Name: Roux-en-Y operação de bypass gástrico em ratos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Aprenda o bypass gástrico Roux-en-Y em ratos para pesquisa de obesidade e diabetes. Este modelo reprodutível replica a cirurgia humana com bolsa gástrica pequena, reduzindo ingestão alimentar e peso corporal a longo prazo.

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Marco Bueter e Florian Seyfried foram apoiados pelo Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG). A Thomas Lutz foi apoiado pela Fundação de Pesquisa Nacional Suíço (SNF). Marco Bueter e Thomas A. Lutz ainda receber financiamento do National Institute of Health (NIH) e do Centro de Zurique de Fisiologia Humana Integrativa (ZIHP) Carel le Roux W foi apoiada por um Department of Health prêmio cientista médico. Imperial College de Londres recebe o apoio da Investigação Biomédica NIHR regime de financiamento Centro.

1. Cuidados Pré-Operatórios <ol><li> Remover comida de rato durante a noite antes da cirurgia. </li><li> Indução da anestesia em câmara com fluxo de 4-5% isoflurano e O2 de 2 l / min. </li><li> Shave abdome do esterno às pélvis usando barbeador elétrico. </li><li> Coloque rato anestesiado em decúbito dorsal sobre a almofada de aquecimento isotérmico. </li><li> Aplicar pomada (Vitagel) antes de colocar focinho dos ratos em nosecone. </li><li> Manter a anestesia com isoflurano concentração de 2-3% e fluxo de O2 de 2 l / min. </li><li> Desinfectar a pele com Betadine Solução. </li><li> Confirme profundidade da anestesia com uma pinça pitada entre os dedos da pata traseira. </li><li> Administrar 5,7 mg / kg por via intraperitoneal Enrofloxacina como profilaxia antibiótico perioperatória e 1 flunixin mg / kg para analgesia. </li></ol> 2. Laparotomia mediana <ol><li> Realizar incisão mediana usando bisturi começando logo abaixo processo xifóide (Blade No. 10). </li><li> Mobilizar pele circunferencialmente de Sublinharying músculos abdominais utilizando tesoura Metzenbaum. </li><li> Abra cavidade abdominal. </li><li> Instale retratores para facilitar a exposição da melhor forma possível o campo de operação. </li></ol> 3. Biliopancreática e Limb Alimentar <ol><li> Identificar onde o jejuno proximal duodeno ou passa sob o cólon. </li><li> Transecão intestino delgado cerca de 10 cm aborally a partir daqui e ligar ambas as extremidades do intestino (PDS 5-0). </li><li> Coloque coto proximal das duas extremidades do quadrante superior esquerdo do abdómen, como será mais tarde utilizados para formar o membro biliopancreática de reconstrução de Roux-Y. </li><li> Coloque coto distai das duas extremidades do quadrante superior direito do abdómen, como será mais tarde utilizados para formar o membro alimentar de reconstrução de Roux-Y. </li></ol> 4. Jejuno-jejunostomia <ol><li> Identificar ceco com válvula ileocoecal e íleo. </li><li> Seguir íleo por via oral durante cerca de 25 centímetros. O jejuno-jejunostomia será colocado aqui como ponto de partidado canal comum de reconstrução Roux-en-Y. </li><li> Recuperar membro biliopancreática de quadrante superior esquerdo do abdome, e posicioná-lo próximo ao canal comum, onde você pretende executar jejuno-jejunostomia. </li><li> Membro biliopancreatic segura e canal comum com a retenção de ponto (PDS 6-0). </li><li> Incisar ambos os loops mais de 10 mm aproximada usando uma tesoura micro. </li><li> Criar jejuno-jejunostomia através da realização de um lado para outro-anastomose com sutura interrompida (PDS 6-0). </li><li> Lateral completa primeira dorsal e ventral, em seguida, do lado de anastomose. </li></ol> 5. Bolsa gástrica <ol><li> Identificar junção gastro-esofágico. </li><li> Mobilizar nesta área dissecando ligamentos gastro-hepáticas e gastro-esplênico usando uma tesoura Metzenbaum. </li><li> Mova artéria gástrica esquerda e fibras vagais de pacote para-esofágica esquerdo lateralmente para evitar sangramentos maiores e danos nos nervos vagal quando pequena bolsa gástrica é criado. </li><li> Exponha gastro-esofágico junction colocando cotonete retro-oesophageally. </li><li> Coagular pequenos vasos do estômago frontal usando cautério comercialmente disponível - também para evitar hemorragias. </li><li> Transecão estômago cerca de 5 mm abaixo da junção gastro-esofágico criando bolsa gástrica de um tamanho de não mais do que 2-3% do tamanho do estômago original usando delicadas, tesouras curvas. </li><li> Fechar gástrica remanescente (PDS 5-0). </li></ol> 6. Gastro-jejunostomia <ol><li> Recuperar tubo alimentar de quadrante superior direito do abdômen e posicioná-lo próximo a bolsa gástrica. </li><li> Criar gastro-jejunostomia através da realização de término-lateral-anastomose (PDS 7-0). </li><li> Primeira parte de trás completa e, em seguida, parte da frente da anastomose. </li></ol> 7. Encerramento abdominal <ol><li> Reduzir a anestesia por reduzir a concentração de isoflurano a 1,5%. </li><li> Feche camada muscular da parede abdominal com sutura contínua (PDS 4-0). </li><li> Administrar 100 uL de 0,3 mg / mlsolução de buprenorfina por via subcutânea para analgesia. </li><li> Reduzir ainda mais a concentração de isoflurano para baixo para 1%. </li><li> Feche a pele usando suturas interrompidas (Vicryl 4-0). </li></ol> 8. Cuidados Pós-Operatórios <ol><li> Pare de isoflurano e continuar com a O2. </li><li> Administrar 5 ml de solução salina quente para a substituição do fluido em três depósitos subcutâneos. </li><li> Rato posição sob luz vermelha até a recuperação completa. </li><li> Devolva o rato para gaiola. </li></ol> 9. Os resultados representativos Animais e habitação Ratos Wistar machos (Harlan Laboratories Inc., Blackthorn, Reino Unido,. Elevage Janvier, Le-Genest-St Isle, França) com peso entre 350 e 500 g foram alojados individualmente em / 12 a 12 h h ciclo claro-escuro a uma temperatura ambiente de 21 ± 2 ° C. Água e ração padrão foram disponíveis ad libitum, salvo indicação em contrário. Todos os experimentos foram realizados sob uma licença emitida pelo Offi Inícioce, Reino Unido (PL70-6669) ou aprovado pelo Serviço Veterinário do cantão de Zurique, na Suíça. Todos os ratos receberam uma semana de aclimatação antes de ser randomizados para bypass gástrico ou operação simulada. Após a cirurgia, os ratos receberam a dieta líquida durante 3 dias antes de o acesso a comida normal foi reinstalado. O peso corporal Dados do nosso modelo de derivação rato gástrico são consistentes com os resultados anteriores de que a cirurgia de bypass gástrico é eficaz para reduzir o peso corporal e, especialmente, para manter a perda de peso corporal (Figura 2). Peso corporal médio pré-cirúrgica de ratos para realização de bypass gástrico e simulada operações foi semelhante (farsa: 433,4 ± 8,3 g vs bypass: 420,7 ± 8,4 g, p = 0,28). Cinco dias após a cirurgia sham-operados controles pesaram significativamente mais em comparação com ratos bypass gástrico (sham: 422,2 ± 8,3 g vs bypass: 374,7 ± 7,6 g, p &lt;0,001). Após 