Name: Ovariectomia e 17β-estradiol substituição em ratos e camundongos: uma demonstração visual (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: Aprenda a realizar ovariectomia e reposição de 17β-estradiol em ratas e camundongos usando cápsulas de silastic ou mistura oral de Nutella. Este método permite controlar concentrações séricas de estrogênio com estabilidade fisiológica por períodos prolongados em pesquisas de neurociência e endocrinologia.

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O estudo foi financiado pela Universidade de Linköping e do Conselho Municipal de Östergötland.

1. Ovariectomia pela Rota Dorsal <ol><li> Anestesiar o animal, por exemplo, utilizando 1,5% de isoflurano (4% para a indução) em um óxido de oxigénio / nitroso 30% de mistura / 70%. Colocar o animal na posição de bruços em uma placa de aquecimento ligada a um termómetro rectal. É importante ter uma fina camada de isolamento entre o animal e da placa, e que o sistema de termómetro feed-back mantém a temperatura do corpo dentro de 37 ± 0,5 ° C. Aplicar gel de protecção dos olhos e administrar 5 mg de peso corporal Rimadyl / kg diluído em solução salina por via subcutânea no aspecto lateral do pescoço do animal para o alívio da dor pós-operatória. </li><li> Shave área de 4 * 4 cm (3 * 3 cm para ratos) cephally da crista ilíaca. Lave cuidadosamente a área raspada com por exemplo Jodopax antes de cobrir o animal com uma folha de 4 4 ​​cm * cirurgia de abertura. </li><li> Faça uma incisão de 2-3 cm da linha média e sem rodeios dissecar a pele da fáscia subjacente. Um cm lateral da linha média, fazer uma outra incisão through a fáscia. Bluntly dissecar lateralmente no âmbito do presente fáscia como superficialmente quanto possível, até atingir a cavidade abdominal. </li><li> Com uma pinça, pegue o tecido adiposo que rodeia o ovário na cavidade abdominal e puxe-o para fora. Identificar o ovário e ligadura dos cornos uterinos e vasos 0,5-1 cm proximal desta estrutura. Cortar o ovário e tecido adiposo ligados e voltar a colocar a tecido remanescente para dentro da cavidade abdominal. Fazer outra incisão na fáscia contralateral e repita o procedimento. </li><li> Fechar as feridas, de preferência usando uma sutura de monofilamento, e deixar o animal acordado da anestesia. Colocar o animal numa gaiola aquecida (25-27 ° C) durante pelo menos 2 horas após a cirurgia. Os animais devem ser alojados separadamente os primeiros dias pós-operatório. É fundamental que a gaiola é frequentemente limpas / substituídas durante a fase de recuperação. Vinte e quatro horas após a cirurgia, os animais injectar por via subcutânea com outro 5 mg de peso corporal Rimadyl / kg diluído emsolução salina. </li></ol> 2. A administração subcutânea de 17β-estradiol através Cápsulas Silastic <ol><li> Misturar bem a quantidade desejada de 17β-estradiol em óleo de sésamo. Para concentrações fisiológicas em ratos e ratinhos, recomendamos 180 mcg / mL e 18-36 mcg / mL, respectivamente. As cápsulas de placebo são preenchidos com óleo de sésamo puro. </li><li> Corte 3 cm (2 cm para ratos) comprimentos de tubos de silastic e 5 mm (3 mm para camundongos) comprimentos de varas aplicador de madeira para ligar. Usando uma pinça, espremer uma tomada de madeira no interior da cápsula de silastic antes de injectar a solução de óleo 17β-estradiol/sesame para encher todo o comprimento. Suavemente tampar a cápsula de silastic na extremidade aberta com uma outra tomada de madeira (os tampões devem permanecer permanentemente na cápsula). Incubar as cápsulas na solução 17β-estradiol remanescente durante a noite antes do implante. </li><li> Implante da cápsula pode ser realizada durante a anestesia utilizada em ovariectomia em ratos. Para mice, no entanto, um período de recuperação de 14-dias após a ovariectomia é fortemente recomendada para minimizar o risco da cápsula saliente através da pele frágil. </li><li> Após as preparações cirúrgicas como na 1.1, ou após o fechamento da incisão ovariectomia, fazer a barba e lavar a 2 * A área de 2 cm no dorso do pescoço do animal. Faça uma incisão de 1 cm e sem rodeios dissecar uma bolsa subcutânea caudolaterally, com amplo espaço para a cápsula. Seque a cápsula de silastic (que, até este ponto do tempo foi incubado na solução de 17β-estradiol) e suavemente instalar-lo através da incisão, a qual é subsequentemente fechado por uma sutura. É essencial para se certificar de que as estirpes de cápsula pele a tão pouco quanto possível, particularmente na área próxima da ferida. Desde a produção de cápsulas para a implantação, é importante que a contaminação é evitada. </li></ol> 3. Administração perorai de 17β-estradiol através da Nutella Nut creme- <ol><li> A