Name: A Cre-Lox Abordagem Recombinação P para Detecção de fusão celular In Vivo /em (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 13 s
Description: Aprenda a rastrear fusão celular in vivo usando recombinação Cre-LoxP e imagem de luminescência em camundongos modificados geneticamente. Este método permite detectar eventos de fusão em tempo real.

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Os autores gostariam de agradecer ao Dr. Peiman Hemmati (Departamento de Medicina da Universidade de Wisconsin-Madison) para oferecer generosamente as CTMs H1, e Dr. Hacker Tim, Dr. Gouqing Song e Ms. Jill Koch, da Universidade de Wisconsin Fisiologia Cardiovascular Facilidade núcleo para realização de cirurgias mouse. Este trabalho foi financiado pela National Science Foundation através de uma Bolsa de Investigação Pós-Graduação de Brian Freeman e R21 NIH HL089679.

1. Transfection célula doadora <ol><li> Células-tronco mesenquimais da colheita (MSCs derivadas de células-tronco embrionárias H1 gentilmente doados pelo Dr. Peiman Hematti, alternativamente, qualquer tipo de célula de qualquer espécie a hipótese de fundir in vivo pode ser empregado), quando 70-80% confluente com 1X tripsina (Mediatech, Manassas VA) por 5 min. Inativar tripsina com α-MEM médio completo (livre de antibióticos, Invitrogen, Carlsbad CA) 18. Centrifugar a 300 xg por 5 min. </li><li> Aspirar cuidadosamente o sobrenadante e re-suspensão pellet em 1 ml de 1X PBS e contagem de células usando um hemocitômetro. </li><li> Transferência de 1,5 x 10 6 células para um tubo de centrífuga de 1,5 mL. Centrifugar a 300 xg por 5 min. </li><li> Aspirar cuidadosamente o sobrenadante. Ressuspender pellet em 300 mL de R Buffer (Sistema de Transfection Neon, Invitrogen) e 6 mg (2 mg / 5,0 x 10 5 células) da P231 pCMVe-betaAc-STOP-luc (Addgene, Cambridge, MA). Colocar 3 mL de tampão de E (InvitrOgen) à porta docking eletroporação por protocolo do fabricante (Sistema de Transfection Neon, Invitrogen). </li><li> Transferência de células-plasmídeo solução para a ponta da pipeta de 100 L Neon e electroporate com uma duração de pulso de 20 ms e uma magnitude de 1,5 mil volts. Coloque electroporated células em um tubo cônico de 15 mL contendo 9,7 mL meio α-MEM completo. </li><li> Repita o passo 1,5 e duas vezes mais células transfectadas piscina para produzir um volume total de 10 mL. Adicione o 10 mL de suspensão celular (1,5 x 10 6 células) para um balão contendo 10 mL T175 α-MEM médio completo. Viabilidade celular após a eletroporação é de aproximadamente 30%, para produzir cerca de 4,5 x 10 5 células viáveis ​​por T175. </li><li> Alterar α-MEM completo médio de 24 horas após transfecção. </li><li> Colheita transfectadas células quando 70-80% confluentes (~ 2-3 dias após eletroporação). Realizar contagem de células usando um hemocitômetro e ressuspender as células em uma concentração de 1,0 x 10 6cells/50 mL de α-MEM médio completo. Células minimizar o tempo gasto em suspensão para reduzir a morte das células antes da injeção. </li></ol> 2. Injeção intramiocárdico <ol><li> Induzir a anestesia por isoflurano (Phoenix Pharmaceuticals, Inc., St. Joseph, MO) em camundongos manipulados geneticamente para expressar constitutivamente Cre recombinase em cada célula (B6.C-Tg (CMV-CRE) 1CGN / J, Jackson Laboratory, Bar Harbor, ME). </li><li> Remover os pêlos da região do tórax usando cortar cabelo ou removedor de pêlos químicos. </li><li> Entubar com um cateter de calibre 18 (Becton Dickinson &amp; Co, Franklin Lakes NJ) e colocar no ventilador do mouse no 120-130 respirações por minuto, com um volume de 150 mL acidente vascular cerebral. </li><li> Fazer incisão lateral em todo o quarto espaço intercostal produzindo assim uma toracotomia. </li><li> Visualizando o coração, fazer duas injeções 25 mL de suspensão de células transfectadas com uma seringa de 1 mL (Temuro Medical Corporation, Somerset, NJ) e agulha de calibre 28 (EBICTem Dickinson &amp; Co, Franklin Lakes NJ). Para facilitar a injeção intramiocárdica e evitar danos excessivos ao órgão, dobre a cabeça agulha ~ 90 graus. </li><li> Após a injeção, use suturas absorvíveis (por exemplo, vicryl) para fechar as costelas e as camadas musculares. Sutura de pele fechada com nylon ou seda 4-0. </li><li> Permitir mouse para recuperar da anestesia e extubação. </li><li> Grupos de controle devem incluir ratos Cre recebendo injeções único meio, ratos Cre receber a mesma concentração de células e camundongos untransfected tipo selvagem que receberam células transfectadas (alternativamente, os ratos que receberam células transfectadas Cre não propensas a fusível). </li></ol> 3. Imagem biofotônica <ol><li> De cinco a quinze minutos antes de imagem, por via intraperitoneal (IP) injetar 10 mL por grama de peso do mouse corpo de 15 mg / mL D-luciferina (Caliper Life Sciences, Hopkinton, MA). </li><li> Induzir a anestesia em camundongos através de isoflurano em 4% para a indução de umd 1 - 2% para a manutenção. </li><li> Camundongos lugar supina na caixa de imagem com máscara administração 1 - 2% de isoflurano para anestesia de manutenção (Imaging System Xenogen biofotônica, Hopkinton, MA). Vários ratos podem ser visualizados simultaneamente. Imagem do rato do grupo controle experimental com ratos para facilitar a comparação do sinal luminescente. </li><li> Usando software Vivendo Imagem (Xenogen), definir o tempo de exposição adequado (normalmente 60 segundos, ver Resultados). Definir área de imagem