60 dias, a diferença de peso corporal era quase 170 g (sham: 533,2 ± 8,1 g vs bypass: 366,2 ± 10,8 g, p &lt;0,001). A ingestão de alimentos A ingestão de alimentos seguido padrões semelhantes como peso do corpo e foi reduzido em ratos bypass gástrico quando comparado com o sham operados ad libitum ratos. Figura 3 mostra a ingestão de alimentos diária média para ambos os grupos (dias pós-operatória 1-60). Ingestão diária de alimentos foi consistentemente menor após o bypass gástrico (sham: 29,9 ± 0,2 g vs bypass: 25,7 ± 0,3 g, p &lt;0,001). Gut hormônios Sangue de todos os ratos foram coletadas no dia da final do estudo 8,16. Os animais tinham acesso ad libitum alimentos a noite antes e foram decapitados no início do ciclo de luz no dia pós-operatório 60. O sangue foi obtido, imediatamente centrifugado a 3000 rpm durante 10 minutos a 4 ° C, e armazenadas a -20 ° C até que as amostras foram ensaiadas em duplicado num único ensaio. PYY-like imunorreatividade foi medidomedido com um radioimunoensaio específico e sensível, que mede, tanto o comprimento total (PYY1-36) e do fragmento (PYY3-36). O GLP-1 foi medida por estabelecida in-house radioimunoensaios 17,18. Diferenças na ingestão de alimentos pode ser parcialmente explicada pelo aumento dos níveis plasmáticos pós-prandiais de peptídeo YY (PYY) e glucagon-like peptide 1 (GLP-1) como ratos bypass gástrico apresentaram níveis significativamente mais elevados para PYY (sham: 26 ± 2 pmol / L vs . bypass: 141 ± 14 pmol / L, p &lt;0,001) e GLP-1 (sham: 40 ± 5 pmol / L vs bypass: 215 ± 23 pmol / L, p &lt;0,001; Figura 4). <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig1.jpg" /> Figura 1. Anatomia de bypass gástrico. Ilustração esquemática da anatomia do intestino delgado antes (A) e após (B) operação de bypass gástrico. Os diferentes tons de vermelho representam cerca de segmentos correspondentes do intestino delgado com o vermelho que representa o meio foregut(Esôfago e duodeno, estômago e jejuno proximal), a luz vermelha que representa o intestino (jejuno proximal e médio, íleo proximal) eo vermelho escuro representando o intestino posterior (íleo, ceco). <img alt="A Figura 2" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig2.jpg" /> Figura 2. . Perda de peso corporal após a cirurgia de bypass gástrico em ratos mudança de peso corporal para um grupo representativo de ratos após derivação gástrica (-) (n = 52) e sham-operado ratos (-) (n = 52) ao longo de um período de observação de 60 dias. Os dados foram reunidos a partir de publicações anteriores 6,8-10 e são mostrados como valores médios ± SEM (*** = p &lt;0,001). <img alt="A Figura 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Figura 3. Consumo alimentar médio após a cirurgia de bypass gástrico em ratos. Ingestão alimentar média diária de um grupo representativo de ratos após o bypass gástrico (preto, n = 52) e sham-operado ratos (branco, n = 52) ao longo de umpós-operatório de 60 dias. Os dados foram reunidos a partir de publicações anteriores 6,8-10 e são mostrados como valores da média ± SEM. <img alt="A Figura 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Figura 4. PYY pós-prandial e GLP-1 níveis séricos após a cirurgia de bypass gástrico em ratos. PYY pós-prandial e nível de GLP-1 no soro para os ratos de bypass gástrico (preto, n = 18) e sham operados ratos (branco, n = 22). Os dados foram reunidos a partir de publicações anteriores 8,16 e são mostrados como valores da média ± SEM.

