Name: Aplicação de Medidas para MassSQUIRM quantitativa da actividade demetilase Lisina (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-03-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 2 s
Description: Aprenda a quantificar a atividade da lisina desmetilase usando espectrometria de massa MALDI e marcação isotópica. Este método melhora a precisão na detecção de mudanças de metilação em sistemas biológicos.

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Agradecemos ao UAMS Facilidade Proteomics de apoio por espectrometria de massa. O financiamento para este projeto foi fornecido pelo NIH concede P20RR015569, P20RR016460 e R01DA025755.

Este protocolo é modificado a partir de Blair et al. 6. 1. LSD1 Ensaio desmetilação <ol><li> Em um volume final de 20 uL, combinar 125 ng LSD1 recombinante com 0,25 ug de di-metil histona H3 péptido (ARTKme2QTARKSTGGKAPRKQLYK-biotina) em tampão de desmetilase (50 mM Tris-Cl pH 8,5, 50 mM de KCl, 5 mM MgCl2, 5% glicerol). Além disso, realizar um péptido de controlo sozinha, sem enzima. O controle é para a secção 3 e não precisa de metilação redutiva. </li><li> Incubar durante 2 horas a 37 ° C. </li><li> Para recolher os péptidos, adicionar 8 uL Poros R2 20 micron grânulos para cada amostra e agitar durante 15 minutos à temperatura ambiente. Preparar grânulos Poros suspendendo 1 volume de esferas com um volume de metanol, e depois adicionar 10 volumes de 5% de ácido fórmico / TFA a 0,2%. </li><li> Condição dois C 18 ZipTips por aspiração de 20 uL de TFA 0,1% na ponta e empurrando-o de volta com uma pipeta. Faça isso duas vezes com T 0,1%FA, quatro vezes com acetonitrilo 70% / TFA a 0,1%, e quatro vezes novamente com TFA a 0,1%. </li><li> Carregar as duas amostras (controle ea reacção desmetilase) sobre os condicionado C 18 ZipTips pipetando a lama grânulo por trás da resina C 18 nas ZipTips e empurrando o volume através com um pipetador. </li><li> Lavar duas vezes com ZipTips 20 uL de TFA a 0,1%. </li><li> Eluir em 40 uL de acetonitrilo 70% / TFA a 0,1%. </li><li> Liofilizar cada eluente completamente com um concentrador Speedvac. </li></ol> 2. Metilação redutiva Esta porção do protocolo é modificado a partir de Blair et al. E Rayment et al. 6,7. <ol><li> Re-suspender a reacção desmetilase em 100 uL de tampão fosfato 50 mM, pH 7,4. </li><li> Para a reacção de desmetilase, adicionar 8 uL de 15 mg / mL de borano dimetilamina. Borano dimetilamina é dissolvido em tampão fosfato 50 mM, pH 7,4, para dar o 15 mg / ml de solução concentrada.Isto deve ser feito fresco. </li><li> Para a reacção de desmetilase, adicionar 16 uL de 250 mM de formaldeído deuterado. O formaldeído 250 mM deuterado é preparada diluindo o estoque em H 2 0. Isto deve ser feito fresco. </li><li> Incubar a 4 ° C durante 2 horas. </li><li> Repita os passos 2.2, 2.3 e 2.4. </li><li> Repita o passo 2.2. </li><li> Incubar a 4 ° C durante ~ 15 horas. </li><li> Para a amostra desmetilase, adicionar 12,5 ul de 1M Tris, pH 7,4 para extinguir a reacção de metilação redutiva. </li></ol> 3. Espectrometria de Massa MALDI <ol><li> Adicionar Poros R2 20 micron grânulos para a reacção desmetilase, e recolher em ZipTips como descrito nos passos 1,3-1,6. </li></ol> Nota: Re-suspende o controle em 100 uL de tampão fosfato 50 mM, pH 7,4 e tratar como a outra amostra de partida no passo 3.1. <ol start="2"><li> Eluir o controlo e as amostras reaccionais desmetilase a partir dos ZipTips sobre uma placa de amostra MALDI usando 2 uL de 33% saturard ácido 2,5-dihidroxibenzóico. Para preparar a 33% de ácido 2,5-dihidroxibenzoico, fazer uma solução saturada de 2,5-di-hidroxibenzóico em acetonitrilo 70% / TFA a 0,1% e, em seguida, diluir a 33% saturado em acetonitrilo 70% / TFA a 0,1%. Permitir que as amostras eluidas para secar e cristalizar. </li><li> Coletar espectros de massa usando um espectrômetro de massa MALDI PerkinElmerSciex-prOTOF ou disponível de alta resolução espectrômetro de massa MALDI 8,9,10. </li><li> Ver espectros e extrair áreas dos