-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PT

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pt_BR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Métodos de auto-administração intravenosa em um modelo de camundongo
Métodos de auto-administração intravenosa em um modelo de camundongo
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Methods for Intravenous Self Administration in a Mouse Model

Métodos de auto-administração intravenosa em um modelo de camundongo

Full Text
54,992 Views
12:09 min
December 8, 2012

DOI: 10.3791/3739-v

Elizabeth K. Kmiotek1, Corey Baimel1, Kathryn J. Gill1

1Addictions Unit,McGill University Health Centre

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

A auto-administração intravenosa paradigma (IVSA) é considerado como sendo o padrão de ouro para examinar as propriedades de reforço de drogas de abuso em roedores. Este manuscrito descreve os procedimentos experimentais e técnicas cirúrgicas necessárias para a obtenção de dados confiáveis ​​IVSA. Em particular, a implantação do cateter meticulosa e manutenção são realçados.

Olá, meu nome é Elizabeth Kotick e estou aqui do laboratório da Dra. Katherine Gill na unidade de vícios do Centro de Saúde da Universidade McGill. Hoje vou mostrar como realizar a cirurgia de cateterismo necessária para a realização de estudos de autoadministração intravenosa. Vou mostrar como inserir o cateter, bem como algumas dicas para manter a permeabilidade do cateter.

Durante as sessões de autoadministração intravenosa de nicotina, os animais são conectados ao Tai em tubos de plástico e as infusões de nicotina são administradas pelas bombas de infusão anexadas. Caixas operantes foram compradas de associados médicos. Cada caixa está equipada com duas alavancas de mouse ultrassensíveis.

Existem alguns itens que precisam ser preparados antes da cirurgia para inserir o cateter na veia. Uma agulha de calibre 20 precisa ser adaptada para deslizar o tubo para baixo na veia. Raspe cerca de dois centímetros da parte superior da haste da agulha, criando um canal que será usado para guiar o tubo do cateter na veia.

Em seguida, prepare as seringas para lavar e verificar o cateter. 12 centímetros de tubo são presos em uma extremidade à agulha de calibre 26 da seringa, enquanto a outra extremidade é esticada sobre uma agulha de calibre 23. Para facilitar a fixação do tubo na cânula do cateter, você precisará de duas seringas como esta, preenchidas com a solução de T carcina heparinizada e a outra com solução salina.

Por fim, prepare a tampa da cânula do cateter. A cânula do cateter precisa ser tampada para evitar a entrada de detritos. Essas tampas são feitas esticando tubos de plástico sobre agulhas de calibre 23

.

O tubo é cortado a um centímetro da ponta da agulha e a extremidade aberta é derretida Para selar o tubo, a solução salina é empurrada através da agulha para garantir que não haja vazamentos nas tampas. Cateteres de camundongo foram obtidos de Cam Cs no Reino Unido. Corte o excesso de tubo do cateter de forma que haja 1,2 centímetros da extremidade do bulbo do cateter.

Em seguida, conecte a seringa contendo solução salina à cânula de metal externa do cateter e lave para verificar se há vazamentos. Os Mis são anestesiados com gás flúor isof misturado com oxigênio e são mantidos sob anestesia durante a cirurgia. Usando um tubo de respiração, os níveis de oxigênio e flúor são definidos com base no peso corporal do animal e são ajustados conforme necessário durante a cirurgia, certifique-se de que o animal esteja devidamente anestesiado beliscando as patas traseiras com o fórceps e monitore o camundongo durante a cirurgia quanto a desconforto respiratório e profundidade da anestesia.

Como a cirurgia dura entre 20 e 30 minutos, aplique um lubrificante ocular em ambos os olhos. O mouse é raspado antes da cirurgia. Prepare um espaço para a base do cateter nas costas do animal.

Puxe suavemente a pele das costas do animal e faça uma pequena incisão longitudinal no meio da escápula com cerca de dois centímetros de comprimento. Começando no meio das costas e estendendo-se até logo abaixo do pescoço. Separe o tecido conjuntivo para abrir espaço para a base do cateter e aplique solução salina na incisão.