dissolução completa 17β-estradiol em óleo de gergelim, e em seguida, misture o óleo de gergelim com a Nutella. Sugerimos que cada porção diária contém 28 ug 17β-estradiol, 5 uL de óleo de sésamo e 1 Nutella g por quilograma de peso corporal para os ratos e 1,12 ug 17β-estradiol, 0,312 óleo de sésamo e 60 uL Nutella mg por cada rato 30-g. Placebo porca creme-se preparado de forma idêntica excepto sem a 17β-estradiol. </li><li> Treinar os animais para comer sem hormônios porca creme para cinco dias anteriores ao experimento. Os três primeiros dias de treinamento, os ratos devem ser otimamente treinados em grupos (aproximadamente 0,5 g de Nutella 2-5 animais), em gaiolas de origem. Nos quarto e quinto dias de treinamento, os animais são colocados em gaiolas separadas antes de receber a porção diária para assemelhar-se a situação experimental. </li><li> Durante a experiência, os animais são colocados em gaiolas separadas para cada ocasião de alimentação, após o que a porção Nutella é servido em pequenas azulejos de cerâmica. Se a formação foi realizada como acima, oexperiência ur é que mais de 95% dos ratos e ratinhos aceitar a porca de creme, e uma vez totalmente habituado, a maioria dos animais consomem-lo dentro de segundos. </li></ol> 4. Os resultados representativos Soro fisiológico 17β-estradiol concentrações, que os métodos actuais destinados a reproduzir, são aproximadamente 5-140 pg / mL para ratos e 5-35 pg / mL para ratinhos 4,6. As cápsulas subcutâneas silastic de acordo com as instruções acima, quando administrado a 300 g fêmeas Sprague-Dawley, produzir diminuição lenta 17β-estradiol concentrações de soro de cerca de 40 pg / mL dia 2 ao 10 dia pg / mL 35. No entanto, imediatamente após a administração, um pico de concentração no soro de cerca de 1000 pg / mL pode ser esperado, caindo para a gama fisiológica dentro de 8 horas (Figura 1A) 4,5. As cápsulas de silastic para ratinhos descritos acima, com 36 ug 17β-estradiol/mL, quando administrada a 25 g fêmea C57BL / 6, tornam conc soroentrations que diminuem lentamente a partir de aproximadamente 90 pg / mL dia 2-25 pg / mL dia 35. Isto é provavelmente precedido por um pico semelhante como foi encontrado nos ratos, embora isso não tem sido investigada (Figura 1B) 6. O método Nutella perorai com as dosagens acima descrito, quando administrado a 300 g fêmeas Sprague-Dawley, torna níveis fisiológicos de 17β-estradiol com flutuações diárias entre 10-70 pg / mL (Figura 2A) 4. Para ratinhos usando a dosagem acima, os níveis diários flutuar entre aproximadamente 20 e 120 pg / mL (Figura 2B) 6. <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/4013/4013fig1.jpg" /> <st<html> . Rong&gt; Figura 1 gráficos que apresentam estilizados 17β-estradiol concentrações em ratos (A, n = 10 em vez de pontos até 24 h, n = 15 em posteriores de tempo pontos) 4,5 e ratinhos (B, n = 10) 6, após o implante de cápsula. As cápsulas de silastic produzir um pico inicial curta das concentrações séricas de até 1000 pg / mL, mas diminuem dentro de horas para níveis inferiores a 100 pg / mL. Para as próximas semanas 4-5, as cápsulas rendimento estável, embora constantemente decrescente, as concentrações séricas. As áreas sombreadas correspondem a fisiológicas 17β-estradiol concentrações no soro em ratos fêmeas intactos e ratinhos, respectivamente. Mesmo que não visualmente demonstrado nos gráficos, há variabilidade inter-individual nas concentrações 17β-estradiol, tornando os coeficientes de variação de 27-183%, em ratos e de 28 a 115% em ratos com o método de cápsula de silastic (média muito baixa concentrações muitas vezes geram altos coeficientes de variação). iles/ftp_upload/4013/4013fig2.jpg &quot;/&gt; A Figura 2 gráficos que apresentam estilizados 17β-estradiol concentrações em ratos (A, n = 15). 4 e ratinhos (B, n = 10) 6 como uma consequência da administração hormona diariamente em Nutella. O método processa Nutella perorai picos diários, no entanto, de longe, não tão elevada como produzido por via subcutânea ou métodos intravenosas. Este imita a farmacocinética da terapia de substituição hormonal humano, eo tratamento perorai pode prosseguir durante o tempo que for necessário, mesmo se o exemplo acima apresentar apenas um período inicial de 96 horas. As áreas sombreadas correspondem a fisiológicas 17β-estradiol concentrações no soro em ratos fêmeas intactos e ratinhos, respectivamente. Mesmo embora não visualmente demonstrado nos gráficos, há variabilidade inter-individual nas concentrações 17β-estradiol, tornando os coeficientes de variação de 40-132%, em ratos e de 13 a 219% em ratos com o método Nutella (muito baixas concentrações médias muitas vezes geram altacoeficientes de variação).

