Name: Confirmação via metabólica e descoberta através 13 C-rotulagem de proteinogénicos Aminoácidos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 26 s
Description: Aprenda a analisar o metabolismo bacteriano usando marcação com carbono-13 e GC-MS. Este método permite rastrear vias metabólicas funcionais em microrganismos fotossintéticos como cianobactérias.

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Este estudo foi suportado por uma carreira NSF Grant (MCB0954016) e um Bioenergia DOE Research Grant (DEFG0208ER64694).

1. Cultura de células (Figura 1) <ol><li> Cultivar células em meio mínimo com oligoelementos, sais, vitaminas e substratos de carbono especificamente rotulados que são melhores para a investigação caminho. Usar qualquer agitação ou biorreatores frascos para cultura de células. Nutrientes orgânicos, tais como extrato de levedura, pode interferir com a medição de rotulagem de aminoácidos e, portanto, não pode estar presente no meio de cultura. </li><li> Monitorar o crescimento de células pela densidade óptica da cultura em um comprimento de onda ideal (por exemplo, OD 730 para Cyanothece 51142), com um espectrofotômetro UV / Vis. </li><li> As células podem ser cultivadas primeiro em um meio não marcado. O meio-log células fase de crescimento são preferidos a serem utilizados para a inoculação (3% (v / v) por razão de inoculação volume) do meio rotulados. A cultura deve ser rotulado sub-cultura (3% v / v relação de inoculação) no mesmo meio rotulado para evitar a introdução de carbono não-marcado a partir do inóculo inicial. </li></ol><pclass = &quot;jove_title&quot;&gt; 2. Extração de aminoácidos <ol><li> Colheita sub-cultura de células (10 ml) em fase de crescimento médio log-por centrifugação (10 min, 8000 × g). </li><li> Ressuspender o sedimento em 1,5 ml de HCl 6M e transferi-lo para um vidro transparente, com tampa frasco GC. Cap os frascos e coloque-os em forno a 100 ° C por 24 horas para hidrolisar as proteínas da biomassa em aminoácidos. Hidrólise de pellets de biomassa pode produzir 16 dos 20 aminoácidos comuns (Figura 2) 5. Cisteína e triptofano são degradadas, e glutamina e asparagina são convertidos para o glutamato e aspartato, respectivamente. </li><li> Centrifugar a solução de aminoácidos a 20.000 × g por 5 min em tubos de 2 ml Eppendorf, e transferir o sobrenadante para novos frascos GC. Essa etapa remove partículas sólidas na solução de hidrólise. </li><li> Remover as tampas frasco GC e secar as amostras completamente sob um fluxo de ar através de uma reativação Thermo Scientific-Vap evaporador (nota: um secador de congelamento também pode ser usado tamostras o seco). Esta etapa pode ser feito durante a noite. </li></ol> 3. Derivatização de aminoácidos e GC-MS condições Análise de aminoácidos ou carregadas / altamente metabolitos polares via GC exige que estes metabólitos ser derivatizado, de modo que os aminoácidos são voláteis e podem ser separados por cromatografia em fase gasosa 2. <ol><li> Dissolver as amostras secas com 150 mL de tetrahidrofurano (THF) e 150 mL de N-(terc-butyldimethylsilyl) reagente de derivatização-N-methyltrifluoroacetamide. </li><li> Incubar todas as amostras em um forno ou em banho-maria entre 65 e 80 ° C por 1 hora. Vortex, ocasionalmente, para se certificar de que os metabolitos no frasco são dissolvidos. </li><li> Centrifugar as amostras a 20.000 × g por 10 min, e depois transferir o sobrenadante para novos frascos GC. O sobrenadante deve ser uma solução clara e amarelada. Devido à saturação dos detectores, GC-MS precisão da medição pode ser afetada pela alta concentration de injeção TBDMS derivatizado aminoácidos (estas amostras freqüentemente mostra cor marrom escuro), portanto, devemos diluir essas amostras utilizando THF antes de GC-MS medição 6. </li><li> Análise das amostras por GC-MS (use um 1:05 ou 1:10 dividir relação de volume de injeção, = 1 mL de transporte de gás hélio = 1,2 mL / min). Use o programa de temperatura