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<li>Ashrafian, H., le Roux, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+surgery+and+gut+hormones+-+a+review+of+bariatric+entero-humoral+modulation%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">Metabolic surgery and gut hormones - a review of bariatric entero-humoral modulation.</a> Physiol. Behav. 97, 620-631 (2009).</li>
<li>Choban, P. S., Flancbaum, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+Roux+limb+lengths+on+outcome+after+Roux-en-Y+gastric+bypass%3A+a+prospective%2C+randomized+clinical+trial.+Obes%5BTitle%5D)+AND+%22Surg%22%5BJournal%5D)">The effect of Roux limb lengths on outcome after Roux-en-Y gastric bypass: a prospective, randomized clinical trial. Obes.</a> Surg. 12, 540-545 (2002).</li>
<li>Gleysteen, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Five-year+outcome+with+gastric+bypass%3A+Roux+limb+length+makes+a+difference%5BTitle%5D)+AND+%22Surg.+Obes.+Relat.+Dis%22%5BJournal%5D)">Five-year outcome with gastric bypass: Roux limb length makes a difference.</a> Surg. Obes. Relat. Dis. 5, 242-247 (2009).</li>
<li>Lee, S., Sahagian, K. G., Schriver, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+varying+Roux+limb+lengths+and+weight+loss+in+gastric+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Surg%22%5BJournal%5D)">Relationship between varying Roux limb lengths and weight loss in gastric bypass.</a> Curr. Surg. 63, 259-263 (2006).</li>
<li>Hayes, M. R., Kanoski, S. E., De Jonghe, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+common+hepatic+branch+of+the+vagus+is+not+required+to+mediate+the+glycemic+and+food+intake+suppressive+effects+of+glucagon-like-peptide-1%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The common hepatic branch of the vagus is not required to mediate the glycemic and food intake suppressive effects of glucagon-like-peptide-1.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301, R1479-R1485 (2011).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O procedimento de Roux-en-Y bypass gástrico em humanos foi primeiramente descrita por Mason em 1967 e modificada em sua forma atual por Torres em 1983 19. Actualmente, o processo consiste em uma pequena bolsa gástrica e da derivação do intestino delgado proximal. Uma ilustração esquemática da anatomia pré e pós-operatório é dado na Figura 1. Bypass gástrico em humanos induz e mantém a perda de peso de cerca de 15-30% 2. A maioria do peso corporal é perd...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome genérico </td><td> Marca </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Enrofloxacina </td><td> Baytril 2,5% </td><td> Provet AG </td><td> 1036 </td></tr><tr><td> Flunixin </td><td> Finadyne </td><td> Graeub </td><td> 908040 </td></tr><tr><td> Buprenorphin </td><td> Temgesic </td><td> Reckitt Benckiser </td><td> 138976 </td></tr><tr><td> Isoflurano </td><td> IsoFlo </td><td> Graeub </td><td> 902035 </td></tr><tr><td> A vitamina A </td><td> Vitagel </td><td> Bausch &amp; Lomb </td><td> 690 </td></tr><tr><td> Solução de iodo </td><td> Betadine </td><td> Mundipharma </td><td> 111141 </td></tr><tr><td> NaCl 0,9% </td><td> NaCl 0,9% </td><td> B. Braun </td><td> 534534 </td></tr></tbody></table> Tabela 1. Drogas. <table border="1"><tbody><tr><td> Nome </td><td> Tamanho </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z924H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 5-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z925H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 6-0 </td><td> Ethicon </td><td> PUU2971E </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 7-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z1370E </td></tr><tr><td> Vicryl </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> V451H </td></tr></tbody></table> Tabela 2. Suturas. <table border="1"><tbody><tr><td> Nome </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Bisturi alça No. 3 </td><td> Aesculap </td><td> BB073R </td></tr><tr><td> Lâminas de bisturi Sem. 10 </td><td> Swann-Morton </td><td> 0301 </td></tr><tr><td> Suporte de agulha </td><td> Aesculap </td><td> BM124R </td></tr><tr><td> Pinça </td><td> Aesculap </td><td> BD555R </td></tr><tr><td> Metzenbaum tesoura, em linha reta </td><td> Aesculap </td><td> BC022R </td></tr><tr><td> Metzenbaum tesoura, curvada </td><td> Aesculap </td><td> BC023R </td></tr><tr><td> Tesouras curvas delicadas, </td><td> Aesculap </td><td> BC061R </td></tr><tr><td> Fórceps da artéria, curvada </td><td> Aesculap </td><td> BH109R </td></tr><tr><td> Fórceps da artéria, curvado, dentes 1x2 </td><td> Aesculap </td><td> BH121R </td></tr><tr><td> Sonda, de duas pontas </td><td> Aesculap </td><td> BN113R </td></tr><tr><td> Suporte de agulha Micro </td><td> Aesculap </td><td> FM 541R </td></tr><tr><td> Micro pinça </td><td> Aesculap </td><td> FM571R </td></tr><tr><td> Micro tesoura </td><td> AESCulap </td><td> FM470R </td></tr><tr><td> Cautério olho descartável </td><td> John Weiss Internacional </td><td> 0111122 </td></tr><tr><td> Cotonetes </td><td> Hartmann AG </td><td> 9679369 </td></tr></tbody></table> Tabela 3. Equipamento cirúrgico.