<ol><li>Strom, J. O., Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-related+neuroprotective+versus+neurodamaging+effects+of+estrogens+in+rat+cerebral+ischemia%3A+a+systematic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Dose-related neuroprotective versus neurodamaging effects of estrogens in rat cerebral ischemia: a systematic analysis.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 29, 1359-1372 (2009).</li>
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<li>Carswell, H. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+17beta-estradiol+upon+stroke+damage+in+stroke+prone+and+normotensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Differential effects of 17beta-estradiol upon stroke damage in stroke prone and normotensive rats.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 24, 298-304 (2004).</li>
<li>Yong, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((17beta-estradiol+potentiates+ischemia-reperfusion+injury+in+diabetic+ovariectomized+female+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">17beta-estradiol potentiates ischemia-reperfusion injury in diabetic ovariectomized female rats.</a> Brain Res. 1054, 192-199 (2005).</li>
<li>Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol+increases+brain+lesions+in+the+cortex+and+lateral+striatum+after+transient+occlusion+of+the+middle+cerebral+artery+in+rats%3A+no+effect+of+ischemia+on+galanin+in+the+stroke+area+but+decreased+levels+in+the+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">Estradiol increases brain lesions in the cortex and lateral striatum after transient occlusion of the middle cerebral artery in rats: no effect of ischemia on galanin in the stroke area but decreased levels in the hippocampus.</a> Peptides. 26, 2257-2264 (2005).</li>
<li>Levin-Allerhand, J. A., Sokol, K., Smith, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safe+and+effective+method+for+chronic+17beta-estradiol+administration+to+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Safe and effective method for chronic 17beta-estradiol administration to mice.</a> Contemp. Top Lab Anim. Sci. 42, 33-35 (2003).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

