Name: Roux-en-Y operação de bypass gástrico em ratos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Aprenda o bypass gástrico Roux-en-Y em ratos para pesquisa de obesidade e diabetes. Este modelo reprodutível replica a cirurgia humana com bolsa gástrica pequena, reduzindo ingestão alimentar e peso corporal a longo prazo.

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Marco Bueter e Florian Seyfried foram apoiados pelo Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG). A Thomas Lutz foi apoiado pela Fundação de Pesquisa Nacional Suíço (SNF). Marco Bueter e Thomas A. Lutz ainda receber financiamento do National Institute of Health (NIH) e do Centro de Zurique de Fisiologia Humana Integrativa (ZIHP) Carel le Roux W foi apoiada por um Department of Health prêmio cientista médico. Imperial College de Londres recebe o apoio da Investigação Biomédica NIHR regime de financiamento Centro.

1. Cuidados Pré-Operatórios <ol><li> Remover comida de rato durante a noite antes da cirurgia. </li><li> Indução da anestesia em câmara com fluxo de 4-5% isoflurano e O2 de 2 l / min. </li><li> Shave abdome do esterno às pélvis usando barbeador elétrico. </li><li> Coloque rato anestesiado em decúbito dorsal sobre a almofada de aquecimento isotérmico. </li><li> Aplicar pomada (Vitagel) antes de colocar focinho dos ratos em nosecone. </li><li> Manter a anestesia com isoflurano concentração de 2-3% e fluxo de O2 de 2 l / min. </li><li> Desinfectar a pele com Betadine Solução. </li><li> Confirme profundidade da anestesia com uma pinça pitada entre os dedos da pata traseira. </li><li> Administrar 5,7 mg / kg por via intraperitoneal Enrofloxacina como profilaxia antibiótico perioperatória e 1 flunixin mg / kg para analgesia. </li></ol> 2. Laparotomia mediana <ol><li> Realizar incisão mediana usando bisturi começando logo abaixo processo xifóide (Blade No. 10). </li><li> Mobilizar pele circunferencialmente de Sublinharying músculos abdominais utilizando tesoura Metzenbaum. </li><li> Abra cavidade abdominal. </li><li> Instale retratores para facilitar a exposição da melhor forma possível o campo de operação. </li></ol> 3. Biliopancreática e Limb Alimentar <ol><li> Identificar onde o jejuno proximal duodeno ou passa sob o cólon. </li><li> Transecão intestino delgado cerca de 10 cm aborally a partir daqui e ligar ambas as extremidades do intestino (PDS 5-0). </li><li> Coloque coto proximal das duas extremidades do quadrante superior esquerdo do abdómen, como será mais tarde utilizados para formar o membro biliopancreática de reconstrução de Roux-Y. </li><li> Coloque coto distai das duas extremidades do quadrante superior direito do abdómen, como será mais tarde utilizados para formar o membro alimentar de reconstrução de Roux-Y. </li></ol> 4. Jejuno-jejunostomia <ol><li> Identificar ceco com válvula ileocoecal e íleo. </li><li> Seguir íleo por via oral durante cerca de 25 centímetros. O jejuno-jejunostomia será colocado aqui como ponto de partidado canal comum de reconstrução Roux-en-Y. </li><li> Recuperar membro biliopancreática de quadrante superior esquerdo do abdome, e posicioná-lo próximo ao canal comum, onde você pretende executar jejuno-jejunostomia. </li><li> Membro biliopancreatic segura e canal comum com a retenção de ponto (PDS 6-0). </li><li> Incisar ambos os loops mais de 10 mm aproximada usando uma tesoura micro. </li><li> Criar jejuno-jejunostomia através da realização de um lado para outro-anastomose com sutura interrompida (PDS 6-0). </li><li> Lateral completa primeira dorsal e ventral, em seguida, do lado de anastomose. </li></ol> 5. Bolsa gástrica <ol><li> Identificar junção gastro-esofágico. </li><li> Mobilizar nesta área dissecando ligamentos gastro-hepáticas e gastro-esplênico usando uma tesoura Metzenbaum. </li><li> Mova artéria gástrica esquerda e fibras vagais de pacote para-esofágica esquerdo lateralmente para evitar sangramentos maiores e danos nos nervos vagal quando pequena bolsa gástrica é criado. </li><li> Exponha gastro-esofágico junction colocando cotonete retro-oesophageally. </li><li> Coagular pequenos vasos do estômago frontal usando cautério comercialmente disponível - também para evitar hemorragias. </li><li> Transecão estômago cerca de 5 mm abaixo da junção gastro-esofágico criando bolsa gástrica de um tamanho de não mais do que 2-3% do tamanho do estômago original usando delicadas, tesouras curvas. </li><li> Fechar gástrica remanescente (PDS 5-0). </li></ol> 6. Gastro-jejunostomia <ol><li> Recuperar tubo alimentar de quadrante superior direito do abdômen e posicioná-lo próximo a bolsa gástrica. </li><li> Criar gastro-jejunostomia através da realização de término-lateral-anastomose (PDS 7-0). </li><li> Primeira parte de trás completa e, em seguida, parte da frente da anastomose. </li></ol> 7. Encerramento abdominal <ol><li> Reduzir a anestesia por reduzir a concentração de isoflurano a 1,5%. </li><li> Feche camada muscular da parede abdominal com sutura contínua (PDS 4-0). </li><li> Administrar 100 uL de 0,3 mg / mlsolução de buprenorfina por via subcutânea para analgesia. </li><li> Reduzir ainda mais a concentração de isoflurano para baixo para 1%. </li><li> Feche a pele usando suturas interrompidas (Vicryl 4-0). </li></ol> 8. Cuidados Pós-Operatórios <ol><li> Pare de isoflurano e continuar com a O2. </li><li> Administrar 5 ml de solução salina quente para a substituição do fluido em três depósitos subcutâneos. </li><li> Rato posição sob luz vermelha até a recuperação completa. </li><li> Devolva o rato para gaiola. </li></ol> 9. Os resultados representativos Animais e habitação Ratos Wistar machos (Harlan Laboratories Inc., Blackthorn, Reino Unido,. Elevage Janvier, Le-Genest-St Isle, França) com peso entre 350 e 500 g foram alojados individualmente em / 12 a 12 h h ciclo claro-escuro a uma temperatura ambiente de 21 ± 2 ° C. Água e ração padrão foram disponíveis ad libitum, salvo indicação em contrário. Todos os experimentos foram realizados sob uma licença emitida pelo Offi Inícioce, Reino Unido (PL70-6669) ou aprovado pelo Serviço Veterinário do cantão de Zurique, na Suíça. Todos os ratos receberam uma semana de aclimatação antes de ser randomizados para bypass gástrico ou operação simulada. Após a cirurgia, os ratos receberam a dieta líquida durante 3 dias antes de o acesso a comida normal foi reinstalado. O peso corporal Dados do nosso modelo de derivação rato gástrico são consistentes com os resultados anteriores de que a cirurgia de bypass gástrico é eficaz para reduzir o peso corporal e, especialmente, para manter a perda de peso corporal (Figura 2). Peso corporal médio pré-cirúrgica de ratos para realização de bypass gástrico e simulada operações foi semelhante (farsa: 433,4 ± 8,3 g vs bypass: 420,7 ± 8,4 g, p = 0,28). Cinco dias após a cirurgia sham-operados controles pesaram significativamente mais em comparação com ratos bypass gástrico (sham: 422,2 ± 8,3 g vs bypass: 374,7 ± 7,6 g, p &lt;0,001). Após 