Name: Ex Vivo modelo organotípico córnea de Agudos Herpes simplex vírus tipo epiteliais eu Infecção (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: Aprenda a cultivar córneas ex vivo de coelhos e doadores humanos para estudar infecção por herpes simplex tipo I. Este modelo organotípico oferece vantagens sobre culturas celulares tradicionais na pesquisa de virologia ocular.

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O apoio do Banco de Olhos do Lions de Delaware Valley foi inestimável para este trabalho. Anticorpo monoclonal contra o principal do mouse ICP8 foi um presente tipo de Dr. David Knipe (Harvard Medical School). Agradecemos também o Dr. Stephen Jennings (Drexel University College of Medicine) e Dr. Peter Laibson (Wills Eye Institute) para discussões úteis e conhecimentos.

Todos os reagentes e equipamentos foram comprados estéreis ou foram esterilizadas antes do procedimento. Este artigo descreve as etapas de implementação do modelo ex vivo começando com um olho pré-enucleado. Em nossos experimentos, utilizamos frescos olhos inteiros de jovens (8-12 semanas) coelhos albinos (Pel-Freez Biologicals, Rogers, AR). Além disso, usamos córneas humanas obtidos a partir do banco de olhos local. Se realizar a enucleação si mesmo, tome cuidado para não danificar a córnea ou o limbo durante o procedimento. Protocolos enucleação de coelho pode ser encontrada em outras duas. Parte 1: Excisão do botão córneo <ol><li> Molhe uma estreita faixa de gaze com PBS e envolvê-la em torno do globo ocular para facilitar a segurá-lo durante o procedimento. </li><li> Usar um bisturi afiado para fazer uma incisão na esclera tangencial, cerca de 0,5 cm de distância a partir do limbo. </li><li> Use uma tesoura afiada para estender a incisão e completamente especial sobre o consumo do corneoscleral botão. </li><li> Uma vez que o botão córneo é isolado, longe provocar a íris, segurando a borda escleral com uma pinça. Evitar danificar o endotélio ou exercer pressão excessiva sobre a córnea. </li></ol> Parte 2: Introdução de Córnea em Cultura organotípicas <ol><li> Córneas explantadas são cultivadas em Meio Essencial Mínimo (MEM) suplementado com não-aminoácidos essenciais (1X), L-glutamina (2 mM), penicilina (200 U / ml) e estreptomicina (200 ug / ml). Um agente antifúngico, tal como anfotericina, podem também ser adicionados, se necessário. </li><li> Prepara-se uma solução de 1% de agarose num meio de cultura e mantê-lo pronto a 55 ° C. </li><li> Enxaguar bem a córnea em PBS estéril contendo penicilina (200 U / ml) e estreptomicina (200 ug / ml). </li><li> Coloque o lado epitelial da córnea para baixo dentro de um poço de uma placa de mancha estéril. </li><li> Adicionar o meio de agarose contendo a concavidade endoteliais da córnea apenas o suficiente paraenchê-lo completamente. Permitir min ~ 1 para a agarose solidificar. </li><li> Coloque a córnea, com o meio de cultura de apoio lateral gel andaime epitelial para cima para um prato de cultura de tecido de 35 milímetros e adiciona-se a cobrir a superfície epitelial. </li><li> A córnea pode ser cultivado neste meio durante mais de uma semana, com mudanças de meio a cada 48 h. </li></ol> Parte 3: A infecção com HSV-1 e de tratamento com medicamentos experimentais <ol><li> Adicionar 1 ml de meio contendo a quantidade desejada de vírus em um prato de cultura de tecido 35 milímetros. Nós normalmente infectam com 1x10 PFU 4 de estirpe KOS HSV-1 por córnea. Os títulos de nossas ações são determinadas através da realização de ensaios de placa no CV-1 monocamadas. </li><li> Coloque a córnea em conjunto com o lado do andaime agarose epitelial para baixo para o meio contendo vírus. </li><li> Coloque a córnea num incubador de cultura de tecido para infectar durante 1 hora com agitação intermitente a cada 10-15 minutos. </li><li> Depois de 1 hora, aspirar o vírus contai-ning meio e lavar 2-3 vezes com PBS para remover quaisquer partículas residuais virais. </li><li> Coloque a córnea de volta para a sua posição anterior e adicionar o meio de cultura fresco para cobrir a superfície epitelial. </li><li> Os