para caber ratos e manter consistente ao longo da área de imagem para evitar alterações na sensibilidade. Definir a altura sujeita a 4,5 cm. </li><li> Adquirir sinal de luminescência intensidade correspondente ao mouse ou ratos dentro do campo de visão e salvar arquivos de imagem não modificado. Imagens processo para remover sinal de fundo correspondente a um controle ou mouse não-manipulado. Valores de intensidade acima do fundo correspondem a células fundidas dentro do animal. Análise de intensidade pode ser realizado utilizando software Vivendo Imagem (Xenogen) ou open source software de análise de imagem. Typically, uma região de interesse (ROI) é selecionado para comparar os dados de intensidade entre os animais e experimentos. </li></ol> 4. Resultados representante Para determinar a sensibilidade do Sistema de Imagem Xenogen biofotônica, uma linha celular que expressa constitutivamente luciferase (231-LUC-D3H1, Xenogen) foi entregue para o miocárdio de ratos C57/Bl6 (Jackson Laboratory). Células foram injetadas em concentrações de 1 x 10 6, 1 x 10 3, ou 1 x 10 1 células. Seis horas após a entrega das células, os camundongos foram injetados intraperitonealmente com a luciferina e fotografada usando o sistema Xenogen. Um sinal específico pode ser detectado com 1.000 células (2 de 6 camundongos com imagens, Figura 2), mas a detecção é mais confiável, com 10.000 células (6 de 6 ratos com imagens). Importante, este estudo também serviu para estabelecer uma correlação aproximada entre o número de células que expressam luciferase e da intensidade do sinal. <p class="jove_content"&gt; Para demonstrar a utilidade do protocolo descrito na detecção e rastreamento de fusão celular, MSCs foram transfectadas com o plasmídeo LoxP-Stop-LoxP-luciferase (Addgene) e entregues para o miocárdio de Cre-expressando camundongos. Aproximadamente uma semana após o parto celular, as cobaias foram primeiro fotografada usando o sistema Xenogen sem D-luciferina injeção. Como esperado, sem o substrato enzimático, nenhum sinal foi detectado intensidade (Figura 3). Em seguida, D-luciferina foi injetada por via intraperitoneal e um sinal correspondente a intensidade luciferase e, portanto, fusão celular foi detectado em duas das quatro camundongos testados. Um sinal semelhante foi detectado uma semana depois (Figura 3), sugerindo produtos MSC-coupled de fusão pode ser mantida in vivo. Neste caso, o estudo foi interrompido para permitir a avaliação de coração e de tecido circundante, mas pode-se imaginar a longo prazo análises e imagens mais freqüentes para acompanhar a manutenção proliferação, umad migração, talvez, de produtos de fusão em camundongos. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3581/3581fig1.jpg" /> Figura 1. Esquemático da técnica para detectar a fusão celular in vivo. Se a fusão entre Cre-expressando células de camundongo e células transplantadas expressando um plasmídeo floxed luciferase ocorre, luciferase será expressa. Luciferase podem ser detectados através da injeção do substrato enzimático, D-luciferina, para o rato e, em seguida, imagens do mouse através de um Sistema de Imagem Xenogen biofotônica (Adaptado de 19) <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3581/3581fig2.jpg" /> Figura 2. Sensibilidade de detecção de luciferase células que expressam no tecido cardíaco com imagens biofotônica. A linha de células que constitutivamente expressa luciferase (231-LUC-D3H1, Xenogen) foi entregue ao espaço intramiocárdico de C57/Bl6 ratos em vários números de células total. Imagens representativas dos camundongos retentes para perceber 1 x 10 6, 1 x 10 3 e 1 x 10 1 células (da esquerda para a direita) são mostrados, a imagem foi conduzida aproximadamente 6 horas após a injeção. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3581/3581fig3.jpg" /> Figura 3. Na quantificação da luminescência Vivo indicativa de fusão celular. MSCs foram transfectadas com o LoxP-Stop-LoxP-luciferase plasmídeo e entregue para o miocárdio de Cre-expressando camundongos. Aproximadamente uma semana e duas semanas após o parto celular, ratos Cre foram fotografadas usando o Sistema de Imagem Xenogen biofotônica para medir a intensidade da luminescência indicativo de fusão celular. (A) Sobreposição de fotografia e intensidade da luminescência de farsa e camundongos 1-4 (esquerda para a direita) dias após o parto 17 células. (B) A intensidade da luminescência de farsa e camundongos 1-4 (esquerda para a direita) dias após o parto 17 células. A região de interesse foi selecionada (amarelo) correspondente ao local da injeção e intensidade levels foram determinados utilizando software ImageJ (fonte livre) 20. (C) A intensidade da luminescência foi normalizado para a mesma região de interesse na farsa do mouse para todas as condições experimentais. Menos uma semana, 3 e 4 ratos mostrou sinal de luminescência positivos sugerindo a fusão espontânea de uma célula do rato e MSC transplantado. O sinal persistiu em mouse de 3 em duas semanas. Para determinar a localização de órgãos específicos do sinal correspondente ao mouse de 3, a cavidade torácica foi exposto e principais órgãos extirpados e imagens. (D) Sobreposição de fotografia e intensidade da luminescência do mouse 3. Localização nota de intensidade de sinal no intestino delgado. (E) A intensidade da luminescência do mouse 3. (F) sobreposição de fotografia e intensidade da luminescência da farsa mouse. (G) A intensidade da luminescência de sham mouse.

