Name: Ensaio esferóide para TGF-β Medida induzida Invasion (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 18 s
Description: Aprenda a medir a invasão induzida por TGF-β em esferoides de células MCF10A em matriz de colágeno 3D. Este método quantitativo permite avaliar moduladores da via de invasão em câncer de mama.

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Somos gratos a Ken Iwata (OSI Pharmaceuticals, New York, EUA) para reagentes e Miller Fred (Barbara Ann Karmanos Cancer Intitute, Detroit, EUA) para as linhas de celular.

1. Preparação da solução Methocel (500 mL) <ol><li> Autoclave g 6 de metilcelulose em uma garrafa de 500 ml contendo um agitador magnético. </li><li> Dissolver a metilcelulose em 250 ml de DMEM/F12 pré-aquecido sem soro (60 ° C) por 20 min. </li><li> Adicione 250 ml de DMEM/F12 (RT), contendo soro de cavalo 10%. Misturassem durante a noite (4 ° C). </li><li> Clara a solução por centrifugação (5000g, 2h, 4 ° C). </li><li> Tome a solução clara e altamente viscoso para um novo tubo (cerca de 90-95% da solução-mãe). </li><li> Armazenar a 4 ° C até o uso. </li></ol> 2. Cultura esferóide <ol><li> Prepare uma solução de 20% Methocel (10 ml e 40 Methocel meio de crescimento ml). </li><li> Lave as células duas vezes com PBS, adicionar 0,1% de tripsina e células incubar a 37 ° C </li><li> Ressuspender as células em meio de crescimento e contagem das células. </li><li> Prepare uma suspensão de 10 000 células por ml em Methocel 20%. </li><li> Adicione a suspensão de células para o fundo s 96 bem rodadaplacas USPENSÃO (100 l por poço). </li><li> No dia seguinte, verificar a formação de esferóides nas placas de suspensão. Esferóides estará pronto para uso após 1-3 dias. </li></ol> 3. Preparação de colágeno <ol><li> Prepare uma solução sobre o gelo, de 8 de colágeno ml, 1 ml PBS 10x, 1 ml NaOH 0,1 N e 3 gotas 0,1 N HCl. Verifique se o pH é de 7,4 por manchar um pouco da solução em tiras indicador de pH. Ajustar o pH se fora do intervalo. </li><li> Adicionar 50 ml de solução de colágeno neutralizado nos poços de uma placa de 96 poços </li><li> Incubar a 37 ° C até que o colágeno é solidificada (90 min). </li><li> Prepare-Methocel colágeno ligante soluções no gelo: para cada ligante parte 1 de pipeta de solução de colágeno. Adicionar 20 ml por ng de colágeno TGF-β. Após a diluição com Methocel e difusão sobre as diferentes camadas, a concentração final de TGF-β será de 5 ng / ml Mix em vortex. Adicionar 1 parte de Methocel solução. Misturar em vortex. </li></ol> 4. Esferóide incorporarding <ol><li> Coloque uma ponta de 200 mL, que tem cerca de 5 mm da ponta cortada, em uma pipeta de 200 mL. Sugar um esferóide com a pipeta e cuidadosamente dispensar o meio em um prato vazio. Observe se o esferóide fica dentro da ponta. O esferóide é visível como um ponto branco. Sem soltar o êmbolo, sugar até 100 mistura de colágeno Methocel-L e dispensar o esferóide na mistura de colágeno em colágeno revestido-96 também. Faça isso por 12 esferóides para cada condição. </li><li> Deixe colágeno solidificar pelo menos 30 minutos a 37 ° C </li><li> Remover bolhas de ar com uma ponta de 200 mL. </li><li> Adicionar 50 ul de meio com soro 1,6% e inibidores dissolvido em DMSO. Para SB-431542 adicione 4 ml de solução estoque (10 mM) a 1 ml de meio. Depois de difusão, a concentração final do inibidor será de 10 mM. TGF-β e inibidores vai manter o curso do experimento. Tirar fotos dos esferóides sob o microscópio usando aumento de 40 vezes. </li><li> Depois de 48h de estimulação com TGF-β e / ou inibidores, tirar fotos dos esferóides sob o microscópio usando aumento de 40 vezes. </li><li> Medir a área dos esferóides invadindo após 2 dias e subtrair a área inicial. Medir a área de um esferóide: imagem do Aberto do esferóide em Adobe Photoshop Extended (figura 2A) e selecione a ferramenta de seleção rápida (figura 2B). O ponteiro do mouse se transforma em um círculo com um 'plus' (+) sinal (figura 2C). Enquanto arrasta o cursor sobre o esferóide, Photoshop irá reconhecer as fronteiras do esferóide. Se uma área fora do esferóide é selecionada, esta região pode ser excluído da seleção pressionando a tecla Alt ou usando a ferramenta de seleção negativa que é indicado por um sinal - na barra de ferramentas (). O cursor muda para um círculo com um "menos" (-) sinal e arrastando o cursor