roux-en-y operação de bypass gástrico em ratos

Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Atualmente, a terapia mais eficaz para o tratamento da obesidade mórbida para induzir perda de peso significativa e mantida corpo com um benefício comprovado de mortalidade é de 1,2 a cirurgia bariátrica. Consequentemente, tem havido um aumento constante no número de operações bariátricas realizadas em todo o mundo nos últimos anos com o Roux-en-bypass gástrico em Y (bypass gástrico) é a operação mais realizada 3. Neste contexto, é importante entender os mecanismos fisiológicos por que o bypass gástrico induz e mantém perda de peso corporal. Estes mecanismos não são ainda totalmente conhecidos, mas podem incluir fome reduzidos e aumento da saciedade 4,5, maior gasto de energia 6,7, de preferência alterado para alimentos ricos em gordura e açúcar 8,9, sal alterada e tratamento de água do rim 10 como bem como alterações na microbiota intestinal 11. Tais mudanças observadas após bypass gástrico pode pelo menos em parte derivam comoa cirurgia altera o meio hormonal gástrica porque aumenta a libertação pós-prandial de péptido-YY (PYY) e glucagon-like peptide--1 (GLP-1), hormonas que são libertados pelo intestino, na presença de nutrientes e que reduzem a comer 12. Durante as últimas duas décadas, inúmeros estudos com ratos têm sido realizados para investigar alterações fisiológicas após o bypass gástrico. O modelo do rato de bypass gástrico tem provado ser uma ferramenta valiosa não menos experimental, pois imita o perfil de tempo e magnitude da perda de peso humano, mas também permite aos pesquisadores controlar e manipular críticos fatores anatômicos e fisiológicos, incluindo o uso de controles apropriados. Consequentemente, existe uma grande variedade de modelos de ratos bypass gástrico disponíveis na literatura em qualquer outra parte mais detalhe 13-15. A descrição da técnica cirúrgica exacta desses modelos varia amplamente e difere por exemplo, em termos de tamanho da bolsa, o membrocomprimentos, ea preservação do nervo vago. Se relatado, as taxas de mortalidade parecem variar de 0 a 35% 15. Além disso, a cirurgia foi realizada quase exclusivamente em ratos machos de diferentes estirpes e idades. Dietas pré e pós-operatório também variou significativamente. Variações técnicas e experimentais em modelos de ratos publicados gástrica de desvio complicar a comparação e identificação de potenciais mecanismos fisiológicos envolvidos na bypass gástrico. Não há nenhuma evidência clara de que qualquer um destes modelos é superior, mas não há uma necessidade emergente para a normalização do procedimento para a obtenção de dados consistentes e comparáveis. Este artigo visa, portanto, resumir e discutir detalhes técnicos e experimental do nosso modelo de rato previamente validado e publicado bypass gástrico.