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</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O método descrito aqui permite, pela primeira vez, a identificação discreta e análise temporal da fusão celular em organismos, incluindo animais de pequeno porte. A abordagem combina Cre-LoxP recombinação com análise de imagem subseqüentes biofotônica. A abordagem é passível de rastreamento não só a fusão célula-célula, mas também do vírus na célula-fusion e assim pode ser útil para rastrear infecções virais. Análise de imagem é rápida e é possível de várias imagens de pequenos animais simultaneamente. Detecção ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td> Neon Sistema Transfection </td><td> Invitrogen, Carlsbad, CA </td><td> MPK5000 </td><td></td></tr><tr><td> Kit Neon 100 L </td><td> Invitrogen, Carlsbad, CA </td><td> MPK10025 </td><td> Contém R e E do buffer </td></tr><tr><td> a-MEM em pó </td><td> Invitrogen, Carlsbad, CA </td><td> 12000-022 </td><td></td></tr><tr><td> De soro fetal bovino (FBS) </td><td> Hyclone, Logan UT </td><td> SH30070.03 </td><td></td></tr><tr><td> B6.C-Tg (CMV-CRE) 1CGN / J </td><td> Jackson Laboratory, Bar Harbor, ME </td><td> 006054 </td><td></td></tr><tr><td> Tripsina 10X </td><td> Fisher Scientific, Forest Lawn, NJ </td&gt; <td> MT-25-054-Cl </td><td></td></tr><tr><td> L-Glutamina </td><td> Fisher Scientific, Forest Lawn, NJ </td><td> 25030-081 </td><td></td></tr><tr><td> D-Luciferina </td><td> Caliper Life Sciences, Hopkinton, MA </td><td> 122796 </td><td></td></tr><tr><td> Xenogen Imaging System biofotônica </td><td> Caliper Life Sciences, Hopkinton, MA </td><td> Spectrum IVIS </td><td></td></tr><tr><td> Biocarbonate de sódio </td><td> Sigma Aldrich, St. Louis, MO </td><td> S6014-500G </td><td></td></tr><tr><td> Não-essenciais Aminoácidos </td><td> Invitrogen, Carlsbad, CA </td><td> 11140-050 </td><td></td></tr></tbody></table>

