-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PT

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pt_BR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Eletroporação de Mesênquima Craniofacial
Eletroporação de Mesênquima Craniofacial
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Electroporation of Craniofacial Mesenchyme

Eletroporação de Mesênquima Craniofacial

Full Text
12,568 Views
07:23 min
November 28, 2011

DOI: 10.3791/3381-v

Jacqueline M. Tabler1, Karen J. Liu1

1Department of Craniofacial Development,King's College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study explores the use of electroporation to introduce charged macromolecules into craniofacial mesenchyme during embryonic development. By employing this technique, researchers aim to bypass early embryonic effects and efficiently test candidate molecules in vivo.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Developmental Biology
  • Electrophysiology

Background

  • Craniofacial cartilages develop in close contact with surrounding tissues.
  • Manipulating these tissues in live animals presents significant challenges.
  • Electroporation offers a method to deliver molecular tools effectively.
  • This approach allows for temporal and spatial control of molecular introduction.

Purpose of Study

  • To electrooperate charged macromolecules into craniofacial mesenchyme.
  • To visualize electroporated tissues using fluorescence microscopy.
  • To analyze changes in craniofacial tissues in vivo.

Methods Used

  • Positioning an anesthetized stage 28 embryo in an electroporation chamber.
  • Microinjecting a solution containing charged macromolecules into the craniofacial mesenchyme.
  • Applying an electric current to introduce the macromolecules into cells.
  • Visualizing the electroporated tissue using fluorescence microscopy.

Main Results

  • Successful electroporation of tadpoles demonstrated by fluorescence microscopy.
  • Fluorescent molecules allowed for easy screening of electroporated embryos.
  • Changes in craniofacial tissues were observed at various developmental stages.
  • Electroporation provided better control compared to traditional methods.

Conclusions

  • Electroporation is an effective method for manipulating craniofacial development.
  • This technique allows for the tracking of electro cells and molecular requirements.
  • Combining electroporation with live imaging can enhance studies on gene function.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of using electroporation?
Electroporation offers tissue and temporal control of molecular tools, allowing for precise manipulation of craniofacial development.
How are the charged macromolecules introduced into the embryo?
The macromolecules are microinjected into the craniofacial mesenchyme, followed by the application of an electric current to facilitate their uptake by the cells.
What techniques are used to visualize the results?
Fluorescence microscopy is used to visualize the electroporated tissues and track changes in craniofacial structures.
What developmental stages were analyzed in this study?
The study analyzed tadpoles at stages 30, 34, and 44 after electroporation.
Can this method be applied to other areas of research?
Yes, the electroporation technique can potentially be adapted for various developmental biology studies beyond craniofacial research.
What type of embryos were used in this study?
Stage 28 Xenopus laevis embryos were used for the electroporation procedure.

Cartilagens craniofacial desenvolver em estreito contato com outros tecidos e são difíceis de manipular em animais vivos. Estamos usando eletroporação para entregar ferramentas moleculares durante o crescimento do esqueleto craniofacial, enquanto ignorando cedo efeitos embrionárias. Esta abordagem irá permitir-nos testar de forma eficiente as moléculas de candidato

O objetivo geral deste procedimento é eletrooperar macromoléculas carregadas no mesênquima facial craniano. Isso é feito posicionando primeiro um embrião anestesiado no estágio 28 dentro da câmara de eletroporação. O próximo passo é microinjetar a solução contendo macromoléculas carregadas no mesênquima craniofacial C.

Isso é rapidamente seguido pela aplicação de uma corrente elétrica, introduzindo assim os nucleotídeos de carga nas células. A etapa final do procedimento é visualizar o tecido eletroporado por microscopia de fluorescência. Em última análise, podem ser obtidos resultados mostrando alterações nos tecidos faciais cranianos.

Esses resultados podem ser analisados in vivo ou em tecido fixo usando fluorescência, microscopia ou imuno-histoquímica. A principal vantagem da eletroporação sobre os métodos existentes, como microinjeção e mutação, é o controle tecidual e temporal de nossas ferramentas moleculares, demonstrando que nosso procedimento hoje será Jackie Tabler, um pós-doutorado em meu laboratório. O par de eletrodos em forma de L necessários para este procedimento é feito de fio de tungstênio de alta pureza de 0,4 milímetro para cada eletrodo cortado primeiro oito centímetros do fio.

Em seguida, o uso de massa como a aderência azul afeta uma seringa de um mililitro no ponto médio do fio de tungstênio, deixando quatro centímetros de fio expostos na ponta da seringa. Dobre a ponta em forma de L a um centímetro da extremidade. Apare a ponta de forma que a ponta meça 0,5 centímetros de comprimento.

Esta dica é o terminal do eletrodo passar o excesso de fio de tungstênio paralelo à seringa. Ele será usado para conectar o gerador de pulso do eletrodo após a fabricação do segundo eletrodo. Prenda o par de eletrodos um ao outro usando fita adesiva para que o terminal do eletrodo eu corra em paralelo, com um centímetro de distância.

Por fim, conecte os eletrodos a um gerador de pulso de onda quadrada por meio de cabos CC. Para preparar a câmara de eletroporação personalizada, forre o fundo de um prato de 90 milímetros com cerca de cinco milímetros de argila de modelagem de cena de gesso não tóxica. Encha o prato com meio de eletroporação imergindo a cena de gesso.

Em seguida, use a pinça de relojoeiro número cinco para esculpir um poço em forma de T na cena de gesso para formar a eletroporação. Bem, o lado longo do poço deve medir cerca de dois milímetros por dois milímetros por 10 milímetros, e o lado curto deve ser de dois milímetros por dois milímetros por cinco milímetros. As micropipetas para este procedimento são feitas de capilares de vidro de silicato.