tratamentos experimentais pode ser iniciada antes ou após a infecção, dependendo da natureza do ensaio. </li><li> Meio de cultura é trocado a cada 48 horas. </li></ol> Parte 4: Coleta de Amostra <ol class="lalpha"><li> Meio de ensaio em placas de análise. Misturar bem o meio e utilizá-la imediatamente para um ensaio de placa ou armazenar a -80 ° C para uso posterior, se a recolha de amostras em diferentes pontos temporais. </li><li> DNA, RNA, proteínas ou células de epitélio da córnea <ol><li> Remover o andaime de agarose e enxaguar a córnea bem com PBS. </li><li> O anel de tecido escleral Excise da córnea para garantir que o material só epitelial da córnea é recolhida. </li><li> Ucantar um bisturi, raspar as células epiteliais da córnea no tampão apropriado, dependendo do tipo de material a ser isolado. Para o isolamento de DNA e RNA, usamos o Kit Blood &amp; Tissue Dneasy e o Kit Mini RNeasy, respectivamente (QIAGEN, Hilden, Alemanha). Para a coleta de lisados ​​de proteínas, usamos tampão Laemmli. Para a análise de citometria de fluxo de células epiteliais da córnea, é pré-incubar as córneas em uma pequena quantidade de tripsina para desprender as células, e, em seguida, desalojar-los para a tripsina com um bisturi. Uma vez que a raspagem do epitélio da córnea não produz a mesma quantidade de tecido, é importante incluir controlos adequados ao analisar as amostras. Usamos rRNA 18S como um transcrito de referência em qRT-PCR, GAPDH como gene de referência em qPCRs e nucleolin como um controlo de carga para transferência de Western. </li></ol></li><li> Amostras de tecido para imuno-histoquímica ou imunofluorescência <ol><li> Retire o andaime de agarose e lavar o milhoEa bem com PBS. </li><li> Dependendo do seu objectivo experimental, utilize a córnea para fazer um bloco de tecido ou de um bloco de parafina do tecido congelado, como mostrado no vídeo. Nós seguimos os procedimentos padrão quando se prepara cortes de tecido da córnea. </li></ol></li></ol> Resultados representativos A maior parte dos métodos disponíveis para o estudo de células em cultura de tecidos pode ser facilmente adaptado para o uso em córneas infectadas com HSV-1 in vivo ex. Mostrado aqui são resultados representativos para algumas das técnicas mais comuns aplicáveis ​​ao estudo da infecção por HSV-1 - qPCR (Figura 1D), qRT-PCR (Figura 1B), Western blot (Figura 1F), ensaio de placa (Figura 1C), e tecido de imunofluorescência (Figura 1E). <img src="/files/ftp_upload/3631/3631fig1.jpg" alt="Figura 1" /> Figura 1. Análise de córneas infectadas com HSV-1 ex vivo. (A) Representação esquemática do modelo ex vivo de aguda epitelial corneal HSV-1 infecção. (BF) Análise de córneas infectadas utilizando o método descrito neste artigo de vídeo. Córneas explantadas de coelho foram infectados com 1x10 4 PFU / córnea da estirpe KOS de HSV-1 e cultivadas na presença (PAA) ou ausência (Mock) de ácido fosfonoacético (400 ug / ml), um conhecido inibidor da replicação do HSV. (B) O ARN total foi colhido nos pontos de tempo indicados, e a transcrição viral foi avaliada por qRT-PCR com os iniciadores para o HSV-1 de polimerase. Primers contra rRNA 18S foram usados ​​como referência. n = 3. As barras de erro indicam ± SEM. (C) O meio de cultura foi recolhido a 48 hpi e a produção de partículas infecciosas foi avaliada por ensaio de placas em monocamadas de CV-1 (D). O ADN total foi recolhido a 48 hpi e a replicação do genoma viral foi avaliada em um ensaio qPCR com iniciadores para o HSV-1 do genoma. PrIMers contra GAPDH foram utilizados como referência. n = 3. As barras de erro indicam ± SEM. (E) Mock tratados com córneas foram rapidamente congeladas a-48 hpi, seccionados e analisados ​​por imunofluorescência indirecta para detectar a presença de uma proteína viral precoce (ICP8) dentro do epitélio infectado. Os núcleos são contrastadas com Höchst 33258. (F) Os lisados ​​de proteína foram recolhidas às 48 hpi e a expressão de uma proteína viral (ICP0) foi avaliada por Western blot. BCA ensaio foi utilizado para assegurar carga igual das amostras. IPH = horas após a infecção.