seguintes GC: mantenha a 150 ° C por 2 minutos, aumento de 3 ° C por min a 280 ° C, aumento de 20 ° C por minuto até 300 ° C e mantenha por 5 minutos. Atraso solvente pode ser definido como ~ 5 minutos (para uma coluna GC 30 metros). O alcance da massa e carga ratio (m / z) em MS pode ser definida entre 60 e 500. </li></ol> 4. GC-MS de análise de dados <ol><li> TBDMS medição de ácido amino derivatizado também podem ser afetados pela discriminação dos isótopos na separação GC. Isótopos luz mover-se ligeiramente mais rápido do que heave isótopos na coluna GC. Para reduzir o viés de aferição potencial, podemos média do espectro de massa do conjuntogama de pico amino ácido 6 </li><li> A GC e MS espectros de metabólitos TBDMS derivatizado foram relatados antes de 7. O tempo de retenção ea única GC m / z picos para cada aminoácido são ilustrados na Figura 3. </li><li> Derivatização de aminoácidos ou metabólitos centrais apresenta quantidades significativas de isótopos naturalmente marcado, incluindo 13 C (1,13%), 18 O (0,20%), 29 Si (4,70%), e 30 Si (3,09%). O ruído de medição de isótopos naturais no espectro de massa crua isotopomer pode ser corrigido usando software publicou 5, 8. A final de dados isotópicos rotulagem são relatadas como frações de massa, por exemplo, M 0, M 1, M 2, M 3 e M 4 (representando fragmentos contendo zero a quatro carbonos marcados 13 C). </li><li> Medição de aminoácidos pode fornecer informações de rotulagem isotópica cerca de oito metabólitos precursor crucial: 2-oxo-glutarcomeu, 3-P-glicerato, acetil-CoA, eritrose-4-P, oxaloacetato, fosfoenolpiruvato, piruvato e ribose-5-P. Os padrões de rotulagem desses metabólitos podem ser usados ​​para identificar várias vias metabólicas central (Figura 2) 9. O resultado dos experimentos rotulagem pode ser confirmado através de métodos bioquímicos outros (por exemplo, RT-PCR). </li></ol> 5. Análise de caminho usando rotulados de dados de aminoácidos Ao investigar apenas alguns aminoácidos-chave produzido a partir de 13 bem concebidos experimentos C traçador, que pode revelar várias vias originais ou atividades enzimáticas sem executar sofisticadas análises de fluxo 13 C-metabólicas do metabolismo central de todo. <ol><li> Entner-Doudoroff caminho: [1 - 13 C] glicose pode ser usado como fonte de carbono. Se o caminho está ativo, rotulagem serina será significativamente menor do que a rotulagem da alanina 10. </li><li> Ciclo TCA ramificada: [1 - 13 C]piruvato pode ser usado como fonte de carbono. Se o ciclo TCA é quebrado, aspartato pode ser rotulado por dois átomos de carbono, enquanto o glutamato é rotulado com apenas um carbono 11, 12. </li><li> CO 2 por fixação de Calvin-Benson-Bassham ciclo em um metabolismo mixotróficas: Non-rotulados CO 2 e rotuladas substratos de carbono são usados ​​como fontes de carbono. Se o ciclo de Calvin é funcional, serina e histidina rotulagem será significativamente diluída, em comparação com outros aminoácidos. Tal método pode determinar a relação CO 2 quando as fontes de fixação de carbono orgânico está presente nos 13 médio. </li><li> Via fosfato pentose oxidativo: [1 - 13 C] glicose pode ser usado como fonte de carbono. Se o caminho está ativo, a alanina não marcado será&gt; 50% 12. </li><li> Pathway Anaplerotic (por exemplo, PEP + CO 2 à oxaloacetato): 13 CO 2 e não-rotulados de carbono substratos (eg glicerol, ou pyruvate) pode ser usado como fonte de carbono. Se o caminho está ativo, rotulagem aspartato será significativamente enriquecido, em comparação com alanina e serina 13. </li><li> Re citrato-sintase: [1 - 13 C] piruvato pode ser usado como fonte de carbono. Se a enzima é ativa, o glutamato é rotulado de β-carboxi grupo 3, 4. </li><li> Pathway Citramalate: [1 - 13 C] piruvato, [2 - 13 C] glicerol, ou [1-13 C] acetato pode ser usado como fonte de carbono. Se o caminho está ativo, quantidades rotulagem leucina e isoleucina são idênticos 14. </li><li> Serina-isocitrato liase ciclo: [1 - 13 C] piruvato ou [1-13 C] lactato pode ser utilizado como fonte de carbono. Se o caminho está ativo, o carbono terceira posição em serina será marcado 15. </li><li> Utilização dos nutrientes (ou seja, aminoácidos exógenos): um meio de cultura com substratos de carbono totalmente rotulados e não rotulados aminoácidospode ser usado. Se as células seletivamente utilizar esses nutrientes suplementada não marcado, vamos ver diluição significativa rotulagem destes aminoácidos na biomassa. Este método pode ser usado para investigar quais suplementos nutricionais são os preferidos pela célula 16. </li></ol> 6. Resultados representante Estudos de bioenergia recentes têm reavivado interesse em usar microorganismos fototróficas novela para a produção de bioenergia e de captura de CO 2. Nos últimos anos, muito poucos 13C metabolismo-análises, incluindo análises avançadas 13C-Metabolic Flux (MFA-13C), têm sido aplicados para investigar o metabolismo central em bactérias fototróficas, porque o conhecimento bioquímicos das vias metabólicas centrais não é bem fundamentada nestes organismos não-modelo de 10, 11, 17-20. Aqui, apresentamos um exemplo da descoberta de um caminho alternativo no isoleucina Cyanothece 51.142 21. Cyanothece 51.142 não contém a enzima (CE 4.3.1.19, treonina amônia-liase), que catalisa a conversão de treonina a 2 cetobutirato-no caminho típico isoleucina síntese. Para resolver o caminho isoleucina, nós crescemos Cyanothece 51.142 (20 mL) em meio ASP2 22 com 54 mM de glicerol (2-13C,%&gt; 98). Cyanothece 51142 utiliza 2 ª posição glicerol rotulados como fonte de carbono principal. Observamos que treonina e alanina tem um escrito de carbono, enquanto isoleucina é rotulado com três carbonos. Portanto, a síntese em Cyanothece 51142 não pode ser derivada a partir da rota de treonina utilizados pela maioria dos organismos (Figura 4). Por outro lado, leucina e isoleucina têm padrões de rotulagem idênticos com base no fragmento (M-15) + e fragmento (M-159) +. Por exemplo, os dados isotopomer a partir de [M-15] + (contendo unfragmented aminoácidos) mostrou marcação idêntica para leucina (M0 = 0,01, M1 = 0.03, M2 = 0,21, M3 = 00,69) e isoleucina (M0 = 0,01, M1 = 0.03, M2 = 0,24, M3 = 0,67). Assim, leucina e isoleucina deve ser sintetizada a partir de precursores mesma (ou seja, piruvato e acetil-CoA). Esta observação é consistente com a transição de carbono marcado na via citramalate para a síntese de isoleucina. Para confirmar esta via, que busca a Joint Genome Institute banco de dados e encontrar a presença de um sintase citramalate Cima (cce_0248) em Cyanothece. <img src="/files/ftp_upload/3583/3583fig1.jpg" alt="Figura 1"/> Figura 1. O 13 C-assisted etapas da análise caminho. <img src="/files/ftp_upload/3583/3583fig2.jpg" alt="Figura 2"/> Figura 2. Aminoácidos usado para adquirir o padrão de marcação de seus precursores metabólicos. ACOA, acetil-CoA; AKG, α-cetoglutarato; C5P, ribose 5-fosfato; CIT, citrato; E4P, eritrose 4-fosfato; G6P, glicose 6-fosfato; OAA,<html> oxaloacetato; fosfoenolpiruvato PEP,; PGA, 3-fosfoglicerato, PYR, piruvato. <img src="/files/ftp_upload/3583/3583fig3.jpg" alt="Figura 3"/> Figura 3. Picos GC por 16 aminoácidos. TBDMS derivatizado aminoácidos são rachados por MS em dois fragmentos: (M-57) +, contendo o ácido amino inteira, e (M-159) +, o que não tem o grupo α carboxila do aminoácido. Para leucina e isoleucina, a + (M-57) foi sobreposta por picos de massa outros. Sugerimos o uso de fragmento (M-15) + para analisar a rotulagem de ácido amino inteira. O (F302) + grupo é detectada na maioria dos aminoácidos, que contém apenas o primeiro (grupo α-carboxila) e carbonos segundo em um backbone de aminoácidos. Porque esse pico MS muitas vezes tem alto nível de ruído ao sinal-razões, (F302) + não é recomendado para quantitativamente análise dos fluxos metabólicos 7. IGURA 4 &quot;/&gt; Figura 4. Labeling transições em vias de isoleucina na Cyanothece 51.142 (modificado de nosso artigo anterior) 21.