Numerosos estudos utilizando modelos de ratos bypass gástrico foram recentemente realizados para desvendar os mecanismos fisiológicos subjacentes de Roux-en-Y operações de bypass gástrico. Este artigo visa demonstrar e discutir os detalhes técnicos e experimental da nossa publicado modelo do rato de bypass gástrico para compreender as vantagens e limitações desta ferramenta experimental.

Roux-en-Y operação de bypass gástrico em ratos

Atualmente, a terapia mais eficaz para o tratamento da obesidade mórbida para induzir a perda de peso corporal significativa e mantida, com mortalidade comprovada...

O objetivo geral do experimento a seguir é demonstrar um modelo reprodutível de derivação gástrica em ratos, necessário para elucidar seus mecanismos fisiológicos subjacentes em humanos. Isso é alcançado primeiramente pela criação de alças bilio pancreática e alça alimentar. Em seguida, realiza-se uma anastomose laterolateral entre a alça bilio pancreática e a alça alimentar, estabelecendo um canal comum futuro.Em seguida, o estômago é transeccionado próximo à junção gastroesofágica para criar uma pequena bolsa gástrica, que é anastomosada ao lado mais proximal do intestino delgado, completando assim a reconstrução em Y de Roux do procedimento de bypass. Os resultados demonstram uma redução de longo prazo e sustentada na ingestão alimentar e no peso corporal dos animais submetidos ao bypass gástrico, decorrente do aumento nos níveis plasmáticos pós-prandiais do peptídeo YY e do peptídeo semelhante ao glucagon-1 (GLP-1). A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como modelos de bypass gástrico com bolsa gástrica maior, é que nosso modelo reproduz de maneira mais fiel o procedimento cirúrgico utilizado em humanos, criando uma bolsa gástrica muito pequena, constituída por menos de 5% do volume original do estômago. Este método pode auxiliar na resposta a questões fundamentais no campo da fisiologia e da fisiopatologia da obesidade e das doenças associadas, como diabetes tipo 2 ou doenças cardiovasculares.Na noite anterior à cirurgia de bypass gástrico, retire qualquer alimento da gaiola da rata no dia seguinte, após anestesiar o animal em uma câmara de fluxo com 4 a 5% de óxido de flúor, utilizando uma máquina de barbear elétrica para depilar o abdômen do esterno até a pelve. Em seguida, posicione a rata em posição supina sobre uma placa aquecedora isotérmica. Aplique pomada nos olhos do tamanho da rata e coloque seu rosto em um cone nasal.Mantenha a anestesia com dois a 3% de óxido nitroso e oxigênio a dois litros por minuto. Em seguida, desinfete a pele com solução de Betadine. Então, verifique o nível de anestesia com pinça, pinçando entre os dedos da pata traseira, e administre antibióticos perioperatórios por via intraperitoneal com enrofloxacina.E para analgesia, adicione um miligrama por quilograma de flu nixon. Para iniciar a cirurgia, use um bisturi para fazer uma incisão mediana começando logo abaixo do processo xifoide, usando pinças e tesoura cirúrgica, dissecando circunferencialmente e mobilizando a pele dos músculos abdominais subjacentes. Abra a cavidade abdominal e instale retratores para expor o campo operatório e criar um segmento pancreático e intestinal.Primeiro, identifique se o duodeno ou o jejuno proximal passa sob o cólon aproximadamente 10 centímetros oralmente a partir desse ponto, seccione o intestino delgado e ligue ambas as extremidades do intestino. Posicione os cotos proximal e distal das duas extremidades nos quadrantes superior esquerdo e direito do abdômen, respectivamente, para uso posterior. Para formar os segmentos pancreático e intestinal bilaterais da reconstrução de Ru MY, identifique o ceco com a válvula íleo-cecal e o íleo.Siga o íleo por via oral por aproximadamente 25 centímetros. Em seguida, recupere o segmento bial do pâncreas do quadrante superior