60 dias, a diferença de peso corporal era quase 170 g (sham: 533,2 ± 8,1 g vs bypass: 366,2 ± 10,8 g, p &lt;0,001). A ingestão de alimentos A ingestão de alimentos seguido padrões semelhantes como peso do corpo e foi reduzido em ratos bypass gástrico quando comparado com o sham operados ad libitum ratos. Figura 3 mostra a ingestão de alimentos diária média para ambos os grupos (dias pós-operatória 1-60). Ingestão diária de alimentos foi consistentemente menor após o bypass gástrico (sham: 29,9 ± 0,2 g vs bypass: 25,7 ± 0,3 g, p &lt;0,001). Gut hormônios Sangue de todos os ratos foram coletadas no dia da final do estudo 8,16. Os animais tinham acesso ad libitum alimentos a noite antes e foram decapitados no início do ciclo de luz no dia pós-operatório 60. O sangue foi obtido, imediatamente centrifugado a 3000 rpm durante 10 minutos a 4 ° C, e armazenadas a -20 ° C até que as amostras foram ensaiadas em duplicado num único ensaio. PYY-like imunorreatividade foi medidomedido com um radioimunoensaio específico e sensível, que mede, tanto o comprimento total (PYY1-36) e do fragmento (PYY3-36). O GLP-1 foi medida por estabelecida in-house radioimunoensaios 17,18. Diferenças na ingestão de alimentos pode ser parcialmente explicada pelo aumento dos níveis plasmáticos pós-prandiais de peptídeo YY (PYY) e glucagon-like peptide 1 (GLP-1) como ratos bypass gástrico apresentaram níveis significativamente mais elevados para PYY (sham: 26 ± 2 pmol / L vs . bypass: 141 ± 14 pmol / L, p &lt;0,001) e GLP-1 (sham: 40 ± 5 pmol / L vs bypass: 215 ± 23 pmol / L, p &lt;0,001; Figura 4). <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig1.jpg" /> Figura 1. Anatomia de bypass gástrico. Ilustração esquemática da anatomia do intestino delgado antes (A) e após (B) operação de bypass gástrico. Os diferentes tons de vermelho representam cerca de segmentos correspondentes do intestino delgado com o vermelho que representa o meio foregut(Esôfago e duodeno, estômago e jejuno proximal), a luz vermelha que representa o intestino (jejuno proximal e médio, íleo proximal) eo vermelho escuro representando o intestino posterior (íleo, ceco). <img alt="A Figura 2" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig2.jpg" /> Figura 2. . Perda de peso corporal após a cirurgia de bypass gástrico em ratos mudança de peso corporal para um grupo representativo de ratos após derivação gástrica (-) (n = 52) e sham-operado ratos (-) (n = 52) ao longo de um período de observação de 60 dias. Os dados foram reunidos a partir de publicações anteriores 6,8-10 e são mostrados como valores médios ± SEM (*** = p &lt;0,001). <img alt="A Figura 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Figura 3. Consumo alimentar médio após a cirurgia de bypass gástrico em ratos. Ingestão alimentar média diária de um grupo representativo de ratos após o bypass gástrico (preto, n = 52) e sham-operado ratos (branco, n = 52) ao longo de umpós-operatório de 60 dias. Os dados foram reunidos a partir de publicações anteriores 6,8-10 e são mostrados como valores da média ± SEM. <img alt="A Figura 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Figura 4. PYY pós-prandial e GLP-1 níveis séricos após a cirurgia de bypass gástrico em ratos. PYY pós-prandial e nível de GLP-1 no soro para os ratos de bypass gástrico (preto, n = 18) e sham operados ratos (branco, n = 22). Os dados foram reunidos a partir de publicações anteriores 8,16 e são mostrados como valores da média ± SEM.