<ol><li>Kaye, S., Choudhary, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+keratitis%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex keratitis.</a> Prog. Retin. Eye Res. 25, 355-380 (2006).</li>
<li>Holmberg, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enucleation+of+exotic+pets%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Exotic+Pet+Medicine%22%5BJournal%5D)">Enucleation of exotic pets.</a> Journal of Exotic Pet Medicine. 16, 88-94 (2007).</li>
<li>Remeijer, L., Osterhaus, A., Verjans, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+herpes+simplex+virus+keratitis%3A+the+pathogenesis+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Ocul.+Immunol.+Inflamm%22%5BJournal%5D)">Human herpes simplex virus keratitis: the pathogenesis revisited.</a> Ocul. Immunol. Inflamm. 12, 255-285 (2004).</li>
<li>Foreman, D. M., Pancholi, S., Jarvis-Evans, J., McLeod, D., Boulton, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+organ+culture+model+for+assessing+the+effects+of+growth+factors+on+corneal+re-epithelialization%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">A simple organ culture model for assessing the effects of growth factors on corneal re-epithelialization.</a> Exp. Eye Res. 62, 555-564 (1996).</li>
<li>Xu, K. P., Li, X. F., Yu, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+organ+culture+model+for+assessing+epithelial+responses+to+surfactants%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Corneal organ culture model for assessing epithelial responses to surfactants.</a> Toxicol. Sci. 58, 306-314 (2000).</li>
<li>Klausner, E. A., Peer, D., Chapman, R. L., Multack, R. F., Andurkar, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Corneal gene therapy.</a> J. Control Release. 124, 107-133 (2007).</li>
<li>Halford, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ICP0+antagonizes+Stat+1-dependent+repression+of+herpes+simplex+virus%3A+implications+for+the+regulation+of+viral+latency%5BTitle%5D)+AND+%22Virol.+J%22%5BJournal%5D)">ICP0 antagonizes Stat 1-dependent repression of herpes simplex virus: implications for the regulation of viral latency.</a> Virol. J. 3, 44(2006).</li>
<li>Bhattacharjee, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+treatment+of+ocular+HSK+with+a+human+apolipoprotein+E+mimetic+peptide+in+a+mouse+eye+model%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effective treatment of ocular HSK with a human apolipoprotein E mimetic peptide in a mouse eye model.</a> Invest Ophthalmol Vis. Sci. 49, 4263-4268 (2008).</li>
<li>Novitskaya, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Difficulties+imaging+herpes+simplex+keratitis+with+fluorescein+isothiocynate-labeled+anti-HSV-1+antibodies+in+an+ex+vivo+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">Difficulties imaging herpes simplex keratitis with fluorescein isothiocynate-labeled anti-HSV-1 antibodies in an ex vivo model.</a> Cornea. 28, 421-425 (2009).</li>
<li>Sharma, A., Shimeld, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+immunofluorescence+to+diagnose+herpes+simplex+virus+keratitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">In vivo immunofluorescence to diagnose herpes simplex virus keratitis in mice.</a> Br. J. Ophthalmol. 81, 785-788 (1997).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Neste artigo de vídeo foi descrito um método para o estudo agudo epitelial da córnea infecção por HSV-1 em um modelo ex vivo. Este modelo é um degrau entre a utilidade in vitro e a modelos in vivo, uma vez que permite a validação fisiologicamente precisa dos resultados de cultura de células e, deste modo, limita a quantidade de experimentação animal, que deve ser realizada. Além disso, o modelo ex vivo proporciona uma oportunidade única e valiosa para estudar a infecção herpe...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reagentes / Suprimentos </td><td> Companhia </td><td> Catálogo # </td></tr><tr><td> Meio Essencial Mínimo (MEM) </td><td> Mediatech </td><td> 10-010 CV- </td></tr><tr><td> Não-aminoácidos essenciais (solução 100x) </td><td> Mediatech </td><td> 25-025 CI- </td></tr><tr><td> L-Glutamina </td><td> Mediatech </td><td> 25-005 CI- </td></tr><tr><td> Penicilina G Sal de sódio </td><td> Sigma </td><td> P3032 </td></tr><tr><td> O sal de sulfato de estreptomicina </td><td> Sigma </td><td> S9137 </td></tr><tr><td> Agarose </td><td> Invitrogen </td><td> 15510-027 </td></tr><tr><td> Tampão fosfato salino (PBS) </td><td> Preparado no laboratório </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Tripsina EDTA (1x) &lt;/ Td&gt; <td> Mediatech </td><td> 25-053 CI- </td></tr><tr><td> Sangue Dneasy &amp; Kit Tecido </td><td> QIAGEN </td><td> 69504 </td></tr><tr><td> Kit Mini RNeasy </td><td> QIAGEN </td><td> 74104 </td></tr><tr><td> Tampão de Laemmli </td><td> Preparado no laboratório </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Temperatura ideal de corte composto (OCT) </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4583 </td></tr><tr><td> Inteiros olhos do coelho (jovem) </td><td> Pel-Freez </td><td> 41.211-2 </td></tr><tr><td> As córneas humanas e olhos inteiros </td><td> Banco de Olhos local </td><td> N / A </td></tr><tr><td> 12 Placa local bem Porcelana </td><td> Abastecimento de Avogadro Lab </td><td> 1877 </td></tr><tr><td> 35 placas de cultura de tecidos milímetros </td><td> Falcão </td><td> 353001 </td></tr><tr><td> 6 BemPlaca de cultura de células </td><td> Greiner Bio-One </td><td> 657160 </td></tr><tr><td> Cryomold Intermediário </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4566 </td></tr></tbody></table>