picos usando PerkinElmerSciex software TOFworks ou software fornecido pelo fabricante do espectrômetro de massa. </li><li> Verificar produtos de reacção por MS 2, com um sistema de massa disponível por espectrometria de proporcionar capacidades de espectrometria de massa em tandem. </li></ol> 4. Análise de Dados <ol><li> A fim de compensar a sobreposição isotópicos criadas usando formaldeído pesada (Figura 1B), determinar a área do pico (A) proporção de 13 C e 13 C 2 4 isótopos relative para o pico monoisotópico para a amostra de controle, que não foi objecto de metilação redutiva (Fig. 2A). Eq. 1: Um 13C2 / A 12C = r 1 Eq. 2: Uma 13C4 / A 12C = r 2 Isto lhe dará a relação do peptídeo existentes nesses estados isotópica (r 1 e r 2) específico para o seu experimento e espectrômetro de massa. </li><li> Utilizar a r 1 e valores de r 2 nas fórmulas seguintes para quantificar a quantidade relativa de péptido existentes em cada estado modificação na amostra reacção desmetilase (Fig. 2B): Eq. 3: H3K4me2 = A 1 Eq. 4: H3K4me = A 2 - r 1 (A 1) Eq. 5: H3K4 = A 3 - r 2 (A 1) - [r 1 (A 2 - r 1 (A 1))] </li></ol> 5. Os resultados representativos Usando LSD1, mostramos a eficácia do MassSQUIRM para quantificardesmetilação lisina. Como descrito na secção de Texto protocolo, realizou-se um ensaio de desmetilase com 125 ng de LSD1 e 0,25 ug de di-metil histona H3 péptido (ARTKme2QTARKSTGGKAPRKQLYK-biotina). O controlo e as amostras reaccionais desmetilase foram submetidos a metilação redutiva e espectrometria de massa MALDI. A reacção de controlo que não foi submetido a metilação redutiva mostrou o envelope típico isotópica para este péptido, e desde as áreas dos picos para as equações 1 e 2 (Figura 2A). O espectro de massa para a reacção de desmetilase desde áreas de pico para equações 3-5 (Figura 2B). Usando as áreas dos picos do controlo e reacção desmetilase, determinou-se que o péptido LSD1 desmetilado para dar os produtos de reacção seguintes: 33,7% de di-metil Lys4, 42,3% de mono-metil Lys4, e 24% un-metilado Lys 4. Consulte a Blair et al. Para a análise completa de LSD1 atividade demetilase bem como estudos de inibidores 6. Note-se que as variáveis ​​mutação tais como o tempo de reacção da enzima,concentração de concentração e substrato permitirá uma análise aprofundada da atividade. <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/3604/3604fig1.jpg" /> Figura 1. Resumo MassSQUIRM. (A) um péptido N-terminal a partir de histona H3 é mostrado como sendo un-(verde), mono-(vermelho), ou di-(azul) metilado na lisina 4. A variação na composição química de cada péptido leva a ionização diferencial tornando complexo quantificação. (B) metilação redutiva converte todos os resíduos de lisina para o estado de di-metil que faz com que todos os péptidos para ionizar de forma semelhante. A utilização de formaldeído pesado na reacção de metilação redutiva permite a retenção da identidade do metilação original. Círculos abertos indicam metilação luz, enquanto círculos fechados indicam metilação pesado. Modificado de Blair et al. 2011 6. <img alt="A Figura 2" src="/files/ftp_upload/3604/3604fig2.jpg" /> Figur2 e. MassSQUIRM pode ser usado para quantificar os péptidos diferencialmente metilados. (A) Um di-metilado sintético histona H3 péptido (ARTKme2QTARKSTGGKAPRKQLYK-biotina) foi analisado por espectrometria de massa e os rácios dos picos relativos ao pico monoisotópico foram anotados como R1 e R 2 nas equações 1 e 2. (B) O péptido sintético mesmo foi incubado com 125 ng LSD1, em tampão de desmetilase durante duas horas a 37 ° C. As amostras foram então submetidas a análise MassSQUIRM. Uma população mista de sobreposição picos representa três estados diferentes de metilação tal como são vistos na Figura 1B. As áreas sob os picos monoisotópico foram notadas como um 1, A 2, e A 3. Áreas de pico foram utilizados nas equações 3-5. Círculos abertos indicam metilação luz, enquanto círculos fechados indicam metilação pesado. Modificado de Blair et al. 2011 6.