As formas de administração apresentadas acima têm em estudos anteriores mostraram-se superiores a comerciais de libertação lenta e as injecções de peletes em termos de produção de fisiológicas concentrações séricas de 17β-estradiol. Enquanto pelotas liberação lenta produzir muito altas e prolongadas picos de concentração de soro, as injeções causam extremos, as flutuações hormonais diárias e exigem manuseio repetido estressante dos 4-6 animais. A importância da escolha de modos de administração adequada é rea...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td> Rimadyl, 50 mg / mL </td><td> Pfizer </td><td> 462986 </td><td> Analgesia pós-operatória após a ooforectomia. </td></tr><tr><td> Lubrithal gel para os olhos </td><td> Leo Laboratories </td><td></td><td> Proteção dos olhos durante a cirurgia. </td></tr><tr><td> Vet Jodopax </td><td> Pharmaxim </td><td></td><td> Desinfecção cirurgia. </td></tr><tr><td> Sutura Vicryl 4-0 </td><td> Johnson &amp; Johnson </td><td></td><td> A sutura e ligadura do ovário. </td></tr><tr><td> 17β-estradiol,%&gt; 98 </td><td> Sigma </td><td> E8875-1G </td><td> Em óleo de gergelim para cápsulas de silastic e Nutella. </td></tr><tr><td> Óleo de gergelim </td><td> Sigma </td><td> S3547-1L </td><td> Dissolvendo o 17β-estradiol. </td></tr><tr><td> Tubo de Silastic, ID / OD: 1.575/3.175 milímetros </td><td> A Dow Corning </td><td> 508-008 </td><td> Produção de cápsulas de silastic. </td></tr><tr><td> Vareta aplicadora de madeira </td><td> Selefatrade </td><td> 12-0783 </td><td> Nivelamento das cápsulas de silastic. </td></tr><tr><td> Nutella </td><td> Ferrero </td><td></td><td> Médio para peroral 17β-estradiol. </td></tr></tbody></table>

ovariectomia e 17β-estradiol substituição em ratos e camundongos: uma demonstração visual

Ovariectomy and 17&beta;-estradiol Replacement in Rats and Mice: A Visual Demonstration

Estrogens são uma família de hormonas sexuais femininos com um espectro excepcionalmente ampla de efeitos. Quando os ratos e ratinhos são utilizados na investigação estrogénio são vulgarmente ovariectomizados, a fim de ablação a produção da hormona rapidamente bicicleta, substituindo o exogenamente 17β-estradiol. Há, no entanto, a falta de consenso em relação a como a hormona deve ser administrada para se obter as concentrações séricas fisiológicas. Isto é crucial uma vez que o 17β-estradiol método nível / administração influencia profundamente os resultados experimentais 1-3. Temos em uma série de estudos caracterizados os diferentes modos de administração 17β-estradiol, encontrando que as cápsulas subcutâneas silastic e por-oral Nutella porca creme-são superiores aos disponíveis comercialmente peletes de libertação lenta (produzido pela empresa Research Innovative da América) e injecções diárias, em termos de produção de fisiológicas concentrações séricas de 17β-estradiol 4-6. Entre os advantages do método porca creme, que anteriormente foi utilizado para a administração da buprenorfina 7, é que, quando utilizada para a administração estrogénio que se assemelha a terapia de substituição hormonal perorai e é não-invasivo. As cápsulas subcutâneas silastic são convenientes e produzir as concentrações mais estáveis ​​no soro. Este artigo contém vídeo passo-a-passo demonstrações de ovariectomia e 17β-estradiol reposição hormonal por cápsulas de silastic e Nutella via oral em ratos e camundongos, seguido por uma discussão de aspectos importantes dos procedimentos administrativos.

Ovariectomia e subsequente substituição do 17β-estradiol, por meio de cápsulas de silastic e Nutella perorai são demonstrados em ratos e ratinhos.

Ovariectomia e 17β-estradiol substituição em ratos e camundongos: uma demonstração visual

Os estrogênios são uma família de hormônios sexuais femininos com um espectro de efeitos excepcionalmente amplo. Quando ratos e camundongos são utilizados em pesquisas sobre estrogênio, eles são...