ex vivo modelo organotípico córnea de agudos herpes simplex vírus tipo epiteliais eu infecção

Ex Vivo Organotypic Corneal Model of Acute Epithelial Herpes Simplex Virus Type I Infection

Ceratite herpética é uma das mais graves patologias associadas com o vírus do herpes simplex tipo 1 (HSV-1). Ceratite herpética é actualmente a principal causa de cegueira córnea tanto derivados e infecção associada no mundo desenvolvido. Apresentação típica de ceratite herpética inclui infecção do epitélio da córnea e, por vezes, o estroma eo endotélio da córnea profunda, conduzindo a tais patologias corneanas permanentes como cicatrizes, desbaste, e opacidade 1. Corneal infecção HSV-1 é tradicionalmente estudada em dois tipos de modelos experimentais. O modelo in vitro, em que as monocamadas de culturas de células epiteliais da córnea são infectadas numa placa de Petri, oferece nível simplicidade, elevado de reprodutibilidade, experiências rápidas, e custos relativamente baixos. Por outro lado, o modelo in vivo, em que os animais, tais como coelhos ou ratos são inoculados directamente na córnea, oferece uma fisiológica altamente sofisticadosistema, mas tem custos mais elevados, experimentos mais longos, cuidado de animais necessário, e um maior grau de variabilidade. Neste artigo de vídeo, que proporcionam uma demonstração detalhada de um novo modelo ex vivo de corneal epitelial infecção HSV-1, que combina as vantagens de ambos os vitro e em modelos in vivo o. O modelo ex vivo utiliza córneas intactas organotypically mantidas em cultura e infectadas com HSV-1. A utilização do modelo ex vivo permite conclusões altamente fisiologicamente baseados, no entanto, é bastante barato e requer compromisso de tempo comparável à do modelo in vitro.