a cre-lox abordagem recombinação p para detecção de fusão celular in vivo</em

A Cre-Lox P Recombination Approach for the Detection of Cell Fusion In Vivo

A capacidade de duas ou mais células do mesmo tipo para fundir tem sido utilizado em metazoários ao longo da evolução para formar muitos órgãos complexos, incluindo o músculo esquelético, ossos e placenta. Estudos contemporâneos demonstram fusão de células do mesmo tipo confere função melhorada. Por exemplo, quando as células do trofoblasto do fusível placenta para formar o sinciciotrofoblasto, o sinciciotrofoblasto é mais capaz de transportar nutrientes e hormônios através da barreira materno-fetal do trofoblasto não fundido 1-4. Estudos mais recentes demonstram a fusão de células de diferentes tipos pode direcionar o destino da célula. A &quot;reversão&quot; ou modificação do destino da célula por fusão já foi pensado para ser limitada a sistemas de cultura de células. Mas o advento do transplante de células-tronco levou à descoberta por nós e outras que as células-tronco podem se fundir com as células somáticas in vivo e que a fusão facilita a diferenciação de células-tronco 5-7. Assim, fusão celular é um processo regulado capable de promover a sobrevivência e diferenciação celular e, portanto, poderia ser de importância central para o reparo, o desenvolvimento de tecidos e até mesmo a patogênese da doença. Limitar o estudo da fusão celular, é a falta de tecnologia apropriada a 1) identificar com precisão produtos de fusão e 2) produtos de fusão faixa ao longo do tempo. Aqui apresentamos uma nova abordagem para abordar tanto limitações através da indução de bioluminescência em fusão (Figura 1);. Bioluminescência pode ser detectado com alta sensibilidade in vivo 15/08 Nós utilizamos uma construção que codifica a luciferase do firefly (Photinus pyralis) gene colocado adjacente ao um códon de parada flanqueado por seqüências LoxP. Quando as células expressando este gene fusível com células expressando a proteína Cre recombinase, os sites são clivados e LoxP o sinal de parada é retirado permitindo a transcrição de luciferase. Como o sinal é inducible, a incidência de falsos-positivos sinais é muito baixa. Ao contrário dos métodos já existentes, que utilizam o sistema Cre / LoxP 16, 17, foi incorporado um &quot;viva&quot; sinal de detecção e, assim, pagar pela primeira vez a oportunidade de acompanhar a cinética de fusão celular in vivo. Para demonstrar a abordagem, os camundongos ubiquitously expressar Cre recombinase serviu como receptores de células-tronco transfectadas com uma construção para expressar a jusante luciferase de um códon de parada floxed. Células-tronco foram transplantadas via injeção intramiocárdica e depois do transplante de análise de imagem intravital foi conduzido para rastrear a presença de produtos de fusão no coração e tecidos circundantes ao longo do tempo. Esta abordagem pode ser adaptada para analisar fusão celular em qualquer tipo de tecido, em qualquer estágio da doença, desenvolvimento ou reparação de tecidos adultos.