Puxe suavemente a pele de ambos os lados da incisão e vire o animal. A veia tegular direita será encontrada superficialmente sob a pele do pescoço e pode ser exposta fazendo uma incisão superficial em S. Faça um corte diagonal de cerca de um a dois centímetros de comprimento, estendendo-se ao redor da clavícula direita, subindo em direção à mandíbula do animal.

O tubo da base do cateter precisa ser trazido através da incisão ventral no pescoço para ser acessível para inserção na veia. Guie a pinça sob a pele dos ombros e rompa o tecido conjuntivo. Para alcançar a incisão traseira, puxe o tubo através da pele até a abertura ventral ao redor do pescoço do animal.

Segure a extremidade do tubo com grampos de artéria e deixe-o preso pelo lado direito do animal. Aplique solução salina na incisão, isole a veia jugular direita. Afaste muito suavemente qualquer tecido conjuntivo e adiposo que possa estar obstruindo sua visão e localize a veia.

Levante suavemente a veia ao redor do topo e use a pinça curva para separar o tecido adiposo e o tecido conjuntivo ao redor e sob a veia. Coloque a pinça curva sob a veia e abra-a com a mão livre. Passe uma barra de plástico estéril sob a veia.

Quando a veia estiver elevada, remova a gordura apenas o suficiente para obter uma visão clara e desobstruída da veia. Periodicamente goteje soro fisiológico na veia exposta para mantê-la molhada. Prepare nós de sutura ao redor da veia para poder prender o tubo do cateter no lugar, uma vez inserido no local jugular.

Suturas embaixo da veia em ambas as extremidades e fazem um único nó aberto muito solto em cada extremidade. Passe o tubo do cateter pelo nó superior e enrole-o sobre o fio de sutura até o resto sobre o ombro direito. Empurre a solução salina através do cateter para pesar o tubo para baixo para inserir o tubo do cateter na veia jugular.

A agulha de calibre 20 modificada é usada para perfurar a veia, molhar a veia e a agulha de inserção com solução salina para reduzir o atrito durante a inserção, puxar suavemente a barra de plástico e inserir a agulha mais perto da parte inferior da veia. Apenas o suficiente para que meio centímetro da agulha esteja dentro. Deslize o tubo do cateter pela agulha e na veia.

Não deve haver resistência. A resistência indicaria que você está no tecido conjuntivo. Para ter certeza de que você está dentro da veia, tente puxar a seringa do cateter para ver se consegue tirar sangue.

Assim que o tubo estiver no lugar, remova a agulha e empurre o bulbo do cateter até o ponto de inserção. Amarre o nó inferior e certifique-se de que o tubo do cateter esteja nivelado com a barra antes de amarrar o segundo nó logo acima do bulbo. Isso prenderá o cateter no lugar.

Remova a barra e faça um segundo nó em cada extremidade. Coloque o tubo do cateter e as roscas de sutura sob a pele antes da sutura. Use a pinça de artéria para guiar a agulha de sutura através da pele e feche a incisão.

O número de pontos varia de acordo com o Tamanho da incisão Com o animal de bruços. Posicione a base do cateter nas costas do animal. Aplique solução salina na incisão e deslize a base do cateter sob a pele.

Certifique-se de que o tubo esteja minimamente enrolado e sob a base para minimizar as chances de ser perfurado. Costure a pele ao redor da base do cateter. O número de pontos dependerá do tamanho da incisão.

Normalmente, três a quatro pontos são suficientes. Certifique-se de que o sangue ainda pode ser retirado do cateter. Por fim, lave o cateter com a solução de teína heparinizada para evitar a formação de infecções e coágulos sanguíneos.

Afrouxe o tubo conectado à cânula do cateter. Em seguida, remova o tubo salino e substitua-o rapidamente por um tubo da seringa contendo a solução de T Carin heparinizada. Lave o cateter com 0,03 a 0,05 ccs de solução.