Neste artigo de vídeo que descreve o uso de um novo<em&gt; Ex vivo</em&gt; Modelo de herpes simplex vírus tipo agudos eu infecção do epitélio da córnea.

Ex Vivo modelo organotípico córnea de Agudos Herpes simplex vírus tipo epiteliais eu Infecção

A ceratite herpética é uma das patologias mais graves associadas ao vírus herpes simplex tipo 1 (HSV-1). A ceratite herpética é atualmente a principal...

Eu sou Jane Clifford, economista. Sou professora e chefe do departamento de bioquímica e biologia molecular na Faculdade de Medicina da Drexel University. E meu nome é Ola Iv, e sou estudante de MD PhD no laboratório da Dra. Clifford. O vídeo que Oli e eu preparamos para você demonstra a cultura ex vivo de córneas obtidas de coelhos e doadores humanos.Utilizamos essas córneas para estudar a infecção por vírus herpes, e certamente são aplicáveis para outras doenças da córnea, para o estudo de outras doenças da córnea, sendo um modelo ex vivo particularmente relevante em comparação com células e culturas monocamada. A ceratite herpética é uma das patologias mais graves associadas ao vírus do herpes simples tipo um. Atualmente, é a principal causa de cegueira decorrente de córnea e associada a infecção no mundo desenvolvido.A ceratite herpética é tradicionalmente estudada em dois tipos de modelos experimentais. O modelo in vitro, no qual monocamadas cultivadas de células epiteliais da córnea são infectadas em uma placa de Petri, oferece simplicidade, alto nível de replicabilidade, experimentos rápidos e custos relativamente baixos. Por outro lado, o modelo in vivo de ceratite herpética, no qual animais como coelhos ou camundongos são inoculados diretamente na córnea, oferece um sistema fisiológico altamente sofisticado, mas apresenta custos mais elevados, experimentos mais longos, necessidade de cuidados com os animais e um grau maior de variabilidade.Neste artigo em vídeo, apresentamos uma demonstração detalhada de um novo modelo ex vivo de infecção aguda do epitélio corneano pelo HSV tipo 1, que combina as vantagens dos modelos in vitro e in vivo. O modelo ex vivo utiliza córneas intactas mantidas tipicamente em cultura e infectadas com HSV. A utilização do modelo ex vivo permite conclusões altamente baseadas em fisiologia, sendo entretanto bastante econômico e exigindo um compromisso de tempo comparável ao do modelo in vitro.Prepare o seguinte antes de iniciar o procedimento: placa de Petri, solução salina tamponada com fosfato, meio de cultura corneana e meio para suporte, placa de poços, tira de gaze, olho fresco, bisturi, pinça e tesoura afiada. Umedeça uma tira estreita de gaze com PBS e enrole-a ao redor do olho para segurá-lo firmemente.Durante o procedimento, use um bisturi afiado para fazer uma incisão tangencial na esclera a cerca de meio centímetro de distância da ús. Use tesoura para excisar completamente o botão corneoescleral. À medida que a incisão é estendida, a pressão dentro do globo ocular diminuirá, tornando difícil segurar e manipular o tecido.Por esse motivo, recomendamos o uso de uma tesoura afiada e confiável nesta etapa. Uma vez isolado o botão esclerocorneano, separe cuidadosamente a íris enquanto segura a borda escleral com uma pinça. Evite danificar o endotélio ou exercer estresse excessivo sobre a córnea.Prepare uma solução de meio com 1% de agarose e mantenha-a pronta. A 55 graus Celsius, lave cuidadosamente a córnea em PBS estéril contendo penicilina e estreptomicina. Posicione a córnea com o lado epitelial voltado para