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</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Este protocolo consiste em alimentar a célula com um substrato rotulados e medir o resultado padrões de rotulagem isotópica na aminoácidos através de GC-MS. Desde MS de dados (m / z rácios) dar apenas o montante global da rotulagem de íons de MS, temos que avaliar as distribuições isotopomer de aminoácidos, examinando as razões m / z de ambos não fragmentado (M-57) + e fragmentado aminoácidos (ie, (M-159) + e (F302) +). Além disso, podemos realizar várias culturas de células com um meio ...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome do reagente </th><th> Companhia </th><th> Número de catálogo </th><th> Comments (opcional) </th></tr><tr><td> TBDMS </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 19915 </td><td> - </td></tr><tr><td> THF </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 34865 </td><td> - </td></tr><tr><td> Substrato de carbono marcado </td><td> Cambridge Isotope Laboratories </td><td> Dependem da exigência experimental </td><td> Website: <a href="http://www.isotope.com">http://www.isotope.com</a> </td></tr><tr><td> Cromatógrafo a gás </td><td> Agilent Technologies </td><td> Hewlett-Packard, modelo 7890A </td><td> - </td></tr><tr><td> Colunas GC </td><td> J &amp; W Scientific, Folsom, CA </td><td> DB5 (30m) </td><td> - </td></tr><tr><td> Espectrômetro de massa </td><td> Agilent Technologies </td><td> 5975C </td><td> - </td></tr><tr><td> Reativação-Vap EvaporAtor </td><td> Thermo Scientific </td><td> TS-18825 </td><td> Para a secagem de amostras de aminoácidos </td></tr></tbody></table>

