeada pelo aumento da temperatura para 37 ° C, a amplitude se reduz a 0,5% da amplitude inicial dentro de 9,5 h. Para a impressora usada e uma tensão de 4,9 MPa relevo, isto corresponde a uma mudança funcional de 13 mM sulcos em uma superfície quase plana. Um exemplo de um comportamento de células controlado através do uso de substratos de cultura de células ativas é uma mudança na organização do citoesqueleto. Em temporária substratos ranhuras antes da recuperação é disparado, o microfilamentos de actina alinhar ao longo da direção dos sulcos (Figura 5a) 16. Após a recuperação por aumento da temperatura, os microfilamentos têm reorganizado e são orientados aleatoriamente. Amostras de controle que têm sulcos estática ou uma superfície plana estática não reorganizar após o aumento da temperatura (Figura 5b, c). <img src="/files/ftp_upload/2903/2903fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1: Esquema de NOA63 câmara de cura. Cross-section view (esquerda) e top-down vista sem tampa de vidro (direita). <img src="/files/ftp_upload/2903/2903fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2: A geometria dumbbell utilizados para a caracterização granel memória de forma W:. Largura de seção estreita, L: comprimento da parte estreita, G: comprimento gage, WO: largura total, LO: comprimento total, D: distância entre apertos, R: raio de filé, e RO: raio externo. <img src="/files/ftp_upload/2903/2903fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3: A maior parte de memória de forma unilateral de uma cura NOA63 única, repetida três vezes (o asterisco indica o início experimental). No ponto indicado com um asterisco, o polímero foi aquecida e é então deformado pela aplicação de um esforço para definir sua forma temporária. Esta tensão é mantida constante, ea temperatura é diminuída para corrigir a forma temporária abaixo da T g do polímero. A temperatura é então aumentada, eo material recupera a sua forma permanente, a tensão temporária é reduzida. <img src="/files/ftp_upload/2903/2903fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4: Recuperação de SMP pode ser acionado em cultura de células compatíveis com as temperaturas. A amplitude de 25,6 ± 0,8 mM presente seguintes rec embossingovered para 12,6 ± 1,5 mM após 30 h de equilíbrio a 30 ° C (tempo 0, círculos pretos). Depois que as amostras foram transferidas para a 37 ° C incubadora (9,5 h), a amplitude recuperado para 1,1 ± 0,2 m dentro de 3,5 h. A amplitude recuperado para ~ 0,3 ± 0,1 mícron dentro de 9,5 h e não houve diminuição detectável ao longo dos últimos 9,5 h foi observada (triângulos vermelhos). Barras de erro representam um desvio padrão (n = 4-6). Traços são scans contato perfilometria de amostras representativas. <img src="/files/ftp_upload/2903/2903fig5.jpg" alt="Figura 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 5"> Figura 5: citoesqueleto de actina celular reorganiza seguintes transição topográfica uma imagens, Confocal de células marcadas com phalloidin em substratos em relevo mostram microfilamentos alinhado com sulco direção (seta branca) antes da transição e aumento da temperatura.. Depois da transição, microfilamentos têm reorganizados são orientados aleatoriamente. B, células em substratos de controle plana mostrar microfilamentos orientados aleatoriamente, antes e após o aumento da temperatura. C, células em substratos de controle mostram ranhuras microfilamentos alinhados com a direção sulco antes e depois do aumento da temperatura. Barra de escala é 100 mm. Traços são como na Figura 4.