esquerdo do abdômen e posicione-o ao lado do canal comum. Neste momento, sutura um ponto de retenção.Para fixar o segmento bilio pancreático e o canal comum. Utilize tesoura microcirúrgica para fazer uma incisão em ambos os alças ao longo de aproximadamente 10 milímetros. Em seguida, utilize pontos separados para formar uma anastomose lado a lado.Primeiro na face posterior, depois na anterior. Identifique a junção gastroesofágica para a criação do saco gástrico. Utilize a tesoura de Matson para mobilizar esta área, disseccionando os ligamentos gastro-hepático e gastro-epiplóico.Em seguida, desloque lateralmente a artéria gástrica esquerda e as fibras vagais do feixe paraesofágico esquerdo para prevenir hemorragias graves e danos ao nervo vago durante a criação do pequeno reservatório gástrico. Exponha a junção gastroesofágica posicionando um cotonete retroesofágico. Utilizando um dispositivo cordery comercialmente disponível, coagule os pequenos vasos do estômago anterior para prevenir sangramentos, usando tesouras curvas delicadas.Seccionar o estômago aproximadamente cinco milímetros abaixo da junção gastroesofágica, criando uma bolsa gástrica com tamanho não superior a 2 a 3% do tamanho original do estômago. Em seguida, fechar o remanescente gástrico para a gastrostomia. Retirar o segmento elemental do quadrante superior direito do abdômen e posicioná-lo ao lado da bolsa gástrica.Realize uma anastomose latero-lateral, começando pela parte posterior e depois pela anterior. Reduza o isoflurano para 1,5% utilizando suturas contínuas. Feche a camada muscular da parede abdominal como analgésico por via subcutânea.Administre 100 microlitros de 0,3 miligramas por mililitro. A buprenorfina reduz ainda mais o isoflurano para 1%. Em seguida, utilizando suturas interrompidas, feche a pele, descontinue a anestesia e continue com oxigênio. Então, administre cinco mililitros de solução salina morna em três locais subcutâneos.Coloque a rata sob uma luz vermelha até que ela desperte completamente. Por fim, retorne a rata à sua gaiola de origem e administre uma dieta líquida por três dias antes de permitir que os animais tenham acesso à ração normal. Este gráfico mostra que cinco dias após a cirurgia, os animais controle submetidos à cirurgia simulada pesam significativamente mais do que as ratas submetidas à bypass gástrica.E no dia 60, a diferença no peso corporal foi muito mais acentuada, sugerindo que o bypass gástrico é eficaz na redução e na manutenção da perda de peso. Este gráfico mostra que a ingestão diária de alimento foi consistentemente menor em ratos submetidos ao bypass gástrico em comparação com ratos submetidos à cirurgia simulada mantidos com dieta livre. As diferenças na ingestão alimentar podem ser parcialmente explicadas pelo aumento dos níveis plasmáticos pós-prandiais do peptídeo YY e do peptídeo semelhante ao glucagon tipo 1, conforme indicado aqui.Ratos submetidos à derivação gástrica apresentaram níveis significativamente mais elevados de ambos os peptídeos YY e glucagon-like peptide 1. Uma vez dominada, esta técnica pode ser realizada em aproximadamente uma hora, se for executada corretamente após seu desenvolvimento. Esta técnica abriu caminho para pesquisadores na área de obesidade e diabetes investigarem alterações dependentes de cirurgia na endocrinologia intestinal em ratos e camundongos.

roux-en-y-gastric-bypass-operation-in-rats

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este vídeo descreve um procedimento de cirurgia bariátrica-Y-de-Roux. Isso envolve o corte do jejuno - a porção média do intestino - para gerar dois membros intestinais. A alça biliar está ligada à alça intestinal existente e a alça alimentar está ligada ao estômago, criando um bypass gástrico. O bypass gástrico criado aqui ajuda a diminuir a absorção de nutrientes e reduz eficientemente o peso corporal.