sobre a área selecionada erroneamente, esta área é removida da seleção (figura 2D). Se necessário, várias regiões podem ser selecionados pressionando o Shift botão. Para trabalhar com mais precisão, o tamanho do ponteiro do mouse pode ser ajustada alterando o diâmetro da escova na barra de ferramentas (Figura 2E). Quando o esferóide todo é selecionada, a área da seleção é calculada através da análise MEDIDA na barra de menu ou pressionando Ctrl + Shift + M (Figura 2F). A janela de gravação de medição aparecerá mostrando o nome do arquivo e da área da seleção em pixels, assim como outros dados (figura 2G). Se várias seleções são medidos, a primeira linha mostra a soma de todas as áreas. As medições das seleções individuais são apresentados nas linhas abaixo. Os dados de todas as medições podem ser exportados para um arquivo de texto e aberto em Excel. </li></ol> 5. Resultados representativos: Um exemplo do ensaio esferóide com MCF10A1 (M1), as células epiteliais mamárias normais, H-RAS transformou MCF10AneoT (M2) e M2 células derivadas MCF10CA1a (M4) é dada na Figura 3. Células M1 apresentaram apenas invasão fracos semestimulação, mas invadiu significativamente melhor após estimulação por TGF-β. Em contraste, a RAS-transformado M1-M2 derivados já invadiu de forma eficiente, sem adição de estímulos, e isso aumentou ainda mais vezes 4-5 sobre TGF-β tratamento. Células M4 apresentou o maior invasão, com e sem TGF-β disso. Em seguida, examinamos se poderíamos interferir com TGF-β induzida por invasão neste modelo esferóide uso de inibidores químicos. Para isso, usou SB-431542, um análogo de ATP e inibidor seletivo da atividade da quinase de TβRI, bem como ativina tipo IB receptor (ActRIB) e activina receptor-like kinase (ALK) 7 12. Como esperado, SB-431542 inibiu TGF-β induzida por invasão de M1, M2 e M4 células (Fig. 4), indicando que a invasão TGF-β-induzida é TβRI kinase-dependente. Além disso, a invasão dos esferóides basal também foi fortemente inibida, sugerindo que a invasão basal também é deindependentes em TGF-β. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3337/3337fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura Fluxograma 1. Do ensaio 3D esferóide. Primeiro, as células são banhados sob condições não-aderentes em placas em forma de u suspensões. Células aggregrate em esferóides multcellular e pode ser incorporado em uma matriz de colágeno. Para esta matriz de colágeno, que são capazes de invadir. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3337/3337fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Quantificação da área do esferóides usando o Adobe Photoshop Extended. (A) A imagem do esferóide é aberto no Adobe Photoshop Extendend Selection (B) da ferramenta de selecção rápida (C) Arrastar o cursor sobre o esferóide para selecionar a área da remoção (D) esferóide de uma área wongly incluído usando a negativos de selecção rápida ferramenta de ajuste (E) do tamanho do pincel da ferramenta de seleção rápida de forma mais precisa selecionar a área (F) Selecção domedição de comando para gravar (G) Exemplo de um registro de medição. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3337/3337fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. TGF-β induzida por invasão de esferóides de MCF10A1 espontaneamente imortalizado (M1) (A), RAS-transformado MCF10AneoT (M2 (B) e seus derivados MCF10CA1a metastático (M4) (C). M1, M2 e M4 esferóides embutidas em colágeno foram tratados com 5ng/ml de TGF-β por 48h, conforme indicado. AC Representante imagens tomadas no dia da incorporação e dois dias depois. D invasão relativa diferença foi quantificada como área no dia 2 de menos dia 0. Os resultados são expressos como média ± sd Adaptado de 13. <img alt="Figura 4a" src="/files/ftp_upload/3337/3337fig4a.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4a"> <img alt="Figura 4b" src="/files/ftp_upload/3337/3337fig4b.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4b"> Figura 4. Invasão esferóide Basal e TGF-β induzida é inibida by SB-431542. Esferóides M1, M2 e M4 foram incorporados em colágeno e tratados com TGF-β 5ng/ml e / ou 10 mM SB-431542, conforme indicado. Imagens representativas tomada após dois dias (A). Invasão relativa diferença foi quantificada como área no dia 2 de menos dia 0 (B). Os resultados são expressos como média ± sd Adaptado de 13.