<ol><li>Liu, C., Qin, H., Mather, P. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+of+progress+in+shape-memory+polymers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mater.+Chem%22%5BJournal%5D)">Review of progress in shape-memory polymers.</a> J. Mater. Chem. 17, 1543-1543 (2007).</li>
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<li>Tan, L., Tien, J., Pirone, D. M., Gray, D. S., Bhadriraju, K., Chen, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cells+lying+on+a+bed+of+microneedles%3A+an+approach+to+isolate+mechanical%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Cells lying on a bed of microneedles: an approach to isolate mechanical.</a> 100, 1484-1484 (2003).</li>
<li>Teixeira, A. I., Nealey, P. F., Murphy, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Responses+of+human+keratocytes+to+micro-+and+nanostructured+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A%22%5BJournal%5D)">Responses of human keratocytes to micro- and nanostructured substrates.</a> J. Biomed. Mater. Res. A. 71A, 369-369 (2004).</li>
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<li>Zhao, Y., Zhang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+Mechanics+Study+in+Cardiac+Myocytes+Using+PDMS+Pillars+Array%5BTitle%5D)+AND+%22Sensor+Actuat.+a-Phys%22%5BJournal%5D)">Cellular Mechanics Study in Cardiac Myocytes Using PDMS Pillars Array.</a> Sensor Actuat. a-Phys. 125, 398-398 (2006).</li>
<li>DiOrio, A. M., Luo, X., Lee, K. M., Mather, P. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Functionally+Graded+Shape+Memory+Polymer%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">A Functionally Graded Shape Memory Polymer.</a> Soft Matter. 7, 68-68 (2011).</li>
<li>Davis, K. A., Burke, K. A., Mather, P. T., Henderson, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+cell+behavior+on+shape+memory+polymer+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Dynamic cell behavior on shape memory polymer substrates.</a> Biomaterials. 32, 2285-2285 (2011).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

A T g de NOA63 pode ser facilmente controlado através da temperatura de cura. Usamos isso para gerar SMP substratos que podem ser acionados em um intervalo de células compatíveis. NOA63 é plastificada pela água que reduz a seco T g, por isso aumentou a seco T g por cura a 125 ° C para mover a faixa úmida Tg entre 30 e 37 ° C. Os substratos célula ativa cultura demonstrados são capazes de controlar o comportamento das células. Os resultados de reorganização mi...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente ou instrumento </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários (opcional) </td></tr><tr><td> NOA63 </td><td> Norland Products Inc. </td><td> NOA63 </td><td> Número do lote 111 </td></tr><tr><td> Dogbone Soco </td><td> TestResource, Inc. Shakopee, MN </td><td></td><td> Em escala reduzida Tipo IV dogbone (ASTM D638-03) </td></tr><tr><td> Bancada hidráulica Imprensa </td><td> Entalhador </td><td> 3851 </td><td></td></tr><tr><td> C3H10T1 / 2 Mouse fibroblastos embrionárias </td><td> ATCC </td><td> CCL-226 </td><td></td></tr><tr><td> Gabinete de Segurança Biológica </td><td> Thermo Fisher </td><td> 1357 </td><td></td></tr><tr><td> Lâmpada UV </td><td> Spectroline </td><td> SB-100PC </td><td></td></tr><tr><td> Analyzer mecânica dinâmica (DMA) </td><td> TA Instruments, Inc. </td><td> Q800 </td><td></td></tr><tr><td> Microscópio de fluorescência invertido </td><td> Leica </td><td> Leica DMI 4000B </td><td></td></tr><tr><td> Microscópio de varredura confocal a laser </td><td> Zeiss </td><td> LSM 710 </td><td> 20x/0.8 NA ar ou um 40x/1.30 objetivo de óleo NA </td></tr></tbody></table>