baixo na cavidade de uma placa Spotlight estéril.Adicione o agros contendo o meio à concavidade endotelial da córnea. Apenas o suficiente para preenchê-la completamente. Aguarde cerca de um minuto para que o agros solidifique.Coloque a córnea com o suporte de andrógrafo com o lado epitelial voltado para cima em uma placa de cultura de tecidos e adicione meio MEM suplementado para cobrir a superfície epitelial. A córnea pode ser cultivada dessa forma por mais de uma semana, com trocas de meio a cada 48 horas. Adicione um mililitro de meio contendo a quantidade desejada de vírus em uma placa de cultura de tecidos.Coloque a córnea com o epitélio do suporte de agrose voltado para baixo no meio contendo o vírus. Coloque a córnea no incubador de cultura de tecidos para infectar durante uma hora, com agitação intermitente a cada 10 a 15 minutos após o início da hora. Aspire o meio contendo o vírus e lave duas a três vezes com PBS para remover quaisquer partículas virais residuais.Ao enxaguar com PBS, tenha cuidado para não deslocar a córnea do suporte agro. Adicione meio fresco para cobrir a superfície epitelial. Os tratamentos experimentais podem ser iniciados antes ou após a infecção, dependendo da natureza do experimento.O meio de cultura é trocado a cada 48 horas. Misture bem o meio e utilize-o imediatamente para um ensaio de placa, ou armazene-o a menos 80 graus Celsius para uso posterior. Se for coletar amostras em diferentes momentos, lave bem a córnea com PBS.Remova a estrutura de agarose, separe o anel de tecido escleral da córnea para garantir que apenas material epitelial corneano seja coletado. Com um bisturi, raspe as células epiteliais corneanas no tampão apropriado, dependendo do tipo de material a ser isolado. A remoção da borda escleral permite que a córnea inche rapidamente ao absorver água.Como o inchaço pode dificultar a raspagem, recomendamos realizar rapidamente esta etapa e enxaguar a placa de Petri para garantir que toda a amostra tenha sido coletada. Remova o suporte agro e enxágue a córnea bem com PBS.Utilize a córnea para confeccionar um bloco de tecido em parafina ou um bloco de tecido congelado, conforme demonstrado aqui, dependendo do seu objetivo experimental. Incorpore a córnea em composto de temperatura ideal para corte dentro de uma forma para espécime. Congele rapidamente a córnea em um banho de gelo seco com etanol. O que mostramos aqui neste vídeo é o preparo das córneas, a dissecação da córnea, o seu posicionamento em cultura ex vivo e a infecção das córneas com o vírus do herpes.Isso forneceu a técnica para um modelo que tem sido muito útil para nós no estudo da infecção pelo vírus do herpes, ex vivo, e esperamos que seja útil a outros em seus experimentos com células corneanas.

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A maioria dos estudos de doença herpética corneal utilizar um modelo de infecção primária. No entanto, a infecção primária por HSV-1 normalmente não conduzem à doença humana. Aqui nós descrevemos um modelo recorrente de doenças da córnea herpética, que mais imita a doença humana.

Ceratite herpética recorrente Estroma em camundongos, um modelo para estudar HSK Humanos

Este vídeo descreve um protocolo para configurar um modelo ex vivo para ceratite bacteriana usando um botão corneoescleral dissecado do olho suíno. As bactérias inoculadas atravessam as incisões epiteliais da córnea para invadir o estroma subjacente e estabelecer uma infecção nos tecidos da córnea que imita a infecção in vivo.