<ol><li>Goldberg, A. D., Allis, C. D., Bernstein, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics%3A+a+landscape+takes+shape%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Epigenetics: a landscape takes shape.</a> Cell. 128, 635-638 (2007).</li>
<li>Kouzarides, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+modifications+and+their+function%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Chromatin modifications and their function.</a> Cell. 128, 693-705 (2007).</li>
<li>Blair, L. P., Cao, J., Zou, M. R., Sayegh, J., Yan, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetic+Regulation+by+Lysine+Demethylase+5+%28KDM5%29+Enzymes+in+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancers+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Epigenetic Regulation by Lysine Demethylase 5 (KDM5) Enzymes in Cancer.</a> Cancers (Basel). 3, 1383-1404 (2011).</li>
<li>Cole, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+probes+for+histone-modifying+enzymes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Chemical probes for histone-modifying enzymes.</a> Nat. Chem. Biol. 4, 590-597 (2008).</li>
<li>Shi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histone+demethylation+mediated+by+the+nuclear+amine+oxidase+homolog+LSD1%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Histone demethylation mediated by the nuclear amine oxidase homolog LSD1.</a> Cell. 119, 941-953 (2004).</li>
<li>Blair, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MassSQUIRM%3A+An+assay+for+quantitative+measurement+of+lysine+demethylase+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Epigenetics%22%5BJournal%5D)">MassSQUIRM: An assay for quantitative measurement of lysine demethylase activity.</a> Epigenetics. 6, 490-499 (2011).</li>
<li>Rayment, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+structure+of+myosin+subfragment-1%3A+a+molecular+motor%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional structure of myosin subfragment-1: a molecular motor.</a> Science. 261, 50-508 (1993).</li>
<li>Collom, S. L., Jamakhandi, A. P., Tackett, A. J., Radominska-Pandya, A., Miller, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CYP2E1+active+site+residues+in+substrate+recognition+sequence+5+identified+by+photoaffinity+labeling+and+homology+modeling%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Biochem.+Biophys%22%5BJournal%5D)">CYP2E1 active site residues in substrate recognition sequence 5 identified by photoaffinity labeling and homology modeling.</a> Arch. Biochem. Biophys. 459, 59-69 (2007).</li>
<li>Gradolatto, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Saccharomyces+cerevisiae+Yta7+Regulates+Histone+Gene+Expression%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Saccharomyces cerevisiae Yta7 Regulates Histone Gene Expression.</a> Genetics. 179, 291-304 (2008).</li>
<li>Taverna, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yng1+PHD+finger+binding+to+histone+H3+trimethylated+at+lysine+4+promotes+NuA3+HAT+activity+at+Lysine+14+of+H3+and+transcripiton+at+a+subset+of+targeted+ORFs%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Yng1 PHD finger binding to histone H3 trimethylated at lysine 4 promotes NuA3 HAT activity at Lysine 14 of H3 and transcripiton at a subset of targeted ORFs.</a> Mol. Cell. 24, 785-796 (2006).</li>
</ol>

Não temos nada a divulgar.