Procedimento de bypass gástrico em Y-de-Roux: um procedimento cirúrgico bariátrico para ressecção gástrica em modelo murino

A cirurgia bariátrica é a maneira mais eficiente de reduzir o peso corporal e as complicações metabólicas mortais (diabetes, obesidade e dislipidemia) frequentemente associadas à obesidade mórbida. Modelos de camundongos de cirurgia bariátrica representam um recurso único para decifrar os mecanismos moleculares por trás dos efeitos benéficos dessas cirurgias sobre diabetes, hipertensão e dislipidemia.

Técnicas de gastrectomia vertical e modificado Roux-en-Y bypass gástrico em ratos

A seguir descreve o desempenho de gastrectomia de manga vertical em camundongos. Este é um tipo de cirurgia de perda de peso que envolve a remoção de aproximadamente 70% do estômago.

Um modelo murino de gastrectomia de manga Vertical

Este protocolo é para o desempenho de uma anastomose bypass gástrico (OAGB) em ratos. O operador executa uma bolsa gástrica longa e tubular-grampeado, seguida por anastomose costurado à mão. Para este modelo, o operador reproduz a mesma relação entre biliopancreatic e membro comum em seres humanos; Portanto, o membro biliopancreatic mede 35 cm.

1-anastomose Bypass gástrico (OAGB) em ratos

A prevalência de diabetes e obesidade está aumentando continuamente em todo o mundo. Os mecanismos entre diabetes, obesidade e sua mortalidade associada e co-morbidades precisam ser mais aprofundados. Aqui, apresentamos um protocolo para gastrectomia de manga (SG) em animais como um modelo pré-clínico descomplicado da cirurgia bariátrica.

Gastrectomia de manga em camundongos usando clipes cirúrgicos

O bypass gástrico Roux-en-Y (RYGB) é realizado para tratar obesidade e diabetes. No entanto, os mecanismos subjacentes à eficácia do RYGB não são totalmente compreendidos, e os estudos são limitados pela dificuldade técnica que leva à alta mortalidade em modelos animais. Este artigo fornece instruções sobre como executar RYGB em ratos com altas taxas de sucesso.

Um protocolo para bypass gástrico Roux-en-Y em ratos usando grampos lineares

A derivação duodeno-ileal de anastomose única (SADI-S) é um procedimento bariátrico emergente com importantes efeitos metabólicos. Neste artigo, apresentamos um modelo confiável e reprodutível de SADI-S em camundongos.

Modelo de Bypass Duodeno-Ileal de Anastomose Única com Gastrectomia Vertical em Camundongos

O modelo do rato de infarto agudo do miocárdio (IAM) é útil para estudar as consequências do enfarte do miocárdio sobre a função fisiológica e fisiopatológica cardíaca.

Infarto Agudo do Miocárdio em Ratos

Nós apresentamos uma revisão fácil de estabelecer a técnica de dois manguito clássica para transplante hepático em ratos.

Transplante hepático ortotópico experimental em ratos

No câncer gástrico inicial, o objetivo da cirurgia é remover com precisão o estômago distal, incluindo o tumor primário. Para isso, a localização precisa do tumor é crucial, especialmente em cirurgias totalmente laparoscópicas. Este protocolo descreve um procedimento para gastroscopia intraoperatória em gastrectomia subtotal totalmente laparoscópica.

Gastroscopia intra-operatória para localização do tumor na cirurgia laparoscópica para gástrica Adenocarcinoma

Aprenda o bypass gástrico Roux-en-Y em ratos para pesquisa de obesidade e diabetes. Este modelo reprodutível replica a cirurgia humana com bolsa gástrica pequena, reduzindo ingestão alimentar e peso corporal a longo prazo.

Roux-en-Y operação de bypass gástrico em ratos

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