Um método para controlar a fusão de células de organismos vivos ao longo do tempo é descrito. A abordagem utiliza Cre-<em&gt; LoxP</emRecombinação&gt; para induzir a expressão luciferase sobre fusão celular. O sinal luminoso gerado pode ser detectado nos organismos vivos utilizando sistemas de imagens biofotônica com uma sensibilidade de detecção de ~ 1.000 células nos tecidos periféricos.

A Cre-Lox Abordagem Recombinação P para Detecção de fusão celular In Vivo</em

A capacidade de duas ou mais células do mesmo tipo de se fundirem tem sido utilizada em metazoários ao longo da evolução para formar muitos órgãos complexos, incluindo...

O objetivo geral deste procedimento é identificar e acompanhar eventos de fusão celular in vivo. Isso é realizado primeiramente pela inserção de um gene de luciferase em células doadoras. O segundo passo do procedimento consiste em entregar as células transfectadas aos tecidos de um camundongo geneticamente modificado para expressar constitutivamente a recombinase Cre.O terceiro passo é obter imagens da luminiscência nos tecidos de camundongos receptores, o que corresponde a eventos de fusão entre células. Em seguida, realiza-se a análise das intensidades do sinal de acordo com as condições experimentais. Em última instância, os resultados podem demonstrar a localização e o tráfego dos produtos da fusão celular em camundongos vivos por meio da detecção de luminiscência induzível associada à fusão celular.O método pode ajudar a responder perguntas fundamentais nas áreas de desenvolvimento, biologia de células-tronco e biologia do câncer, como por exemplo se a fusão celular facilita a reprogramação de células-tronco, ou se a metástase do câncer depende da fusão celular. A demonstração do procedimento será realizada por Anthony Springers, Nicholas Co e Brian Freeman, estudantes em nosso laboratório, e gal queen song, cientista associada do departamento de medicina. Comece com células tratadas com tripsina para fusão in vivo quando estiverem com 70 a 80% de confluência. Neste caso, empregam-se células-tronco mesenquimais; inative a tripsina com meio completo alfa MEM livre de antibiótico, centrifugue suavemente as células, aspire cuidadosamente o sobrenadante e ressuspenda o pellet celular em um mililitro de PBS 1X. Após a contagem das células utilizando um hemocitômetro, transfira 1,5 milhão de células para um tubo de centrífuga e forme o pellet celular.Após cuidadosamente aspirar o sobrenadante, ressuspender o pellet em 300 microlitros de tampão R contendo seis microgramas de plasmídeo, seguindo o protocolo do fabricante. Coloque três mililitros de EBU no porta-eletroporação.Em seguida, transfira 100 microlitros da solução de plasmídeo celular para uma ponteira de pipeta neon. Posicione a ponteira de pipeta no dispositivo de eletroporação e eletropore. As células.Agora transfira essas células para um tubo cônico de 15 mililitros contendo 9,7 mililitros de meio completo alfa MEM. Repita o processo de eletroporação duas vezes para obter um total de 300 microlitros de células eletroporadas, todas reunidas no meio completo alfa MEM. Em seguida, adicione as células a um frasco T 1 75 contendo mais 10 mililitros de meio completo alfa MEM.Substitua o meio 24 horas após a transfeção; a sobrevivência celular após a eletroporação é de cerca de 30%, o que resulta em cerca de meio milhão de células viáveis por frasco. Após dois ou três dias, as células atingirão 70 a 80% de confluência. Em seguida, transfira e conte as células logo antes da injeção Resus.Suspenda as células em meio alfa MEM completo numa concentração de 1 milhão de células por 50 microlitros de meio e injete-as o mais rapidamente possível para minimizar a morte celular. Este procedimento utiliza camundongos geneticamente modificados para expressar recombinase Cree de forma ubíqua, após anestesiar um camundongo com isoflurano antes de prosseguir. Certifique-se de que o animal esteja em plano cirúrgico de anestesia utilizando um teste de dor.Agora, remova os pelos da região torácica utilizando tesouras elétricas ou um removedor químico