Modelo de Córnea Ex vivo de Ceratite Bacteriana em Suínos: Uma Técnica para Estabelecer Infecção Bacteriana em Células Epiteliais da Córnea

Este vídeo demonstra o método para realizar um ensaio de placa usando um vírus obtido da córnea suína infectada. A córnea suína é usada para testar a eficácia antiviral de drogas experimentais.

Determinando a eficácia antiviral de drogas experimentais por meio de um ensaio de placa

Foi estabelecido um protocolo de hibridização fluorescente in situ para a detecção de um genoma do vírus de ADN persistente nas secções de tecido de modelos animais. Este protocolo permite estudar processo de infecção por codetection do genoma viral, os seus produtos de ARN, e proteínas virais ou celulares no interior das células individuais.

A detecção do genoma e Transcrições de um vírus DNA persistente em tecidos neuronais por fluorescentes Em situ Hibridização Combinado com Imunocoloração

A pele é um tecido-alvo do patógeno humano vírus herpes simplex tipo 1 (HSV-1). Para explorar a rota de invasão do HSV-1 no tecido, estabelecemos um modelo de infecção ex vivo de lâminas epidérmicas murinas que representam a camada mais externa da pele.

Ex Vivo Infecção de Murino Epiderme com vírus herpes simplex tipo 1

Um protocolo para uma ex modelo de cultura da córnea órgão vivo, útil para estudos de cicatrização de feridas é descrita. Este sistema de modelo pode ser usado para avaliar os efeitos de agentes para promover a cicatrização regenerativa ou toxicidade de drogas em ambiente 3D multicelular organizada.

Ex Vivo modelo de cultura órgão da córnea para cicatrização de feridas estudos

Este artigo descreve um protocolo passo a passo para criar um modelo de ceratite porcina ex vivo de ceratite bacteriana. Pseudomonas aeruginosa é usado como organismo prototípico. Este modelo inovador imita a infecção in vivo, pois a proliferação bacteriana depende da capacidade da bactéria de danificar o tecido córnea.

Estabelecendo um modelo de córnea porcina ex vivo para estudar tratamentos medicamentosos contra ceratite bacteriana

Descrevemos o uso de uma córnea suína para testar a eficácia antiviral de drogas experimentais.

Explante de tecido córnea porcina para estudar a eficácia do vírus Herpes Simplex-1

Aqui, um protocolo para criar uma ferida de abrasão epitelial córnea central no rato usando uma trefina e um taco de golfe sem corte é descrito. Este modelo de cura de feridas na córnea é altamente reprodutível e agora está sendo usado para avaliar a cicatrização comprometida da ferida córnea no contexto das doenças.

Um modelo de abrasão epitelial para estudar a cicatrização da ferida córnea

Aqui, modelos animais baseados em camundongos e coelhos são desenvolvidos para lesão mecânica e química do epitélio corneano para triagem de novas terapêuticas e do mecanismo subjacente.

Modelos Animais Ex Vivo e In Vivo para Lesões Mecânicas e Químicas do Epitélio da Córnea

Desenvolvemos um modelo de rato de inflamação grave da córnea por meio de curetagem do epitélio da córnea combinada com suturas da córnea. O estudo avaliou os padrões de inflamação da córnea, proliferação epitelial e alterações nas células-tronco límbicas sob condições inflamatórias.

Estabelecendo um modelo de inflamação grave da córnea em ratos com base na curetagem do epitélio da córnea combinada com suturas da córnea

Aprenda a cultivar córneas ex vivo de coelhos e doadores humanos para estudar infecção por herpes simplex tipo I. Este modelo organotípico oferece vantagens sobre culturas celulares tradicionais na pesquisa de virologia ocular.

Ex Vivo modelo organotípico córnea de Agudos Herpes simplex vírus tipo epiteliais eu Infecção

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