forma polímeros memória da cultura célula ativa

Shape Memory Polymers for Active Cell Culture

Polímeros com memória de forma (SMPs) são uma classe de materiais &quot;inteligentes&quot; que têm a capacidade de mudar de uma forma, fixa temporária a uma forma pré-determinada permanente sobre a aplicação de um estímulo, como o calor 1-5. Em um ciclo típico de memória de forma, o SMP é o primeiro deformado a uma temperatura elevada que é superior à sua temperatura de transição, T trans [ou a temperatura de fusão (T m) ou a temperatura de transição vítrea (T g)]. A deformação é elástica na natureza e, principalmente, leva a uma redução da entropia conformacional das cadeias constituintes da rede (seguindo a teoria da elasticidade de borracha). A SMP deformado é então resfriado a uma temperatura abaixo de sua T trans, mantendo a tensão externa ou estresse constante. Durante o resfriamento, as transições de material para um estado mais rígida (semi-cristalino ou vítreo), que cineticamente armadilhas ou &quot;congela&quot; o material neste estado de baixa entropia levando a fixação forma macroscópica. Recuperação de forma contínua é provocada por aquecimento do material através da T trans sob um stress-free condição (sem restrições). Ao permitir que as cadeias de rede (com mobilidade recuperou) para relaxar a sua termodinamicamente favorecido, o estado máximo de entropia, o material muda de forma temporária à forma permanente. Células são capazes de levantamento das propriedades mecânicas do seu ambiente circundante 6. Os mecanismos pelos quais as interações mecânicas entre as células e seus ambiente físico comportamento da célula de controle são áreas de pesquisa ativa. Substratos de topografia definida surgiram como ferramentas poderosas na investigação destes mecanismos. Mesoescala, microescala, e os padrões em nanoescala da topografia do substrato foram mostrados para dirigir o alinhamento celular, adesão celular, e as forças de tração de células 7-14. Esses achados têm ressaltou o potencial para a topografia do substrato para controlar e ensaio as interações mecânicas entre as células e seu meio ambiente físico durante a cultura de células, mas os substratos utilizados até à data têm sido geralmente passivo e não poderia ser programado para mudar significativamente durante a cultura. Esta estase física tem limitado o potencial de substratos topográfica para controlar células em cultura. Aqui, ativos de cultura de células substratos (ACC) são introduzidos SMP que utilizam memória de superfície de forma programada para fornecer controle da topografia do substrato e deformação. Estes substratos demonstrar a capacidade de transição de uma topografia temporária ranhuras para um segundo, topografia quase plana memorizado. Esta mudança na topografia pode ser usado para controlar o comportamento de células sob condições de cultura de células padrão.

Um método para o desenvolvimento de substratos de cultura de células com a capacidade de alterar a topografia durante a cultura é descrito. O método faz uso de materiais inteligentes conhecidos como polímeros com memória de forma que têm a capacidade de memorizar uma forma permanente. Este conceito é adaptável a uma vasta gama de materiais e aplicações.

Forma Polímeros Memória da Cultura célula ativa

Polímeros com memória de forma (SMPs) são uma classe de materiais "inteligentes" que possuem a capacidade de mudar de uma forma temporária fixada para uma forma permanente predeterminada...

O objetivo geral deste procedimento é cultivar células em um substrato com uma topografia que muda ao longo do tempo. Isso é realizado primeiramente programando um polímero com memória de forma em uma forma permanente que pode ser recordada. Em seguida, o polímero com memória de forma é programado em uma forma temporária, na qual as células serão posteriormente semeadas.O passo final do procedimento é acionar o polímero com memória de forma para que retorne à sua forma permanente mediante aumento da temperatura; os resultados finais podem ser obtidos por microscopia de fluorescência, demonstrando mudanças no comportamento celular. Olá, meu nome é Pat Mather. Sou professor de Engenharia Biomédica e Química e diretor do Instituto de Biomateriais de Syracuse nesta universidade.A principal vantagem dessa técnica em relação a equipamentos comerciais ou personalizados para estiramento celular é que, em um único sistema polimérico, somos capazes de aplicar uma grande variedade de deformações complexas às células. Meu nome é Jay Henderson. Sou professor assistente de Engenharia Biomédica e Química e membro do Instituto de Biomateriais de Syracuse.Este método pode ajudar a responder pergunt

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Bioengineering

Bioengenharia

Neste protocolo, demonstramos a fabricação de uma matriz microactuator de posts verticalmente deslocadas em que a tecnologia é baseada, e como essa tecnologia base pode ser modificado para conduzir alto rendimento de cultura de células mecanicamente dinâmica em ambos cultura bidimensional e tridimensional paradigmas.