MassSQUIRM é um método barato e quantitativa para análise abrangente da atividade de demethylases lisina envolvidas na mono-e di-metilação. MassSQUIRM oferece não só a quantificação do produto da reacção, mas também para os intermediários. Este ensaio pode ser utilizado como uma ferramenta poderosa para estudar o mecanismo de LSD1 e outros demethylases histona. Também irá ser útil para a classificação de muitas enzimas recém-descobertas desmetilase de lisina, tais como PHF8 e poderiam ser usados ​​para certos enzimas me...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> LSD1 </td><td> BPS Biosciences </td><td> 50100 </td></tr><tr><td> H3K4me2-biotina péptido </td><td> preparada em casa </td><td> nenhum </td></tr><tr><td> POROS R2 20 esferas de micro </td><td> Applied Biosystems </td><td> 1-1129-06 </td></tr><tr><td> C 18 ZipTip </td><td> Millipore </td><td> ZTC18M </td></tr><tr><td> Ácido trifluoroacético (TFA) </td><td> Thermo </td><td> 28904 </td></tr><tr><td> acetonitrila </td><td> Pescador </td><td> A996 </td></tr><tr><td> 2,5-di-hidroxibenzóico </td><td> Sigma </td><td> 85707 </td></tr><tr><td> Borano dimetilamina </td><td> Sigma </td><td> 180238 </td></tr><tr><td> isotopicamente pesado d 2-formaldeído </td><td> Cambridge Isotope Laboratories </td&gt; <td> DLM-805-20 </td></tr><tr><td> Tris </td><td> Pescador </td><td> BP154 </td></tr><tr><td> KCl </td><td> Pescador </td><td> BP366 </td></tr><tr><td> MgCl 2 </td><td> Pescador </td><td> BP214 </td></tr><tr><td> Glicerina </td><td> Pescador </td><td> G33 </td></tr><tr><td> O ácido fórmico </td><td> Fluka </td><td> 06440 </td></tr><tr><td> Metanol </td><td> Pescador </td><td> A452 </td></tr><tr><td> Na-fosfato </td><td> Pescador </td><td> BP329 </td></tr><tr><td> Concentrador Speedvac </td><td> Sábio </td><td> DNA110 </td></tr><tr><td> MALDI-prOTOF espectrômetro de massa e TOFworks software </td><td> PerkinElmerSciex </td><td> nenhum </td></tr></tbody></table>

aplicação de medidas para masssquirm quantitativa da actividade demetilase lisina

Application of MassSQUIRM for Quantitative Measurements of Lysine Demethylase Activity