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<li>Ashrafian, H., le Roux, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+surgery+and+gut+hormones+-+a+review+of+bariatric+entero-humoral+modulation%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">Metabolic surgery and gut hormones - a review of bariatric entero-humoral modulation.</a> Physiol. Behav. 97, 620-631 (2009).</li>
<li>Choban, P. S., Flancbaum, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+Roux+limb+lengths+on+outcome+after+Roux-en-Y+gastric+bypass%3A+a+prospective%2C+randomized+clinical+trial.+Obes%5BTitle%5D)+AND+%22Surg%22%5BJournal%5D)">The effect of Roux limb lengths on outcome after Roux-en-Y gastric bypass: a prospective, randomized clinical trial. Obes.</a> Surg. 12, 540-545 (2002).</li>
<li>Gleysteen, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Five-year+outcome+with+gastric+bypass%3A+Roux+limb+length+makes+a+difference%5BTitle%5D)+AND+%22Surg.+Obes.+Relat.+Dis%22%5BJournal%5D)">Five-year outcome with gastric bypass: Roux limb length makes a difference.</a> Surg. Obes. Relat. Dis. 5, 242-247 (2009).</li>
<li>Lee, S., Sahagian, K. G., Schriver, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+varying+Roux+limb+lengths+and+weight+loss+in+gastric+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Surg%22%5BJournal%5D)">Relationship between varying Roux limb lengths and weight loss in gastric bypass.</a> Curr. Surg. 63, 259-263 (2006).</li>
<li>Hayes, M. R., Kanoski, S. E., De Jonghe, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+common+hepatic+branch+of+the+vagus+is+not+required+to+mediate+the+glycemic+and+food+intake+suppressive+effects+of+glucagon-like-peptide-1%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The common hepatic branch of the vagus is not required to mediate the glycemic and food intake suppressive effects of glucagon-like-peptide-1.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301, R1479-R1485 (2011).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O procedimento de Roux-en-Y bypass gástrico em humanos foi primeiramente descrita por Mason em 1967 e modificada em sua forma atual por Torres em 1983 19. Actualmente, o processo consiste em uma pequena bolsa gástrica e da derivação do intestino delgado proximal. Uma ilustração esquemática da anatomia pré e pós-operatório é dado na Figura 1. Bypass gástrico em humanos induz e mantém a perda de peso de cerca de 15-30% 2. A maioria do peso corporal é perd...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome genérico </td><td> Marca </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Enrofloxacina </td><td> Baytril 2,5% </td><td> Provet AG </td><td> 1036 </td></tr><tr><td> Flunixin </td><td> Finadyne </td><td> Graeub </td><td> 908040 </td></tr><tr><td> Buprenorphin </td><td> Temgesic </td><td> Reckitt Benckiser </td><td> 138976 </td></tr><tr><td> Isoflurano </td><td> IsoFlo </td><td> Graeub </td><td> 902035 </td></tr><tr><td> A vitamina A </td><td> Vitagel </td><td> Bausch &amp; Lomb </td><td> 690 </td></tr><tr><td> Solução de iodo </td><td> Betadine </td><td> Mundipharma </td><td> 111141 </td></tr><tr><td> NaCl 0,9% </td><td> NaCl 0,9% </td><td> B. Braun </td><td> 534534 </td></tr></tbody></table> Tabela 1. Drogas. <table border="1"><tbody><tr><td> Nome </td><td> Tamanho </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z924H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 5-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z925H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 6-0 </td><td> Ethicon </td><td> PUU2971E </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 7-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z1370E </td></tr><tr><td> Vicryl </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> V451H </td></tr></tbody></table> Tabela 2. Suturas. <table border="1"><tbody><tr><td> Nome </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Bisturi alça No. 3 </td><td> Aesculap </td><td> BB073R </td></tr><tr><td> Lâminas de bisturi Sem. 10 </td><td> Swann-Morton </td><td> 0301 </td></tr><tr><td> Suporte de agulha </td><td> Aesculap </td><td> BM124R </td></tr><tr><td> Pinça </td><td> Aesculap </td><td> BD555R </td></tr><tr><td> Metzenbaum tesoura, em linha reta </td><td> Aesculap </td><td> BC022R </td></tr><tr><td> Metzenbaum tesoura, curvada </td><td> Aesculap </td><td> BC023R </td></tr><tr><td> Tesouras curvas delicadas, </td><td> Aesculap </td><td> BC061R </td></tr><tr><td> Fórceps da artéria, curvada </td><td> Aesculap </td><td> BH109R </td></tr><tr><td> Fórceps da artéria, curvado, dentes 1x2 </td><td> Aesculap </td><td> BH121R </td></tr><tr><td> Sonda, de duas pontas </td><td> Aesculap </td><td> BN113R </td></tr><tr><td> Suporte de agulha Micro </td><td> Aesculap </td><td> FM 541R </td></tr><tr><td> Micro pinça </td><td> Aesculap </td><td> FM571R </td></tr><tr><td> Micro tesoura </td><td> AESCulap </td><td> FM470R </td></tr><tr><td> Cautério olho descartável </td><td> John Weiss Internacional </td><td> 0111122 </td></tr><tr><td> Cotonetes </td><td> Hartmann AG </td><td> 9679369 </td></tr></tbody></table> Tabela 3. Equipamento cirúrgico.