O objetivo geral deste procedimento é obter controle rigoroso sobre as concentrações séricas de estrogênio, que de outra forma flutuariam em ratas e camundongos fêmeas. Isso é realizado primeiramente removendo os ovários pela raiz dorsal. Em seguida, são preparadas cápsulas de cel elástica e uma mistura de Nutella.Por fim, uma cápsula é inserida por via subcutânea, ou a mistura de Nutella é administrada por via oral. Em última análise, os resultados podem ser obtidos por radioimunoensaio, que mostra concentrações séricas estáveis ou flutuantes de 17 beta-estradiol para os métodos da cápsula e da Nutella, respectivamente. A principal vantagem dessas técnicas em relação aos métodos existentes, como pellets de liberação lenta, é que elas demonstraram produzir concentrações fisiológicas de estradiol por períodos prolongados de tempo.Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área do estrogênio, como as diferenças nos efeitos entre administração, raízes e doses. Após anestesiar o animal, coloque-o em posição prona sobre uma placa aquecida conectada a um termômetro retal. Aplique IGEL e, para alívio pós-operatório, na face lateral do pescoço do animal por via subcutânea.Administre cinco miligramas por quilograma de IL em solução salina anteriormente a partir da crista ilíaca em uma área de quatro por quatro centímetros. Em seguida, desinfete a área com um antisséptico antes de cobrir o animal com um campo cirúrgico de quatro por quatro centímetros com abertura. Faça uma incisão mediana de dois a três centímetros e dissecção romba da pele a partir da fáscia subjacente, um centímetro lateral à linha mediana.Realize outra incisão através da fáscia. Em seguida, tão superficialmente quanto possível, dissecar rombamente lateralmente sob esta fáscia até alcançar a cavidade abdominal. Usando pinças, segure o tecido adiposo que envolve o ovário na cavidade abdominal e puxe-o suavemente para fora.Identifique o ovário e ligue os cornos uterinos e os vasos a 0,5 a um centímetro proximalmente a esta estrutura. Retire o ovário e o tecido adiposo ligado e devolva o tecido remanescente à cavidade abdominal.Realize outra incisão na fáscia contralateral e remova o outro ovário. Feche as feridas e, se não for administrar imediatamente o 17 beta-estradiol, deixe o animal despertar da anestesia.Coloque o animal em uma gaiola aquecida por pelo menos duas horas após a cirurgia. Mantenha o rato separado nos primeiros dias pós-operatórios. 24 horas após a cirurgia, por via subcutânea.Injete os animais com mais cinco miligramas por quilograma de IL para administrar 17 beta-estradiol por meio de cápsulas de silastic. Misture bem a quantidade desejada em óleo de gergelim. Corte comprimentos de três centímetros de tubo de silastic e comprimentos de cinco milímetros de palitos aplicadores de madeira para tampar usando pinça.Insira um êmbolo de madeira na cápsula escolar antes de injetar a solução de 17 beta-estradiol em óleo de gergelim. Para preencher todo o comprimento, tampe suavemente a extremidade aberta da cápsula escolar com outro êmbolo de madeira. Incube as cápsulas na solução restante de 17 beta-estradiol durante a noite antes da implantação.Após fechar as incisões da ectomia, barbeie e desinfete uma área quadrada de dois por dois centímetros na face dorsal do pescoço do rato. Faça uma incisão de um centímetro e disseque o cordão lateralmente de forma romba. Disseque um bolsão subcutâneo, criando espaço suficiente para a cápsula.Limpe a cápsula escolar e insira-a suavemente através da incisão. Em seguida, feche a incisão com um ponto cirúrgico. Certifique-se de que a cápsula tracione a pele o mínimo possível, especialmente ao redor da ferida.Para utilizar o creme de nozes Nutella como meio de administração de estrogênio, dissolva completamente o 17 beta-estradiol em óleo de gergelim e, em seguida, misture o óleo de gergelim com o creme de nozes. Prepare um creme de nozes placebo sem o 17 beta-estradiol cinco dias antes do experimento. Treine as ratas para ingerir o creme de nozes livre de hormônios nos dias um a três.Treine os animais em grupos nos quarto e quinto dias. Alimente-os com o creme de nozes em gaiolas separadas durante todos os experimentos. Coloque os animais em gaiolas separadas quando forem alimentados com o soro fisiológico de creme de nozes.As concentrações de estradiol 17 beta, que os métodos atuais visam reproduzir, são aproximadamente de cinco a 140 picogramas por mililitro para ratos e de cinco a 35 picogramas por mililitro para camundongos. Conforme mostrado aqui. Quando administrado a ratas fêmeas de 300 gramas da linhagem Sprague Dawley.As cápsulas elásticas subcutâneas produzem concentrações séricas decrescentes lentamente de 17 beta-estradiol, de cerca de 40 picogramas por mililitro no segundo dia até 10 picogramas por mililitro no dia 35. No entanto, imediatamente após a administração, pode-se esperar um pico de concentração sérica de aproximadamente 1000 picogramas por mililitro, que cai para a faixa fisiológica dentro de oito horas quando as cápsulas são administradas a camundongos fêmeas C57 Black Six de 25 gramas.A concentração sérica diminuiu lentamente de aproximadamente 90 picogramas por mililitro no segundo dia para 25 picogramas por mililitro no dia 35 quando administrada por meio do creme de nozes a 300 gramas. Spra de ratos. Os níveis fisiológicos de 17 beta-estradiol oscilaram diariamente entre 10 e 70 picogramas por mililitro em camundongos.Os níveis de estradiol 17 beta oscilaram entre 20 e 120 picogramas por mililitro. Uma vez dominada, a técnica de ectomia e implante da cápsula pode ser realizada em 10 minutos, se executada corretamente. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de aderir rigorosamente às diretrizes de higiene.