Recentemente, os reguladores epigenéticos têm sido descobertos como atores-chave em muitos diferentes doenças 1-3. Como resultado, estas enzimas são alvos principais para os estudos de moléculas pequenas e 4 desenvolvimento de drogas. Muitos reguladores epigenéticos têm apenas recentemente descobertos e ainda estão em vias de ser classificado. Entre estas enzimas são demethylases lisina que removem grupos metilo a partir de lisinas na histonas e outras proteínas. Devido à natureza novo desta classe de enzimas, ensaios de poucos têm sido desenvolvidos para estudar a sua actividade. Este tem sido um bloqueio na estrada para tanto a classificação e estudo de alto rendimento de demethylases histonas. Atualmente, ensaios demetilase existem poucos. As que existem tendem a ser de natureza qualitativa e não pode discernir entre simultaneamente os diferentes estados de metilação de lisina (un-, mono-, di-e tri-). Espectrometria de massa é comumente usado para determinar a atividade demetilase mas atuais ensaios de espectrometria de massa donão dirigir se peptídeos diferencialmente metilados ionizar de forma diferente. Ionização diferencial de péptidos metilados faz comparando estados de metilação difícil e certamente não quantitativa (Figura 1A). Assim, os ensaios disponíveis não são otimizados para a análise global da atividade demetilase. Descrevemos aqui um método chamado MassSQUIRM (quantificação por espectrometria de massa utilizando metilação redutiva isotópica) que é baseado em metilação redutiva de grupos amina com formaldeído deuterado para forçar todos os lisinas ser di-metilado, tornando-as assim essencialmente os mesmos espécies químicas e, portanto, ionizar o mesmo (Figura 1B). A diferença química apenas após a metilação redutiva é hidrogénio e deutério, que não afecta a eficiência de ionização MALDI. O ensaio MassSQUIRM é específico para produtos de reacção desmetilase com lisinas un-, mono-ou di-metilados. O ensaio é também aplicável a metiltransferases lisina dando o same produtos de reacção. Aqui, nós usar uma combinação de química metilação redutiva e espectrometria de massa MALDI para medir a actividade de LSD1, um desmetilase lisina capaz de remover di-e mono-metilo grupos, sobre um substrato de péptido sintético 5. Este ensaio é simples e facilmente acessíveis a qualquer laboratório com acesso a um espectrómetro de massa MALDI em laboratório ou através de um mecanismo proteômica. O ensaio tem ~ gama de 8 vezes dinâmico e é prontamente adaptar ao formato de placa 5.

Apresentamos um método para o uso de espectrometria de massa MALDI e química metilação redutiva para quantificar as mudanças na metilação da lisina.

Aplicação de Medidas para MassSQUIRM quantitativa da actividade demetilase Lisina

Recentemente, reguladores epigenéticos foram descobertos como elementos fundamentais em diversas doenças 1-3. Como resultado, essas enzimas são alvos primordiais para pequenas...