roux-en-y operação de bypass gástrico em ratos

Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Atualmente, a terapia mais eficaz para o tratamento da obesidade mórbida para induzir perda de peso significativa e mantida corpo com um benefício comprovado de mortalidade é de 1,2 a cirurgia bariátrica. Consequentemente, tem havido um aumento constante no número de operações bariátricas realizadas em todo o mundo nos últimos anos com o Roux-en-bypass gástrico em Y (bypass gástrico) é a operação mais realizada 3. Neste contexto, é importante entender os mecanismos fisiológicos por que o bypass gástrico induz e mantém perda de peso corporal. Estes mecanismos não são ainda totalmente conhecidos, mas podem incluir fome reduzidos e aumento da saciedade 4,5, maior gasto de energia 6,7, de preferência alterado para alimentos ricos em gordura e açúcar 8,9, sal alterada e tratamento de água do rim 10 como bem como alterações na microbiota intestinal 11. Tais mudanças observadas após bypass gástrico pode pelo menos em parte derivam comoa cirurgia altera o meio hormonal gástrica porque aumenta a libertação pós-prandial de péptido-YY (PYY) e glucagon-like peptide--1 (GLP-1), hormonas que são libertados pelo intestino, na presença de nutrientes e que reduzem a comer 12. Durante as últimas duas décadas, inúmeros estudos com ratos têm sido realizados para investigar alterações fisiológicas após o bypass gástrico. O modelo do rato de bypass gástrico tem provado ser uma ferramenta valiosa não menos experimental, pois imita o perfil de tempo e magnitude da perda de peso humano, mas também permite aos pesquisadores controlar e manipular críticos fatores anatômicos e fisiológicos, incluindo o uso de controles apropriados. Consequentemente, existe uma grande variedade de modelos de ratos bypass gástrico disponíveis na literatura em qualquer outra parte mais detalhe 13-15. A descrição da técnica cirúrgica exacta desses modelos varia amplamente e difere por exemplo, em termos de tamanho da bolsa, o membrocomprimentos, ea preservação do nervo vago. Se relatado, as taxas de mortalidade parecem variar de 0 a 35% 15. Além disso, a cirurgia foi realizada quase exclusivamente em ratos machos de diferentes estirpes e idades. Dietas pré e pós-operatório também variou significativamente. Variações técnicas e experimentais em modelos de ratos publicados gástrica de desvio complicar a comparação e identificação de potenciais mecanismos fisiológicos envolvidos na bypass gástrico. Não há nenhuma evidência clara de que qualquer um destes modelos é superior, mas não há uma necessidade emergente para a normalização do procedimento para a obtenção de dados consistentes e comparáveis. Este artigo visa, portanto, resumir e discutir detalhes técnicos e experimental do nosso modelo de rato previamente validado e publicado bypass gástrico.

Numerosos estudos utilizando modelos de ratos bypass gástrico foram recentemente realizados para desvendar os mecanismos fisiológicos subjacentes de Roux-en-Y operações de bypass gástrico. Este artigo visa demonstrar e discutir os detalhes técnicos e experimental da nossa publicado modelo do rato de bypass gástrico para compreender as vantagens e limitações desta ferramenta experimental.

Roux-en-Y operação de bypass gástrico em ratos

Atualmente, a terapia mais eficaz para o tratamento da obesidade mórbida para induzir a perda de peso corporal significativa e mantida, com mortalidade comprovada...

O objetivo geral do experimento a seguir é demonstrar um modelo reprodutível de derivação gástrica em ratos, necessário para elucidar seus mecanismos fisiológicos subjacentes em humanos. Isso é alcançado primeiramente pela criação de alças bilio pancreática e alça alimentar. Em seguida, realiza-se uma anastomose laterolateral entre a alça bilio pancreática e a alça alimentar, estabelecendo um canal comum futuro.Em seguida, o estômago é transeccionado próximo à junção gastroesofágica para criar uma pequena bolsa gástrica, que é anastomosada ao lado mais proximal do intestino delgado, completando assim a reconstrução em Y de Roux do procedimento de bypass. Os resultados demonstram uma redução de longo prazo e sustentada na ingestão alimentar e no peso corporal dos animais submetidos ao bypass gástrico, decorrente do aumento nos níveis plasmáticos pós-prandiais do peptídeo YY e do peptídeo semelhante ao glucagon-1 (GLP-1). A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como modelos de bypass gástrico com bolsa gástrica maior, é que nosso modelo reproduz de maneira mais fiel o procedimento cirúrgico utilizado em humanos, criando uma bolsa gástrica muito pequena, co