Novamente, afrouxe o tubo conectado à cânula. Segure a tampa do cateter com a pinça e, uma vez com movimento, remova o tubo da cânula e substitua-o pela tampa do cateter. Esta etapa deve ser feita rapidamente para evitar que o sangue suba.

Aparafuse a tampa branca do cateter, certificando-se de que a tampa esteja segura sem perfurar a ponta da cânula. Dê ao camundongo injeções subcutâneas de analgésico e antibiótico. Injete o analgésico cetoprofeno de um lado na dose de cinco miligramas por quilograma e o antibiótico amicacina do outro lado na dose de 10 miligramas por quilograma.

Após interromper a anestesia, permita que o camundongo se recupere em uma gaiola limpa com fácil acesso a comida e água. Dados confiáveis de autoadministração intravenosa podem ser obtidos seguindo as técnicas apresentadas neste vídeo. No entanto, é importante manter a permeabilidade do cateter.

Isso é conseguido através da colocação cuidadosa do cateter no átrio direito, lavagem diária do cateter antes e depois das sessões de ópera e certificando-se de que a cânula do cateter esteja constantemente tampada para evitar a entrada de detritos.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Medicina Edição 70 Neurociência Farmacologia Comportamento Anatomia Fisiologia Cirurgia auto-administração intravenosa IVSA cateterismo cateteres abuso de drogas vícios treinamento operacional mouse modelo animal

Related Videos

Entrega da droga sistêmica e local para o tratamento de doenças do sistema nervoso central em modelos de roedores

11:51

Entrega da droga sistêmica e local para o tratamento de doenças do sistema nervoso central em modelos de roedores

Related Videos

31.4K Views

Restrição manual e rotas de Administração composto comum em camundongos e ratos

14:10

Restrição manual e rotas de Administração composto comum em camundongos e ratos

Related Videos

300K Views

Entrega de agentes terapêuticos Através intracerebroventricular (ICV) e injecção intravenosa (IV) em ratos

05:55

Entrega de agentes terapêuticos Através intracerebroventricular (ICV) e injecção intravenosa (IV) em ratos

Related Videos

63.1K Views

Injeção intravenosa baseada em cateter de agentes experimentais: uma técnica para administração de agentes experimentais por via intravenosa através da veia jugular em modelo de camundongo

02:57

Injeção intravenosa baseada em cateter de agentes experimentais: uma técnica para administração de agentes experimentais por via intravenosa através da veia jugular em modelo de camundongo

Related Videos

6.7K Views

Injeções intravenosas em Neonatal Ratos

05:17

Injeções intravenosas em Neonatal Ratos

Related Videos

61.1K Views

Dosagem Múltipla em Bolus Intravenoso e Avaliação Hemodinâmica Invasiva em Modelo de Hipertensão Arterial Pulmonar em Camundongos Induzida por Hipóxia

08:51

Dosagem Múltipla em Bolus Intravenoso e Avaliação Hemodinâmica Invasiva em Modelo de Hipertensão Arterial Pulmonar em Camundongos Induzida por Hipóxia

Related Videos

1.9K Views

Injeções intracerebroventriculares à mão livre em camundongos

05:29

Injeções intracerebroventriculares à mão livre em camundongos

Related Videos

15.3K Views

Facilitando injeções intracarotídeas repetidas em modelos de camundongos por uma nova técnica de reparo no local da injeção

09:08

Facilitando injeções intracarotídeas repetidas em modelos de camundongos por uma nova técnica de reparo no local da injeção

Related Videos

2.8K Views

Uso da administração de medicamentos guiados por micropipeta como método alternativo à gavagem oral em modelos de roedores

02:44

Uso da administração de medicamentos guiados por micropipeta como método alternativo à gavagem oral em modelos de roedores

Related Videos

2.7K Views

Avaliação de vocalizações ultra-som durante Drogas auto-administração em ratos

09:25

Avaliação de vocalizações ultra-som durante Drogas auto-administração em ratos

Related Videos

17.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code