O protocolo mass squirm tem como objetivo quantificar a atividade de lisina desmetilase utilizando metilação isotópica e espectrometria de massas MALDI. Primeiro, realize reações de desmetilação catalisadas por enzimas em peptídeos contendo lisina metilada. Em seguida, metile quimicamente os produtos peptídicos da reação de desmetilase com formaldeído deuteriorado para produzir peptídeos uniformemente metilados, que ionizam da mesma maneira por MALDI. Prossiga para quantificar cada espécie peptídica por espectrometria de massas e considere a sobreposição isotópica. A fim de identificar as quantidades relativas de peptídeos metilados com zero, mono, di e trimetilação, os resultados do mass squirm determinam as quantidades relativas de cada produto da reação de desmetilase com base nas alterações de massa.A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como a espectrometria de massa rotineira de bolor, é que a pontuação de massa leva em conta as diferenças de ionização entre peptídeos com diferentes níveis de metilação. Tivemos pela primeira vez a ideia para esta abordagem ao desenvolvermos um método para medir níveis de acetilação de histonas utilizando anidrido acético isotopicamente pesado. O desafio desta técnica é a extração dos dados de área dos picos, o que pode ser complicada pela sobreposição dos envelopes isotópicos dos peptídeos.Para a reação de desmetilase, combine 125 nanogramas da enzima recombinante lisina específica desmetilase um com 0,25 microgramas do peptídeo de histona H3 dimetilado biotinilado em um volume final de 20 microlitros de tampão desmetilase. Prepare também uma amostra controle contendo 0,25 microgramas do peptídeo sem a enzima LSD1 e incube os tubos de reação e controle por duas horas a 37 graus Celsius. Em seguida, para preparar as esferas porosas R2 de 20 mícrons, misture volumes iguais de esferas e metanol.Em seguida, adicione 10 volumes de ácido trifluoroacético (TFA), adicione oito microlitros de microesferas porosas a cada amostra e agite por 15 minutos à temperatura ambiente. Enquanto isso, prepare duas pontas zip C18. Pipete duas vezes com 20 microlitros de TFA 0,1%, quatro vezes com acetonitrila 70% contendo TFA 0,1% e novamente quatro vezes com TFA 0,1%.Em seguida, carregue as duas amostras nas pontas zip previamente condicionadas. Com uma pipeta, empurre o volume através da resina C 18. Repita até que todo o volume de ambas as amostras tenha passado pelas pontas zip.Em seguida, lave as pontas tipo zip duas vezes com 20 microlitros de TFA 0,1%, elua as amostras em 40 microlitros de tampão ilusão e seque completamente com um concentrador de vácuo. Primeiro, ressuspenda a amostra em 100 microlitros de tampão fosfato 50 milimolar, pH 7,4. Em seguida, adicione oito microlitros de borodimetilamina e 16 microlitros de formaldeído reduzido.Incubar a quatro graus Celsius por duas horas. Repetir a metilação redutiva adicionando dimetilamina comum e formaldeído deutério e incubar por duas horas. Pela terceira vez, adicionar dimetilamina comum e incubar a quatro graus Celsius por 15 horas.Quenche a reação com 12,5 microlitros de tris um molar, pH 7,4, e prossiga até a secagem completa com um concentrador de vácuo. Primeiro, ressuspenda as amostras dos controles e das reações com desmetilase em 100 microlitros de tampão fosfato 50 milimolar, pH 7,4.Agora, adicione oito microlitros de esferas porosas às amostras de controle e de reação da desmetilase e colete nas pontas zip conforme mostrado anteriormente. Elua em volumes de dois microlitros sobre uma placa de amostra MALDI e deixe secar à temperatura ambiente até a cristalização. Prossiga para analisar as amostras por espectrometria de massas.Abra os arquivos de espectro no software de trabalho e exporte para o software M sobre Z. Em seguida, verifique os produtos da reação por espectrometria de massas em tandem. Primeiro, determine a razão entre as áreas dos picos dos isótopos carbono 13 C dois e carbono 13 C quatro em relação ao pico mono-isotópico da amostra controle.Use essas proporções calculadas para quantificar a quantidade relativa de peptídeo existente em cada modificação. Estado da amostra da reação de desmetilase. A enzima LSD1 pode ser efetivamente utilizada na quantificação por espectrometria de massa da desmetilação de lisina.Como a reação controle não passa por metilação redutiva, ela indica o envelope isotópico típico para este peptídeo. As áreas dos picos resultantes determinam as proporções de fundo do peptídeo existente em carbono 13 C dois e carbono 13 C quatro. Os estados isotópicos, juntamente com as áreas dos picos do espectro de massas da reação controle, permitem a quantificação da quantidade relativa de peptídeo existente em cada estado de modificação. Na reação de desmetilase, as áreas dos picos dessas reações controle e desmetilase determinam 33,7% de lisina dimetilada em 4, 42,0% de lisina monometilada em 4 e 24% de lisina não metilada em 4.Essa abordagem de squam em massa oferece insights fundamentais para o campo da epigenética das histonas, como a forma como a desmetilação de resíduos de lisina nas histonas contribui para diversas doenças. Embora este ensaio de metilação tenha sido aplicado para estudar desmetilases, ele também pode ser utilizado para investigar metiltransferases.

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Biology

Biologia

A atividade da descarboxilase induzível lisina é monitorado pela reação do substrato L-lisina e cadaverina o produto com 2,4,6 trinitrobenzensulfonic-ácido para formar adutos que têm solubilidade diferencial em tolueno.

Um ensaio para medir a atividade do Escherichia coli Induzível Lisina Decarboxyase

Dois métodos para atribuir os sinais de ressonância magnética nuclear de α e ε-dimetilamina de uma lisina N-terminal 13C-metilada redutora são descritos. Um método utiliza a seletividade induzida pelo pH da reação de metilação redutiva e o outro usa aminopeptidase para remover seletivamente a lisina N-terminal.