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</ol>

Não há conflitos de interesse.

Nós estabelecemos um modelo esferóide em que MCF10A1 células e seus derivados malignos invadem em uma matriz de colágeno de uma forma TGF-β-dependente. Primeiro, esferóides são formados em placas redondas de 96 poços de fundo de suspensão na presença de metilcelulose. Naturalmente, também em forma de U poli-HEMA placas revestidas podem ser usados ​​para esta finalidade. Metilcelulose é absolutamente necessário nesta etapa, já que as células morrerão na ausência de metilcelulose. TGF-β é adicionado diretamente à mistura ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comments (opcional) </td></tr><tr><td> Metil celulose </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M0512 </td><td></td></tr><tr><td> PureCol </td><td> Avançados Biomatrix </td><td> 5005-B </td><td></td></tr><tr><td> indicador de pH tiras </td><td> Merck </td><td> 9533 </td><td></td></tr><tr><td> De 96 poços de suspensão placas </td><td> Greiner Bio-one </td><td> 650 185 </td><td></td></tr><tr><td> De 96 poços de adesão TC placas </td><td> Greiner Bio-one </td><td> 655 180 </td><td></td></tr></tbody></table>

ensaio esferóide para tgf-β medida induzida invasion

Spheroid Assay to Measure TGF-&#946;-induced Invasion

TGF-β tem papéis opostos na progressão do câncer de mama, agindo como um supressor de tumor na fase inicial, mas estimulando a invasão e metástase na tarde 1,2 palco. Além disso, o TGF-β é freqüentemente overexpressed no câncer de mama e sua expressão se correlaciona com o prognóstico pobre e metástases 3,4. Os mecanismos pelos quais TGF-β induz a invasão não são bem compreendidos. TGF-β provoca suas reações celulares via TGF-β tipo II (TβRII) e eu tipo (TβRI) receptores. TGF-β sobre induzida por formação heteromeric complexo, TβRII fosforila o TβRI. O TβRI ativada inicia a sua via de sinalização intracelular canônica pela Smads receptor fosforilar (R-Smads), ou seja Smad2 e Smad3. Estes ativados R-Smads formam complexos com heteromeric Smad4, que se acumulam no núcleo e regulam a transcrição de genes-alvo 5. Além do anteriormente dvia Smad escribed, os resultados receptor de ativação na ativação de diversas outras organizações não-Smad vias de sinalização, por exemplo Mitógeno proteína quinase ativada (MAPK) Vias 6. Para estudar o papel da TGF-β em diferentes estágios do câncer de mama, fizemos uso do sistema de célula MCF10A. Este sistema é composto de células espontaneamente imortalizado MCF10A1 (M1) de mama epiteliais 7, o H-RAS transformou M1 derivados MCF10AneoT (M2), que produz lesões pré-malignas em camundongos 8, eo MCF10CA1a M2 derivados (M4), que foi estabelecida a partir de xenoenxertos M2 e os formulários de alto grau de carcinomas com a capacidade de metástase para o pulmão 9. Esta série MCF10A oferece a possibilidade de estudar as respostas de células com diferentes graus de malignidade que não são influenciados por uma base genética diferente. Para a análise de TGF-β induzida por invasão, geramos homotypic MCF10A esferóide celular embe culturasdded em uma matriz de colágeno 3D in vitro (Fig. 1). Tais modelos se assemelham tumores humanos in vivo, estabelecendo um gradiente de oxigênio e nutrientes, resultando em células ativas e invasiva sobre as células fora e quiescente ou mesmo necrose no interior dos 10 esferóide. Esferóide ensaios com base também foram mostrados para melhor recapitular resistência às drogas do que as culturas em monocamada 11. Este sistema MCF10 modelo 3D permite estudar o impacto do TGF-β sinalização nas propriedades invasivas das células de mama em estágios diferentes de malignidade.