confirmação via metabólica e descoberta através 13 c-rotulagem de proteinogénicos aminoácidos

Metabolic Pathway Confirmation and Discovery Through 13C-labeling of Proteinogenic Amino Acids

Micróbios têm complexo de vias metabólicas que podem ser investigados usando métodos de bioquímica e funcional genômica. Uma técnica importante examinar o metabolismo celular central e descobrir novas enzimas é de 13 C-assistida análise metabolismo 1. Esta técnica é baseada na rotulagem isotópica, em que os micróbios são alimentados com um 13 substratos C rotulados. Ao traçar os caminhos átomo de transição entre metabólitos na rede bioquímicos, podemos determinar caminhos funcional e descobrir novas enzimas. Como um método complementar para transcriptômica e proteômica, abordagens para isotopomer assistida análise de vias metabólicas conter três etapas principais 2. Primeiro, cultivar células com 13 substratos C rotulados. Nesta etapa, a composição do meio e da seleção de substratos marcados são dois fatores-chave. Para evitar ruídos de medição a partir de carbono não-rotulados de suplementos nutricionais, Um meio mínimo com uma única fonte de carbono é necessária. Além disso, a escolha de um substrato marcado é baseada em como efetivamente ele irá elucidar o caminho a ser analisada. Porque muitas vezes envolvem enzimas romance estereoquímica reação diferente ou produtos intermediários, em geral, substratos de carbono individualmente rotulados são mais informativos para a detecção de caminhos novos do que os uniformemente marcado para a detecção de vias novela 3, 4. Em segundo lugar, analisar os padrões de rotulagem de aminoácidos usando GC -MS. Aminoácidos são abundantes em proteínas e, portanto, pode ser obtido a partir da hidrólise da biomassa. Aminoácidos pode ser derivatizado por N-(terc-butyldimethylsilyl)-N-methyltrifluoroacetamide (TBDMS) antes da separação GC. TBDMS derivatizado aminoácidos pode ser fragmentado por MS e resultam em diferentes matrizes de fragmentos. Com base na massa à relação de carga (m / z) de fragmentação e não fragmentado aminoácidos, podemos deduzir os padrões possíveis rotulados dos metabólitos que são centraisprecursores dos aminoácidos. Terceiro, traçamos transições de carbono 13C nas vias propostas e, com base nos dados isotopomer, confirmar se estes caminhos são dois ativos. Medição de aminoácidos fornece informações de rotulagem isotópica cerca de oito metabólitos precursor crucial no metabolismo central. Esses nós metabólicos chave podem refletir as funções de associados vias centrais. 13 A análise do metabolismo C-assistida via proteinogénicos aminoácidos pode ser amplamente utilizado para a caracterização funcional de mal-caracterizada metabolismo microbiano 1. Neste protocolo, usaremos Cyanothece 51142 como cepa modelo para demonstrar o uso de substratos de carbono marcado para descobrir novas funções enzimáticas.

13 C-isótopo rotulagem é uma técnica útil para determinar o metabolismo da célula central para vários tipos de microorganismos. Depois que as células foram cultivadas com um substrato específico rotulados, GC-MS medição pode revelar vias metabólicas funcionais com base em padrões de rotulagem única no proteinogénicos aminoácidos.

Confirmação via metabólica e descoberta através 13 C-rotulagem de proteinogénicos Aminoácidos

Os micróbios possuem vias metabólicas complexas que podem ser investigadas utilizando métodos de bioquímica e genômica funcional. Uma técnica importante para examinar...

O objetivo deste protocolo é estudar o metabolismo bacteriano utilizando análise de metabolismo assistida por carbono 13. Para começar, microrganismos são cultivados na presença de substratos de carbono marcados, os quais são incorporados às proteínas microbianas. Em seguida, os microrganismos são colhidos e os aminoácidos são extraídos, hidrolisados e derivatizados.As amostras são aplicadas em um cromatógrafo a gás e espectrômetro de massas ou GCMS. Ao rastrear os caminhos de transição dos átomos entre os metabólitos na rede bioquímica, podem ser determinadas as vias metabólicas funcionais utilizadas pelo microrganismo. Eu sou Bert Burla.O método que apresentamos aqui pode ser usado como um complemento à transcriptômica e proteômica para determinar as vias metabólicas em microrganismos. Utilizamos esta técnica para investigar microrganismos fotossintéticos, como cianobactérias, quanto à utilização de carbono mixotrófica ou heterotrófica. Neste vídeo, usaremos a linhagem modelo ANOTHE 5 1 1 42 para demonstrar o uso de substratos de carbono marcados na descoberta de novas funções enzimáticas.Realizaremos o procedimento eu mesmo, Li Yu e Chu Yang Fang. Inicie este procedimento cultiv

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JoVE Journal

Biology

Biologia

Fluxos de trabalho de isótopos estáveis ​​de rotulagem...

Protease e catalisada por ácido Workflows Labeling Empregando<sup&gt; 18</sup&gt; O-enriquecido Água

Nós apresentamos uma variação da abordagem QUICK (Imunoprecipitação quantitativos em conjunto com Knockdown) que foi introduzida anteriormente para distinguir entre verdadeiros e falsos interacções proteína-proteína. A nossa abordagem é...