Plataformas microfabricated para cultura de células mecanicamente dinâmico

Técnicas simples são descritos para a produção rápida de microfabricated sistemas de cultura neural usando um dispositivo de microespelhos digitais para litografia dinâmica máscara de projeção em substratos de cultura de células regulares. Estes sistemas cultura pode ser mais representativo da arquitectura biológica natural, e as técnicas descritas podem ser adaptadas para inúmeras aplicações.

Fabricação de hidrogéis micropatterned para Sistemas de Cultura Neural usando fotolitografia Projeção Dinâmica Máscara

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Estabelecendo uma cultura tridimensional de células gliais derivadas do cérebro de rato

Andaimes capazes de se encaixar em defeitos ósseos craniomaxilofaciais (CMF) enquanto exibem osteocondutividade e bioatividade são de interesse. Este protocolo descreve a preparação de um andaime de memória de forma baseado em diacrilato de policaprolactona (PCL-DA) usando um método de lixiviação de partículas por fundição por solvente (SCPL) empregando um molde de sal fundido e aplicação de um revestimento de polidopamina bioativo.

Fabricação de uma baseada em PCL Bioativos, &quot;Self-fitting&quot; Memória de Forma Polymer Andaime

Os andaimes para engenharia de tecidos precisam recapitular o complexo microambiente bioquímico e biofísico do nicho celular. Aqui, mostramos o uso de fibras de complexação de polieletrólitos interfaciais como uma plataforma para criar andaimes poliméricos compostos e multicomponentes com liberação bioquímica sustentada.

Andaimes de mistura de fibras Interfacial polieletrólito para lançamento Temporalmente controlada de biomoléculas

Demonstramos a preparação de elastômeros de cristal líquido (LCEs) à base de siloxano e epóxi e nanocompósitos LCE. Os LCEs são caracterizados em relação à deformação reversível, ordenação de cristal líquido e rigidez. Como uma aplicação potencial, demonstramos seu uso como substratos responsivos à forma em um dispositivo personalizado para cultura de células ativas.

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Formação Light-mediada e padronização de hidrogéis para aplicações de cultura celular

Diferentes métodos para manipular a arquitetura tridimensional em hidrogel à base de proteínas são avaliados aqui com respeito a propriedades do material. As redes se são acrescidas com um peptídeo de célula-adesivo, e sua viabilidade na cultura de pilha é avaliada usando duas linhas de células de modelo diferente.

Fácil manipulação das arquiteturas em hidrogel à base de proteínas para aplicações de cultura de células

Aqui apresentamos um método rápido, fácil e baixo custo para a fabricação de moldes de polidimetilsiloxano personalizado que podem ser usados para a produção de tecidos de engenharia baseada em hidrogel com geometrias complexas. Adicionalmente descrevemos os resultados de avaliações mecânicas e histológicos realizados na engenharia tecidos cardíacos produzidos utilizando esta técnica.

Custom Engineered moldes de cultura de tecidos de Masters gravados a Laser

Minimizar a variabilidade na fração de partículas dentro de andaimes granulares facilita a experimentação reprodutível. Este trabalho descreve métodos para a geração de andaimes granulares com frações de partículas controladas para aplicações de engenharia de tecidos in vitro .

Controlando a Fração de Partículas em Andaimes de Partículas Microporosas Recozidos para Cultura de Células 3D

A impressão 3D em escala micrométrica permite a prototipagem rápida de dispositivos poliméricos para culturas de células neuronais. Como prova de princípio, as conexões estruturais entre os neurônios foram restringidas pela criação de barreiras e canais que influenciam o crescimento dos neuritos, enquanto as consequências funcionais de tal manipulação foram observadas pela eletrofisiologia extracelular.

Polimerização de dois fótons Impressão 3D de dispositivos de cultura de células neuronais em microescala

Aprenda a desenvolver substratos de cultura celular com polímeros de memória de forma que alteram a topografia durante a incubação. Esta técnica inovadora permite estudar mudanças dinâmicas no comportamento celular.

Forma Polímeros Memória da Cultura célula ativa

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