de pelos. Em seguida, prepare o camundongo para cirurgia entubando-o com um cateter de 18 gauge, conectando-o a um ventilador para camundongos e colocando-o sobre uma plataforma aquecida. Agora, realize uma toracotomia com uma incisão lateral ao longo do quarto espaço intercostal.Obtenha um ângulo de visualização claro do coração. Dobre a ponta de uma agulha de 28 gauge ligada a uma seringa de um mililitro em quase 90 graus. Encha a seringa com 50 microlitros das células preparadas, incluindo um pouco de ar adicional para que todo o volume celular possa ser ejetado da agulha.Agora realize 2 injeções intramiocardiais de 25 microlitros da suspensão celular transfectada no espaço anterior do ventrículo esquerdo. É importante garantir que a injeção celular esteja no tecido. Isso pode ser confirmado observando o espessamento do tecido durante a realização da injeção.Utilize suturas absorvíveis, como as suturas de Vicryl, para fechar as camadas de costelas e músculos. Conclua a cirurgia fechando a pele com nylon ou seda número quatro. Ao realizar a cirurgia e a injeção, proceda rapidamente, pois o sucesso depende da brevidade deste procedimento.Agora, permita que o camundongo se recupere da anestesia em uma placa aquecida e extube o camundongo quando ele tossir ou exibir atividade reflexa. Para os controles, o gelo cremoso deve ser injetado com alfa MEM, meio que não contém células transfectadas, e camundongos selvagens devem ser injetados com as células transfectadas. Anestesie os camundongos a serem imageados utilizando 4% isoflurano.Prepare os camundongos com uma injeção intraperitoneal de D-luciferina. Posicione cada camundongo anestesiado e carregado com luciferina em posição supina. Na caixa de imagem, vários camundongos podem ser analisados simultaneamente, incluindo um camundongo controle com injeção simulada.Usando uma máscara de gás, mantenha a anestesia com 1 a 2% de isoflurano. Posicione a caixa de imagem sob o microscópio e abra um pacote de software comercialmente disponível para realizar a aquisição de imagens. Prepare o software definindo primeiro o tempo de exposição apropriado.Em seguida, defina a forma da área a ser imageada em um camundongo e utilize essa mesma forma de imageamento para todos os demais camundongos imageados. Depois, ajuste a altura do sujeito em 4,5 centímetros. Adquira um sinal de intensidade de luminiscência correspondente ao(s) camundongo(s) dentro do campo de visão.Em seguida, salve o arquivo de imagem sem modificações. Processe as imagens para remover o sinal de fundo correspondente aos valores de intensidade do camundongo controle; os valores acima da luminiscência de fundo correspondem a células fundidas dentro do animal. Verificamos que o software livre ImageJ é facilmente adaptável e confiável para o pós-processamento de imagens.Para realizar esta análise, é mais crucial que as imagens obtidas do software Xeno gen sejam exportadas como arquivos T. A análise de intensidade pode ser realizada utilizando softwares de análise de imagem comercialmente disponíveis ou de código aberto. Normalmente, uma região de interesse é selecionada para comparar os dados de intensidade entre animais e experimentos, a fim de determinar a sensibilidade do sistema de imagem.Uma linhagem celular que expressa constitutivamente luciferase foi injetada no miocárdio de camundongos C57 black six em concentrações variadas. Seis horas depois, os camundongos foram submetidos à imagem para detecção do sinal de luminiscência. Um sinal foi detectado em dois dos seis camundongos injetados com 1000 células, e em todos os seis animais injetados com 10.000 células.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como identificar e rastrear produtos da fusão celular in vivo por meio da detecção de luminescência indutível.

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

Neste vídeo demonstramos eletrofusão eficiente de...

Electrosoldável célula visualizado com microscopia de fluorescência

Este protocolo descreve como imagem de interações proteína-proteína através de um ensaio de proximidade FRET-based.