Um ensaio para medir quantitativamente Transforming Growth Factor (TGF)-β induzida por invasão em gel 3-dimensional colágeno é descrito. Este ensaio se aproveita da série MCF10A de linhas de células, que representam diferentes fases de desenvolvimento de câncer de mama. Este método pode ser adotado para ser usado com outras linhagens de células e pode ser usado para investigar outras possíveis ativadores ou inibidores de invasão.

Ensaio esferóide para TGF-β Medida induzida Invasion

O TGF-&beta; possui papéis opostos na progressão do câncer de mama, atuando como um supressor tumoral na fase inicial, mas estimulando a invasão e a metástase...

O objetivo geral do experimento a seguir é utilizar uma medida para avaliar o efeito de potenciais reguladores da invasão induzida por TGF beta em um ambiente tridimensional. Isso é alcançado primeiramente pela formação de esferoides das células. Os EPH são então incorporados em colágeno, o que fornece um ambiente 3D.Em seguida, quantifica-se a área invasiva. Para determinar o efeito do tratamento na invasão induzida por TGF beta, os resultados demonstram que moduladores da via de sinalização TGF-beta afetam a propriedade invasiva dos esteroides em uma matriz tridimensional de colágeno. A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como o ensaio de arranhão, é que ela recapitula melhor o ambiente tridimensional.Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais nas áreas de T meter, como a identificação de novos genes envolvidos na invasão induzida por teacher beta. Para preparar a solução de metilcelulose para o ensaio de invasão induzida por TGF beta, comece por autoclavar seis gramas de metilcelulose em um frasco de 500 mililitros contendo um agitador magnético. Dissolva a metilcelulose em 250 mililitros de D-M-E-M-F 12 pré-aquecido sem soro durante 20 minutos, adicione 250 mililitros de D-M-E-M-F 12 à temperatura ambiente contendo 10% de soro de cavalo e misture durante a noite a quatro graus Celsius. No dia seguinte, clarifique a solução por centrifugação a 5.000 ×g durante duas horas a quatro graus Celsius.Transfira a solução clara e altamente viscosa para um novo tubo e armazene a quatro graus Celsius até o uso para cultura de phe. Prepare uma solução de células metílicas a 20% utilizando 10 mililitros do estoque de células metílicas preparado e 40 mililitros do meio de crescimento. Lave as células MCF 10 A duas vezes com PBS.Adicione 0,1% de tripsina e incube as células a 37 graus Celsius até que todas as células estejam destacadas. Ressuspenda as células em 10 mililitros de meio de crescimento e conte as células utilizando um contador de células. Prepare uma suspensão de 10.000 células por mililitro em célula a 20% de metil.Para cada condição de teste, adicione 100 microlitros da suspensão celular a 12 poços de uma placa de suspensão redonda de 96 poços. Incube as células durante a noite em um incubador umidificado a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. No dia seguinte, verifique a formação de esferoides.Os esferoides estarão prontos para uso em um a três dias. Prepare em gelo uma solução de oito mililitros de colágeno, um mililitro de PBS 10X, um mililitro de hidróxido de sódio 0,1 normal, e três gotas de ácido clorídrico 0,1 normal. Verifique se o pH da solução é 7,4 aplicando-a em tiras indicadoras de pH.Ajuste o pH se estiver fora da faixa. Adicione 50 microlitros de solução de colágeno neutralizada aos poços de uma placa de 96 poços e incube a 37 graus Celsius por cerca de 90 minutos ou até que o colágeno esteja solidificado. Para cada ligante a ser testado, prepare uma solução de ligante de colágeno metilcelulose em gelo.Inicie com um mililitro de solução de colágeno por tratamento e adicione 20 nanogramas de TGF beta para obter uma concentração final de cinco nanogramas por mililitro, misturando em vórtex. Em seguida, adicione um mililitro de solução de metilcelulose para um volume final de dois mililitros e misture em vórtex. Para embutir um esteroide, utilize uma ponteira de pipeta de 200 microlitros, cuja ponta teve cortados cinco milímetros ou mais, em uma pipeta de 200 microlitros.Em seguida, aspire um sferoide S com a pipeta. Dispense cuidadosamente o meio em uma placa vazia, garantindo que o sferoide S permaneça dentro da ponteira. Não solte