Um protocolo para a identificação de interações proteína-proteína Baseado<sup&gt; 15</sup&gt; Etiquetagem N Metabólica, imunoprecipitação, Quantitativa Espectrometria de Massa e Affinity Modulação

Leucina repetição rica quinases 1 e 2 (e LRRK1 LRRK2) são proteínas de vários domínios que codificam tanto GTPase e domínios cinase e que são fosforiladas em células. Aqui, apresentamos um protocolo para rotular LRRK1 e LRRK2 em células com 32 P-ortofosfato, proporcionando assim um meio para medir seus níveis gerais de fosforilação celular.

Metabólica Rotulagem de Leucina rico Repita Kinases 1 e 2 com Radioactive Fosfato

A validação de actividades enzimáticas envolvidas nas vias bioquímicas podem ser elucidada utilizando a análise de complementação funcional (FCA). Descritos neste manuscrito é o ensaio de FCA que demonstra a actividade enzimática de enzimas envolvidas no metabolismo de aminoácidos, resposta rigorosas bacteriana e biossíntese bacteriana do peptidoglicano.

Análise Funcional Complementação (FCA): Um Exercício Laboratório concebido e implementado para complementar o Ensino de Bioquímica Pathways

Este protocolo descreve um procedimento experimental para quantitativamente e exaustivamente investigar o metabolismo de várias fontes de nutrientes. Este fluxo de trabalho, com base em uma combinação de experiências de traçador isotópico e um procedimento analítico, permite que o destino dos nutrientes consumidos e a origem metabólica de moléculas synthetized por microorganismos a ser determinada.

Fluxo de trabalho baseado na combinação de traçador isotópico experimentos para investigar o metabolismo microbiano de múltiplas fontes de nutrientes

Aqui, apresentamos um protocolo robusto para quantificar 40 compostos envolvidos no metabolismo central de carbono e energia em reações de síntese de proteínas livres de células. A mistura de síntese livre de células é derivada com aniline para separação eficaz usando cromatografia líquida de fase invertida e, em seguida, quantificada pela espectrometria de massa usando padrões internos isotópicos rotulados.

Quantificação absoluta do metabolismo da síntese de proteínas livres de células por cromatografia líquida de fase reversa-espectrometria

A Cil-RAC (Acyl-Resin Assisted Capture) é um método altamente sensível, confiável e fácil de executar para detectar modificações lipídicas reversíveis de resíduos de cisteína (S-acilação) em uma variedade de amostras biológicas.

Detecção de Proteína S-Acilação usando captura assistida de acila-resina

Os protocolos descrevem métodos de cromatografia líquida de alto desempenho acoplados ao índice refrativo ou detecção espectrométrica em massa para estudar reações metabólicas em sistemas complexos de isenta de células baseadas em lysato.

Cromatografia líquida acoplada ao índice refrativo ou detecção espectrométrica em massa para perfil metabólito em sistemas livres de células baseadas em lysato

O método desenvolvido de marcação com 13C6-glicose combinado com espectrometria de massa de alta resolução por cromatografia líquida é versátil e estabelece as bases para estudos futuros sobre os órgãos e vias primárias envolvidos na síntese de metabólitos secundários em plantas medicinais, bem como a utilização abrangente desses metabólitos secundários.

13C6-Marcação de glicose associada a LC-MS: Identificação de órgãos primários de plantas na síntese de metabólitos secundários

O vídeo que acompanha descreve o uso do Sistema de Fracionamento GELFREE 8100, que partições amostras de proteínas complexas com base no peso molecular e recupera as frações em fase líquida. O vídeo descreve como a tecnologia funciona, como ele é usado, e fornece dados resultantes, com análise de eletroforese em gel de poliacrilamida de homogenato de fígado bovino fracionado.

Usando o sistema de fracionamento GELFREE 8100 para Fracionamento baseada no peso molecular com Recovery Fase Líquida

Aprenda a analisar o metabolismo bacteriano usando marcação com carbono-13 e GC-MS. Este método permite rastrear vias metabólicas funcionais em microrganismos fotossintéticos como cianobactérias.

Confirmação via metabólica e descoberta através¹³ C-rotulagem de proteinogénicos Aminoácidos

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