Use um extrator de agulha para preparar micropipetas com um cone de oito a 12 milímetros de comprimento e uma ponta fina, esmague a ponta a cerca de dois milímetros da ponta usando uma pinça, criando uma quebra irregular para configurar a micropipeta. Primeiro, preencha-o com cerca de um microlitro de solução de injeção, que nesta demonstração contém oligonucleotídeos marcados com fluorescência. Em seguida, prenda a micropipeta em um micro manipulador, incline a micropipeta a 50 graus do tampo da mesa.

Defina a pressão de injeção em 20 PSI e calibre a micropipeta para injetar 30 litros por pulso. Em preparação para a eletroporação, anestesiar uma larva de xeno estágio 28 incubando-a por cinco minutos. Em meios de eletroporação, que são meios anfíbios normais contendo 0,1% de benzocaína, transfira o girino anestesiado para a câmara de eletroporação.

Isso é preenchido com meios de eletroporação. A parte mais complicada do procedimento é inserir o micro animal de estimação no girino. Portanto, para garantir o sucesso, você deve prender o embrião com muita força e, em seguida, aplicar rapidamente a corrente após a microinjeção.

Posicione o embrião dentro do poço longo de modo que a cabeça fique na junção T. Com o lado dorsal para baixo e o lado ventral exposto, a cabeça deve ser ligeiramente elevada em comparação com a cauda usando uma pinça, prenda suavemente o girino no poço com a cena de gesso ao redor. É importante proteger o girino para evitar que ele se contorça durante a eletroporação, o que pode resultar em danos graves aos tecidos faciais.

Para iniciar este procedimento, insira a ponta da micropipeta imediatamente posterior à glândula cimentícia e na mecânica facial. Injete 30 nanolitros de solução no mesênquima, retraia a micropipeta. Alinhe rapidamente as pontas dos eletrodos paralelamente à cabeça do embrião e aplique oito pulsos quadrados de 50 milissegundos e 20 milivolts.

Em seguida, retraia os eletrodos usando uma pinça. Solte cuidadosamente o girino do poço. Em seguida, use uma pipeta para transferir o girino para três quartos de nom com 0,025 miligramas por mililitro.

Os girinos de gentamicina podem ser incubados neste meio durante a noite ou mais após 24 horas. Filtre girinos por microscopia fluorescente para eletroporação eficiente. O uso de moléculas fluorescentes permite fácil triagem de embriões eletroporados.

Esta figura mostra um lote típico de girinos eletroporados de oligonucleotídeos de morfonucleotídeo por volta de 1248 e 96 horas após a eletroporação. Nos estágios 30, 34 e 44, respectivamente. Os oligonucleotídeos de morfo fluorescentes podem ser visualizados dentro do meen facial craniano nos estágios 30 e 34.

No estágio 44, a fluorescência pode ser detectada nas cartilagens indicadas pelas pontas das setas brancas. A área altamente autofluorescente é o intestino. Seguindo este procedimento, podemos rastrear a linhagem de células elétricas, bem como os requisitos moleculares para proteínas de interesse.

Essa abordagem pode ser combinada com técnicas de imagem ao vivo para estudar a função do gene ao longo do tempo durante o desenvolvimento craniofacial.

Explore More Videos

Biologia do Desenvolvimento Issue 57 eletroporação craniofacial Xenopus laevis Rã cartilagem mesênquima

Related Videos

Eletroporação única célula in vivo dentro do cérebro intacto desenvolvimento

13:31

Eletroporação única célula in vivo dentro do cérebro intacto desenvolvimento

Related Videos

13.9K Views

Cultura primária e Eletroporação Plasmid do Órgão de Corti murino.

12:29

Cultura primária e Eletroporação Plasmid do Órgão de Corti murino.

Related Videos

26.7K Views

Avaliar Propriedades Sinalização de Ectodérmica Epitélio Durante o Desenvolvimento Craniofacial

09:25

Avaliar Propriedades Sinalização de Ectodérmica Epitélio Durante o Desenvolvimento Craniofacial

Related Videos

9.9K Views

Entrega Gene eficiente em múltiplos territórios CNS Usando In Utero Eletroporação

13:12

Entrega Gene eficiente em múltiplos territórios CNS Usando In Utero Eletroporação

Related Videos

20.6K Views

Estimulação elétrica transcraniana do córtex motor em um rato acordado

06:28

Estimulação elétrica transcraniana do córtex motor em um rato acordado

Related Videos

768 Views

Neonatal Pial Superfície Eletroporação

06:22

Neonatal Pial Superfície Eletroporação

Related Videos

14.4K Views

Cultura da embrionárias mouse cocleares explantes e Gene Transferência de Eletroporação

09:03

Cultura da embrionárias mouse cocleares explantes e Gene Transferência de Eletroporação

Related Videos

13.6K Views

Microinjeção Direcionada e Eletroporação de Organoides Cerebrais de Primatas para Modificação Genética

11:44

Microinjeção Direcionada e Eletroporação de Organoides Cerebrais de Primatas para Modificação Genética

Related Videos

5.2K Views

Modelando Tumores Cerebrais In Vivo Usando a Liberação Eletroporada de DNA Plasmidial Representando Assinaturas de Mutação de Pacientes

04:01

Modelando Tumores Cerebrais In Vivo Usando a Liberação Eletroporada de DNA Plasmidial Representando Assinaturas de Mutação de Pacientes

Related Videos

3.1K Views

Eletroporação In Vivo Combinada e Reinervação de Curto Prazo do Músculo Esquelético do Elevador do Crânio Longo do Auris

04:44

Eletroporação In Vivo Combinada e Reinervação de Curto Prazo do Músculo Esquelético do Elevador do Crânio Longo do Auris

Related Videos

968 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code