Métodos para identificar as ressonâncias de RMN da amina N-terminal 13C-dimetil em proteínas metiladas redutivamente

Ao combinar nativa e reticulação da cromatina imunoprecipitação com alta resolução de Espectrometria de Massa, ChroP abordagem permite a dissecar a arquitectura proteómica composto de histonas modificações, variantes e proteínas não-histonic sinergia na cromatina domínios funcionalmente distintos.

A Abordagem ChroP Combina chip e Espectrometria de Massa dissecar proteômica Paisagens Locus específicas da cromatina

As matrizes de peptídeos sintetizadas pelo método SPOT podem ser usadas para analisar a especificidade do substrato das proteínas lisina metiltransferases (PKMTs) e para definir o espectro de substrato das PKMTs para entender seu papel biológico. Este protocolo descreve como sintetizar matrizes de peptídeos, metilá-las com PKMTs e analisar os resultados.

Especificidade Análise de Proteína Lisina Metiltransferases Usando SPOT Peptide Arrays

Um protocolo para sintetizar peptóides com funcionalidade catiônica mista na mesma sequência é apresentado (monômeros do tipo lisina e arginina). Testes subsequentes desses compostos contra Leishmania mexicana, os protozoários parasitas causadores da leishmaniose cutânea, também são descritos.

Um método eficiente para a Síntese de Peptóides com Monómeros Mixed tipo de lisina / arginina-tipo e avaliação da sua actividade anti-leishmaniose

Aqui, apresentamos a quantificação imparcial de ocupação acetilação e/ou succinylation proteína site-specific (estequiometria) de um proteome inteira através de uma análise ratiometric de modificações endógenas às modificações introduzidas após quantitativa química acilação usando anidridos rotulado de isótopo estáveis. Em combinação com a espectrometria de massa sensível aquisição de dados independente, obtêm-se medições de ocupação do local exato.

Quantificação de Estoicometria de Acetilação e Succinilação de Lisinas Proteicas em Sítios Específicos Usando Espectrometria de Massa de Aquisição de Dados Independente

Aqui, apresentamos um protocolo para medir KDM1A engajamento alvo em uma célula humana ou animal, tecido ou amostras de sangue tratadas com inibidores da KDM1A. O protocolo emprega a marcação do chemoprobe da enzima livre de KDM1A e a quantificação direta da ocupação do alvo usando immunoensaios quimioprobe-baseados e pode ser usada em estudos pré-clínicos e clínicos.

Medição direta do KDM1A Target Engagement usando imunoensaios baseados em Quimiosonda

A proteína arginina (R)-metilação é uma modificação pós-translacional generalizada que regula múltiplas vias biológicas. A espectrometria de massas é a melhor tecnologia para traçar globalmente o perfil do R-metil-proteoma, quando acoplada a abordagens bioquímicas para enriquecimento peptídico modificado. O fluxo de trabalho projetado para a identificação de alta confiança da R-metilação global em células humanas é descrito aqui.

Uma Abordagem Proteômica Baseada em Espectrometria de Massa para Análise de R-Metilação de Proteínas Global e de Alta Confiança

Esses protocolos fornecem a metodologia utilizada para avaliar a atividade enzimática de membros individuais da família de proteínas metiltransferase (PRMT) nas células. Diretrizes detalhadas sobre a avaliação da atividade prmt usando biomarcadores endógenos e exógenos, anticorpos de reconhecimento de metila-arginina e compostos de ferramentas inibidoras são descritos.

Métodos Quantitativos para Estudar Proteína Arginina Metiltransferase 1-9 Atividade em Células

Este estudo estabeleceu um método que utiliza a expansão do código genético para incorporar com sucesso a lactil-lisina (Klac) em locais específicos da enolase-1 humana (hENO1) e da GFP superfolder (sfGFP) em Escherichia coli e células de mamíferos.

Lactilação de Lisina Específica para Local via Expansão do Código Genético em E. coli e Células de Mamíferos

Aprenda a quantificar a atividade da lisina desmetilase usando espectrometria de massa MALDI e marcação isotópica. Este método melhora a precisão na detecção de mudanças de metilação em sistemas biológicos.

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