o êmbolo.Aspire 100 microlitros da mistura de células com colágeno metílico e distribua a mistura de colágeno com esferoides S em um poço revestido com colágeno de uma placa de 96 poços; preencha 12 poços para cada condição. Deixe o colágeno solidificar por pelo menos 30 minutos a 37 graus Celsius e remova as bolhas de ar com uma ponteira de 200 microlitros.Prepare uma solução de 40 micromolar do inibidor TGF beta SB 4 31 542 adicionando quatro microlitros da solução estoque de SB 4 31 542 a um mililitro de D-M-E-M-F 12 contendo 1,6% de soro de cavalo. Adicione 50 microlitros do meio com inibidor a cada poço após a difusão. A concentração final do inibidor será de 10 micromolar.Fotografe o esteroide sob o microscópio utilizando ampliação de 40 x, depois incube em incubadora umidificada a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. Após incubação de dois dias, tire fotos novamente e meça a área do esteroide invasivo abrindo uma imagem do esferoide no Adobe Photoshop. Expanda e selecione a ferramenta de seleção rápida.O ponteiro do mouse mudará para um círculo com um sinal de adição ao arrastar o cursor sobre o esferoide. O software reconhecerá as bordas do esferoide. Se uma área fora do esferoide for selecionada, exclua a área pressionando a tecla alt ou usando a ferramenta de seleção negativa, que é um sinal de menos na barra de ferramentas.Arraste o cursor sobre a área selecionada incorretamente e o software a removerá da seleção. Se uma área dentro do esferoide for desmarcada, ela poderá ser incluída novamente arrastando enquanto pressiona a tecla shift. Para trabalhar com maior precisão, ajuste o tamanho do ponteiro do mouse alterando o diâmetro do pincel na barra de ferramentas.Para calcular a área de todas as seleções ativas, escolha análise medir na barra de menu. Uma janela de registro de medição aparecerá mostrando o nome do arquivo e a área da seleção em pixels. Se múltiplas seleções forem medidas dentro de um único esferoide, a primeira linha mostrará a soma de todas as áreas e as linhas abaixo.Ele listará os valores das seleções individuais. Exporte os dados para um arquivo de texto e abra-o no Excel. Um exemplo do ensaio de esferoides S com células epiteliais mamárias normais MCF 10 A um, células MCF 10 A neo T transformadas e células derivadas M dois MCF 10 CA um A é mostrado aqui.As células M1 mostraram apenas fraca invasão sem estimulação, mas invadiram significativamente melhor após estimulação por TGF beta. Em contraste, o derivado M2 transformado por RA invadiu eficientemente sem a adição de estímulos, e isso foi ainda aumentado de quatro a cinco vezes. Após o tratamento com TGF beta, as células M4 mostraram a maior invasão tanto na ausência quanto na presença de TGF beta.Uma representação gráfica dos resultados deste experimento foi obtida utilizando o Photoshop e é mostrada aqui neste exemplo, SB 4 31 5 42, um análogo do ATP e inibidor seletivo da atividade quinase do receptor tipo um da TGF-beta, bem como ativo no receptor tipo um B e na quinase tipo receptor sete, foi adicionado aos cultivos celulares; SB 4 31 5 42 inibiu potencialmente a invasão induzida por TGF-beta nas células M1, M2 e M4, indicando que a invasão induzida por TGF-beta é dependente da quinase do receptor tipo um da TGF-beta. Além disso, a invasão basal do PHE foi fortemente inibida. Uma representação gráfica dos resultados deste experimento foi novamente criada utilizando o Photoshop e é mostrada aqui.Após este procedimento, outros métodos como isolamento de RNA ou isolamento de proteínas podem ser realizados para responder perguntas adicionais, como quais genes são expressos ou quais proteínas são expressas. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como identificar novos moduladores da invasão induzida por tavita.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Fonte: Guyon, J., et al. Um modelo esferóide 3D para glioblastoma. J. Vis. Exp. (2020)O vídeo demonstra a geração de um modelo esferóide tridimensional de invasão de células tumorais. Os esferóides são formados a partir de células tumorais cerebrais humanas e incorporados em uma matriz de colágeno. As células tumorais na periferia esferóide adotam um fenótipo invasivo, secretando proteases para degradar o colágeno e avançando para invadir a matriz circundante.