Imagem interações proteína-proteína In vivo</em

Nós desenvolvemos um ensaio de fusão de células que quantifica SNARE mediadas por eventos de fusão da membrana por expressão activada de β-galactosidase.

Análise de SNARE mediada por fusão de membrana usando um ensaio de fusão celular enzimática

As interações proteína-proteína são visualizadas em células com resolução espacial nanométrica combinando complementação de fluorescência bimolecular (BiFC) com microscopia de localização fotoativada (PALM). Descrito aqui é o uso de BiFC-PALM para interações Ras-Raf de imagem em células U2OS para visualizar o agrupamento em nanoescala e difusão de complexos Ras-Raf individuais.

Fotoactivado Localization Microscopy com Bimolecular Fluorescência de Complementação (BiFC-PALM)

Funções celulares autónomos de genes no cérebro podem ser estudadas através da indução de perda ou ganham de função em esparsas populações de células. Aqui, descrevemos no utero electroporation para entregar recombinase Cre em populações esparsas de desenvolver os neurônios corticais com genes de floxed para causar a perda da função em vivo.

Induzindo a recombinação de Cre-lox no córtex Cerebral de rato através da eletroporação no Utero

Descrevemos um ensaio baseados em células para relatório sobre HIV-1 fusão através da expressão da proteína verde fluorescente detectável por microscopia de fluxo cytometry ou fluorescência. Ele pode ser usado para testar a inibidores de entrada viral (especificamente na etapa de fusão) em sistemas de infecção sem célula e célula a célula.

Um elevado-throughput Cre-Lox ativado ensaio de fusão da membrana Viral para identificar inibidores de fusão da membrana Viral do HIV-1

Este protocolo descreve uma abordagem de baseados em espectroscopia de flutuação de fluorescência para investigar interações entre proteínas mediando as interações célula-célula, ou seja, as proteínas localizadas em cruzamentos de célula, diretamente em células vivas. Nós fornecemos orientações detalhadas na calibração de instrumentos, aquisição de dados e análise, incluindo correcções de fontes possível artefato.

Um ensaio de espectroscopia de flutuação de fluorescência das interações da proteína-proteína em contatos do celular

O objetivo deste protocolo é fundir dois tipos de células diferentes para criar células híbridas. A análise da microscopia da fluorescência de pilhas fundidas é usada para seguir a pilha da origem de organelas celulares. Este ensaio pode ser usado para explorar como a estrutura celular e função responder à perturbação por fusão celular.

Fusão célula-célula de linhas celulares editados do genoma para perturbação da estrutura celular e função

Este protocolo demonstra o uso do ensaio de ligadura de proximidade para sondar interações proteína-proteína in situ na germinação C. elegans.

In Situ Detection of Ribonucleoprotein Complex Assembly in the C. elegans Germline usando Ensaio de Ligação de Proximidade

A Transferência de Energia de Ressonância de Förster (FRET) entre duas moléculas de fluoróforo pode ser usada para estudar as interações proteicas na célula viva. Aqui, um protocolo é fornecido sobre como medir o FRET em células vivas, detectando a emissão sensibilizada do aceptor e a têmpera da molécula doadora usando microscopia confocal de varredura a laser.

Avaliando interações proteicas em células vivas com emissão sensibilizada por FRET

A transferência de energia por ressonância de fluorescência (FRET) é uma técnica de imagem para detectar interações proteicas em células vivas. Aqui, um protocolo FRET é apresentado para estudar a associação de enzimas modificadoras de histona com fatores de transcrição que as recrutam para os promotores alvo da regulação epigenética da expressão gênica em tecidos vegetais.

Investigando interações entre enzimas modificadoras de histonas e fatores de transcrição in vivo por transferência de energia de ressonância de fluorescência

Aprenda a rastrear fusão celular in vivo usando recombinação Cre-LoxP e imagem de luminescência em camundongos modificados geneticamente. Este método permite detectar eventos de fusão em tempo real.

A Cre-Lox Abordagem Recombinação P para Detecção de fusão celular In Vivo

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