roux-en-y-gastric-bypass-operation-in-rats

Research

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Medicine

Medicina

Este vídeo descreve um procedimento de cirurgia bariátrica-Y-de-Roux. Isso envolve o corte do jejuno - a porção média do intestino - para gerar dois membros intestinais. A alça biliar está ligada à alça intestinal existente e a alça alimentar está ligada ao estômago, criando um bypass gástrico. O bypass gástrico criado aqui ajuda a diminuir a absorção de nutrientes e reduz eficientemente o peso corporal.

Procedimento de bypass gástrico em Y-de-Roux: um procedimento cirúrgico bariátrico para ressecção gástrica em modelo murino

A cirurgia bariátrica é a maneira mais eficiente de reduzir o peso corporal e as complicações metabólicas mortais (diabetes, obesidade e dislipidemia) frequentemente associadas à obesidade mórbida. Modelos de camundongos de cirurgia bariátrica representam um recurso único para decifrar os mecanismos moleculares por trás dos efeitos benéficos dessas cirurgias sobre diabetes, hipertensão e dislipidemia.

Técnicas de gastrectomia vertical e modificado Roux-en-Y bypass gástrico em ratos

A seguir descreve o desempenho de gastrectomia de manga vertical em camundongos. Este é um tipo de cirurgia de perda de peso que envolve a remoção de aproximadamente 70% do estômago.

Um modelo murino de gastrectomia de manga Vertical

Este protocolo é para o desempenho de uma anastomose bypass gástrico (OAGB) em ratos. O operador executa uma bolsa gástrica longa e tubular-grampeado, seguida por anastomose costurado à mão. Para este modelo, o operador reproduz a mesma relação entre biliopancreatic e membro comum em seres humanos; Portanto, o membro biliopancreatic mede 35 cm.

1-anastomose Bypass gástrico (OAGB) em ratos

A prevalência de diabetes e obesidade está aumentando continuamente em todo o mundo. Os mecanismos entre diabetes, obesidade e sua mortalidade associada e co-morbidades precisam ser mais aprofundados. Aqui, apresentamos um protocolo para gastrectomia de manga (SG) em animais como um modelo pré-clínico descomplicado da cirurgia bariátrica.

Gastrectomia de manga em camundongos usando clipes cirúrgicos

O bypass gástrico Roux-en-Y (RYGB) é realizado para tratar obesidade e diabetes. No entanto, os mecanismos subjacentes à eficácia do RYGB não são totalmente compreendidos, e os estudos são limitados pela dificuldade técnica que leva à alta mortalidade em modelos animais. Este artigo fornece instruções sobre como executar RYGB em ratos com altas taxas de sucesso.

Um protocolo para bypass gástrico Roux-en-Y em ratos usando grampos lineares

A derivação duodeno-ileal de anastomose única (SADI-S) é um procedimento bariátrico emergente com importantes efeitos metabólicos. Neste artigo, apresentamos um modelo confiável e reprodutível de SADI-S em camundongos.

Modelo de Bypass Duodeno-Ileal de Anastomose Única com Gastrectomia Vertical em Camundongos

O modelo do rato de infarto agudo do miocárdio (IAM) é útil para estudar as consequências do enfarte do miocárdio sobre a função fisiológica e fisiopatológica cardíaca.

Infarto Agudo do Miocárdio em Ratos

Nós apresentamos uma revisão fácil de estabelecer a técnica de dois manguito clássica para transplante hepático em ratos.

Transplante hepático ortotópico experimental em ratos

Este vídeo demonstra um modelo para estudar o desenvolvimento de hiperplasia miointimal após cirurgia de interposição venosa em ratos.

Veia Interposição Modelo: Um modelo adequado para estudar Bypass Graft Perviedade

Aprenda o bypass gástrico Roux-en-Y em ratos para pesquisa de obesidade e diabetes. Este modelo reprodutível replica a cirurgia humana com bolsa gástrica pequena, reduzindo ingestão alimentar e peso corporal a longo prazo.

Roux-en-Y operação de bypass gástrico em ratos

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