Geração de um modelo esferóide tridimensional de invasão de células tumorais

Invasão de células do cancro do ovário no revestimento mesotelial do peritoneu é um processo dinâmico ao longo do tempo. Utilizando um analisador de tempo real, a capacidade invasiva das células de câncer de ovário em uma célula modelo de co-cultura esferóide-mesoteliais podem ser quantificados durante períodos de tempo prolongados, fornecendo insights sobre os fatores que regulam o processo metastático.

Avaliação do cancro do ovário esferóide Apego e invasão de células mesoteliais em Tempo real

A invasão dos tecidos normais circundantes é uma característica definidora dos tumores malignos. Fornecemos aqui um ensaio simples e semi-automatizado de microplacas de invasão em uma biomatriz 3D natural que foi exemplificada com vários modelos de cânceres humanos avançados.

Tridimensional (3D) Tumor Esferóide Invasion Assay

Este método avalia a invasão de células cancerígenas de esferóides em uma matriz 3D circundante.  Os esferoides são gerados através do método de cultura de gota suspensa e, em seguida, incorporados em uma matriz composta de materiais de membrana basal e colágeno tipo I.  A invasão dos esferóides é posteriormente monitorada.

A Cancer Cell Spheroid Ensaio para avaliar a invasão em um ambiente 3D

Aqui, descrevemos um protocolo rápido e flexível para a formação de esferoides de células 3D por meio da agregação celular. Isso é facilmente adaptado a vários tipos de células e é adequado para uso em uma variedade de aplicações, incluindo ensaios de migração celular, invasão ou anoikis, e para imagens e quantificação de interações célula-matriz.

Um Método celular agregação eficiente e flexível para 3D Spheroid Produção

Uma placa de imagem baseada em HMCA é apresentada para o desempenho do ensaio de invasão. Este prato facilita a formação de esferoides tridimensional (3D) tumor e a medição da invasão de células de câncer na matriz extracelular (ECM). A quantificação de ensaio de invasão é conseguida análise semiautomático.

Análise de invasão de células de câncer e usando a matriz de hidrogel Microcâmara (HMCA) de despistagem de drogas antimetastática-baseado placas

O microambiente tumoral é uma parte essencial do crescimento e invasão do câncer. Para imitar a progressão da carcinoma, uma matriz humana biologicamente relevante é necessária. Este protocolo introduz uma melhoria para in vitro o ensaio tridimensional da invasão do esferóide aplicando uma matriz leiomyoma-baseada humana. O protocolo também introduz uma análise de invasão de células baseada em computador.

Matriz tumor-baseada inteiramente humana no ensaio tridimensional da invasão de spheroid

O objetivo deste protocolo é estabelecer um modelo in vitro 3D para estudar a diferenciação de fibroblastos Cancer-associados (CAFs) em um tumor a granel-como o ambiente, que pode ser abordado em diferentes sistemas de análise, tais como a imunofluorescência, transcricional análise e imagens de células de vida.

Um modelo de spheroid 3D como um sistema mais fisiológico para fibroblastos associados ao cancro diferenciação e invasão in vitro estudos

A abordagem apresentada avalia simultaneamente a invasão de células cancerígenas em ensaios esferoides 3D e citotoxicidade de células T. Esferoides são gerados em um elenco multi-microwell livre de andaimes. A cocultura e a incorporação na matriz de colágeno tipo I são realizadas dentro do mesmo dispositivo que permite monitorar a invasão de células cancerígenas e a citotoxicidade mediada por células T.

Monitoramento da invasão celular cancerígena e citotoxicidade de células T na cultura 3D

A invasão é um fenômeno biológico importante no desenvolvimento e progressão do câncer. Esse processo é influenciado por células não neoplásicas e componentes do microambiente tumoral. O objetivo deste estudo é descrever um método alternativo para análise da invasão de células tumorais in vitro usando culturas tridimensionais (3D).

Estratégia alternativa para analisar a invasão celular in vitro de culturas 3D

Aqui, apresentamos um protocolo para investigar a interação de macrófagos primários derivados de monócitos humanos com um esferóide tumoral em uma matriz tridimensional (3D) de colágeno I, com a possibilidade de comparar o impacto das propriedades solúveis e físicas do microambiente na invasão celular.

Um ensaio de co-invasão de esferoides macrófagos-tumores

Aprenda a medir a invasão induzida por TGF-β em esferoides de células MCF10A em matriz de colágeno 3D. Este método quantitativo permite avaliar moduladores da via de invasão em câncer de mama.

Ensaio esferóide para TGF-β Medida induzida Invasion

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