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Desvendando o papel das áreas discretas do cérebro de rato na regulação da ovulação através da inativação reversível por microinjeções de tetrodotoxinas

Este manuscrito descreve uma maneira consistente de realizar rapidamente orquiectomias e ovariectomias de roedores de sobrevivência.

Orquiectomia murina e ooforectomia para reduzir a produção de hormônios sexuais

O estabelecimento da gravidez é um processo dinâmico que envolve o crosstalk embrionário e uterino complexo. As contribuições precisas do ambiente uterino materno para esses processos permanecem como uma área ativa de investigação. Aqui, protocolos detalhados são fornecidos para ajudar no projeto de modelos animais in vivo para abordar essas questões de pesquisa.

Métodos para o Estudo das Contribuições Uterinas para o Estabelecimento da Gestação em Modelo de Camundongo Ovariectomizado

Apresentado aqui é um protocolo para mostrar que a cápsula de Bazi Bushen (BZBS) pode regular a via de sinalização RANKL/OPG no modelo de roedor ovariectomizado através de seu efeito semelhante ao estrogênio.

Efeito semelhante ao estrogênio da cápsula Bazi Bushen em ratas ovariectomizadas

O hormônio folículo-estimulante (FSH) em vários tecidos e órgãos extragonadais está associado à patogênese de múltiplas doenças. O modelo de camundongos ovariectomizados e tratados com FSH (OVF) pode ser usado para explorar as ações extragonadais do FSH.

Explorando os efeitos independentes do hormônio folículo-estimulante in vivo em um modelo de camundongo

Este protocolo introduz uma técnica para induzir modelos de síndrome dos ovários policísticos (SOP) em camundongos por meio da liberação controlada de letrozol usando mini-bombas. Sob anestesia adequada, a minibomba foi implantada por via subcutânea e a SOP foi induzida com sucesso nos camundongos após um certo período de liberação da minibomba.

Uma técnica modificada para induzir a síndrome dos ovários policísticos em camundongos

Aprenda a realizar ovariectomia e reposição de 17β-estradiol em ratas e camundongos usando cápsulas de silastic ou mistura oral de Nutella. Este método permite controlar concentrações séricas de estrogênio com estabilidade fisiológica por períodos prolongados em pesquisas de neurociência e endocrinologia.

Ovariectomia e 17β-estradiol substituição em ratos e camundongos: uma demonstração visual

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